Vi introduserer fire metoder for å evaluere de antimikrobielle aktivitetene til nanopartikler og nanostrukturerte overflater ved hjelp av in vitro-teknikker . Disse metodene kan tilpasses for å studere samspillet mellom forskjellige nanopartikler og nanostrukturerte overflater med et bredt spekter av mikrobielle arter.
De antimikrobielle aktivitetene til nanopartikler og nanostrukturerte overflater, som sølv, sinkoksid, titandioksid og magnesiumoksid, har blitt utforsket tidligere i kliniske og miljømessige innstillinger og i forbruksvarer. Imidlertid har mangel på konsistens i eksperimentelle metoder og materialer som brukes kulminert i motstridende resultater, selv blant studier av de samme nanostrukturtyper og bakteriearter. For forskere som ønsker å bruke nanostrukturer som tilsetningsstoff eller belegg i et produktdesign, begrenser disse motstridende dataene bruken i kliniske omgivelser.
For å konfrontere dette dilemmaet, presenterer vi i denne artikkelen fire forskjellige metoder for å bestemme antimikrobielle aktiviteter av nanopartikler og nanostrukturerte overflater, og diskutere deres anvendelighet i forskjellige scenarier. Tilpasning av konsistente metoder forventes å føre til reproduserbare data som kan sammenlignes på tvers av studier og implementeres for forskjellige nanostrukturtyper og mikrobielle arter. Vi introduserer to metoder for å bestemme de antimikrobielle aktivitetene til nanopartikler og to metoder for antimikrobielle aktiviteter av nanostrukturerte overflater.
For nanopartikler kan den direkte samkulturmetoden brukes til å bestemme minimumshemmende og minimum bakteriedrepende konsentrasjoner av nanopartikler, og metoden for direkte eksponeringskultur kan brukes til å vurdere bakteriostatisk versus bakteriedrepende aktivitet i sanntid som følge av nanopartikkeleksponering. For nanostrukturerte overflater brukes den direkte kulturmetoden til å bestemme levedyktigheten til bakterier indirekte og direkte i kontakt med nanostrukturerte overflater, og eksponeringsmetoden for fokusert kontakt brukes til å undersøke antimikrobiell aktivitet på et bestemt område av en nanostrukturert overflate. Vi diskuterer viktige eksperimentelle variabler å vurdere for in vitro studiedesign ved bestemmelse av antimikrobielle egenskaper av nanopartikler og nanostrukturerte overflater. Alle disse metodene er relativt lave kostnader, benytter teknikker som er relativt enkle å mestre og repeterbare for konsistens, og gjelder for et bredt spekter av nanostrukturtyper og mikrobielle arter.
Bare i USA utvikler 1,7 millioner individer en sykehuservervet infeksjon (HAI) årlig, med en av hver 17 av disse infeksjonene som resulterer i død1. I tillegg er det anslått at behandlingskostnadene for HAIs varierer fra $ 28 milliarder til $ 45 milliarder årlig 1,2. Disse HAIene domineres av meticillinresistente gule stafylokokker (MRSA)3,4 og Pseudomonas aeruginosa4, som vanligvis isoleres fra kroniske sårinfeksjoner og vanligvis krever omfattende behandling og tid for å gi et gunstig pasientutfall.
I løpet av de siste tiårene har flere antibiotikaklasser blitt utviklet for å behandle infeksjoner relatert til disse og andre patogene bakterier. For eksempel har rifamycinanaloger blitt brukt til å behandle MRSA, andre gram-positive og gram-negative infeksjoner, og Mycobacterium spp. infeksjoner5. På 1990-tallet, for effektivt å behandle et økende antall M. tuberculosis-infeksjoner, ble flere stoffer kombinert med rifamycinanaloger for å øke effektiviteten. Imidlertid forblir omtrent 5% av M. tuberculosis-tilfellene resistente motrifampicin5,6, og det er økende bekymring for multiresistente bakterier7. For tiden kan bruk av antibiotika alene ikke være tilstrekkelig i behandlingen av HAIs, og dette har provosert et pågående søk etter alternative antimikrobielle terapier1.
Tungmetaller, som sølv (Ag) 8,9,10 og gull (Au) 11, og keramikk, som titandioksid (TiO 2) 12 og sinkoksid (ZnO) 13, i nanopartikkel (NP) form (AgNP, AuNP, TiO2 NP og ZnONP, henholdsvis) har blitt undersøkt for deres antimikrobielle aktiviteter og har blitt identifisert som potensielle antibiotikaalternativer. I tillegg bioresorberbare materialer, som magnesiumlegeringer (Mg legeringer)14,15,16, magnesiumoksid nanopartikler 17,18,19,20,21 og magnesiumhydroksid nanopartikler [nMgO og nMg(OH)2, henholdsvis] 22,23,24, har også blitt undersøkt. Imidlertid brukte de tidligere antimikrobielle studiene av nanopartikler inkonsistente materialer og forskningsmetoder, noe som resulterte i data som er vanskelige eller umulige å sammenligne og noen ganger motstridende i naturen18,19. For eksempel varierte den minste hemmende konsentrasjonen (MIC) og minimum bakteriedrepende konsentrasjon (MBC) av sølvnanopartikler betydelig i forskjellige studier. Ipe et al.25 evaluerte de antibakterielle aktivitetene til AgNPs med en gjennomsnittlig partikkelstørrelse på ~ 26 nm for å bestemme MICs mot gram-positive og gram-negative bakterier. De identifiserte mikrofonene for P. aeruginosa, E. coli, S. aureus og MRSA var henholdsvis 2 μg/ml, 5 μg/ml, 10 μg/ml og 10 μg/ml. I motsetning til dette evaluerte Parvekar et al.26 AgNPs med en gjennomsnittlig partikkelstørrelse på 5 nm. I dette tilfellet ble AgNP MIC og en MBC på 0,625 mg / ml funnet å være effektive mot S. aureus. I tillegg evaluerte Loo et al.27 AgNPs med en størrelse på 4, 06 nm. Når E. coli ble utsatt for disse nanopartiklene, ble MIC og MBC rapportert ved 7, 8 μg / ml. Endelig undersøkte Ali et al.28 de antibakterielle egenskapene til sfæriske AgNPs med en gjennomsnittlig størrelse på 18 nm. Når P. aeruginosa, E. coli og MRSA ble utsatt for disse nanopartiklene, ble MIC identifisert ved henholdsvis 27 μg / ml, 36 μg / ml, 27 μg / ml og 36 μg / ml, og MBC ble identifisert ved henholdsvis 36 μg / ml, 42 μg / ml og 30 μg / ml.
Selv om den antibakterielle aktiviteten til nanopartikler har blitt grundig studert og rapportert de siste tiårene, er det ingen standard for materialene og forskningsmetodene som brukes til å tillate direkte sammenligninger på tvers av studier. Av denne grunn presenterer vi to metoder, den direkte samkulturmetoden (metode A) og den direkte eksponeringsmetoden (metode B), for å karakterisere og sammenligne de antimikrobielle aktivitetene til nanopartikler samtidig som materialene og metodene holdes konsistente.
I tillegg til nanopartikler har nanostrukturerte overflater også blitt undersøkt for antibakterielle aktiviteter. Disse inkluderer karbonbaserte materialer, som grafen nanoark, karbonnanorør og grafitt29, samt rene Mg og Mg legeringer. Hvert av disse materialene har vist minst en antibakteriell mekanisme, inkludert fysisk skade påført cellemembraner av karbonbaserte materialer og skade på metabolske prosesser eller DNA gjennom frigjøring av reaktive oksygenarter (ROS) når Mg nedbrytes. I tillegg, når sink (Zn) og kalsium (Ca) kombineres i dannelsen av Mg-legeringer, forbedres forfiningen av Mg-matrikskornstørrelsen, noe som fører til en reduksjon i bakteriell adhesjon til substratoverflater i forhold til Mg-only-prøver14. For å demonstrere antibakteriell aktivitet presenterer vi den direkte dyrkningsmetoden (metode C), som bestemmer bakteriell adhesjon på og rundt nanostrukturerte materialer over tid gjennom kvantifisering av bakteriekolonidannende enheter (CFU) med direkte og indirekte overflatekontakt.
Geometrien til nanostrukturer på overflater, inkludert størrelse, form og orientering, kan påvirke materialets bakteriedrepende aktiviteter. For eksempel fremstilte Lin et al.16 forskjellige nanostrukturerte MgO-lag på overflatene av Mg-substrater gjennom anodisering og elektroforetisk avsetning (EPD). Etter en periode med eksponering for nanostrukturert overflate in vitro ble veksten av S. aureus betydelig redusert sammenlignet med ikke-behandlet Mg. Dette indikerte en større styrke av den nanostrukturerte overflaten mot bakteriell adhesjon versus den ubehandlede metalliske Mg-overflaten. For å avsløre de forskjellige mekanismene til de antibakterielle egenskapene til forskjellige nanostrukturerte overflater, diskuteres en fokusert-kontakteksponeringsmetode (metode D) som bestemmer celleoverflateinteraksjonene innenfor interesseområdet i denne artikkelen.
Målet med denne artikkelen er å presentere fire in vitro-metoder som kan brukes på forskjellige nanopartikler, nanostrukturerte overflater og mikrobielle arter. Vi diskuterer viktige hensyn for hver metode for å produsere konsistente, reproduserbare data for sammenlignbarhet. Spesielt brukes den direkte samkulturmetoden17 og direkte eksponeringsmetoden for å undersøke de antimikrobielle egenskapene til nanopartikler. Gjennom den direkte samkulturmetoden kan minste hemmende og minste bakteriedrepende konsentrasjoner (henholdsvis MIC og MBC90-99.99) bestemmes for individuelle arter, og den mest potente konsentrasjonen (MPC) kan bestemmes for flere arter. Gjennom den direkte eksponeringsmetoden kan de bakteriostatiske eller bakteriedrepende effektene av nanopartikler ved minimumshemmende konsentrasjoner karakteriseres ved sanntids optiske tetthetsavlesninger over tid. Direct culture14-metoden er egnet for å undersøke bakterier direkte og indirekte i kontakt med nanostrukturerte overflater. Til slutt presenteres metoden med fokusert kontakteksponering 16 for å undersøke den antibakterielle aktiviteten til et bestemt område på en nanostrukturert overflate gjennom direkte påføring av bakterier og karakterisering av bakterievekst ved celle-nanostrukturgrensesnittet. Denne metoden er modifisert fra den japanske industristandarden JIS Z 2801: 200016, og er ment å fokusere på mikrobe-overflate-interaksjoner og utelukke effekten av nedbrytning av bulkprøver i mikrobiell kultur på antimikrobielle aktiviteter.
Vi har presentert fire in vitro-metoder (A-D) for å karakterisere de antibakterielle aktivitetene til nanopartikler og nanostrukturerte overflater. Mens hver av disse metodene kvantifiserer bakterievekst og levedyktighet over tid som respons på nanomaterialer, eksisterer det en viss variasjon i metodene som brukes til å måle den opprinnelige bakterielle såtettheten, veksten og levedyktigheten over tid. Tre av disse metodene, den direkte samkulturmetoden (A)17, den direkte dyrkningsme…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne setter pris på den økonomiske støtten fra US National Science Foundation (NSF CBET award 1512764 og NSF PIRE 1545852), National Institutes of Health (NIH NIDCR 1R03DE028631), University of California (UC) Regents Faculty Development Fellowship, Committee on Research Seed Grant (Huinan Liu), og UC-Riverside Graduate Research Mentorship Program Grant tildelt Patricia Holt-Torres. Forfatterne setter pris på assistansen fra Central Facility for Advanced Microscopy and Microanalysis (CFAMM) ved UC-Riverside for bruk av SEM / EDS og Dr. Perry Cheung for bruk av XRD. Forfatterne vil også takke Morgan Elizabeth Nator og Samhitha Tumkur for deres hjelp med eksperimentene og dataanalysene. Eventuelle meninger, funn, konklusjoner eller anbefalinger uttrykt i denne artikkelen er forfatternes og gjenspeiler ikke nødvendigvis synspunktene til National Science Foundation eller National Institutes of Health.
1.5 mL microcentrifuge tube | Milipore Sigma | Z336777 | |
80 L NTRL Certified Convection Drying Oven | MTI Corporation | BPG-7082 | https://www.mtixtl.com/BPG-7082.aspx |
(hydroxymethyl) aminomethane buffer pH 8.5; Tris buffer | Sigma-Aldrich | 42457 | |
AnaSpec THIOFLAVIN T ULTRAPURE GRADE | Fisher Scientific | 50-850-291 | |
Electron-multiplying charge-coupled device digital camera | Hamamatsu | C9100-13 | |
Falcon 15 mL conical tubes | Fisher Scientific | 14-959-49B | |
Gluteraldehyde | Sigma-Aldrich | G5882 | |
Hemocytometer | Brightline, Hausser Scientific | 1492 | |
Inductively coupled plasma – optical emission spectrometry (ICP-OES) | PerkinElmer | 8000 | |
Inverse microscope | Nikon | Eclipse Ti-S | |
Luria Bertani Broth | Sigma Life Science | L3022 | |
Luria Bertani Broth + agar | Sigma Life Science | L2897 | |
MacroTube 5.0 | Benchmark Scientific | C1005-T5-ST | |
Magnesium oxide nanoparticles | US Research Nanomaterials, Inc | Stock #: US3310 M | MgO, 99+%, 20 nm |
MS Semi-Micro Balance | Mettler Toledo | MS105D | |
Nitrocellulose paper | Fisherbrand | 09-801A | |
Non-tissue treated 12-well polystyrene plate | Falcon Corning Brand | 351143 | |
Non-tissue treated 48-well polystyrene plate | Falcon Corning Brand | 351178 | |
Non-tissue treated 96-well polystyrene plate | Falcon Corning Brand | 351172 | |
Petri dish 100 mm | VWR | 470210-568 | |
Petri dish, 15 mm | Fisherbrand | FB0875713A | |
pH meter | VWR | SP70P | |
Scanning electron microscopy (SEM) | TESCAN | Vega3 SBH | |
Sonicator | VWR | 97043-936 | |
Table top centrifuge | Fisher Scientific | accuSpin Micro 17 | |
Table top centrifuge | Eppendorf | Centrifuge 5430 | |
Tryptic Soy Agar | MP | 1010617 | |
Tryptic Soy Broth | Sigma-Aldrich | 22092-500G | |
UV-Vis spectrophotometer | Tecan | Infinite 200 PRO | https://lifesciences.tecan.com/plate_readers/infinite_200_pro |
VWR Benchmark Incu-shaker 10L | VWR | N/A | |
X-ray power defraction | Panalytical | N/A | PANalytical Empyrean Series 2 |