Summary

Myelinisering in vitro av perifera axoner i en samkultur av råtta dorsalrotganglion explantat och Schwannceller

Published: February 10, 2023
doi:

Summary

I samodlingssystemet av dorsala rotganglier och Schwann-celler kan myelinering av det perifera nervsystemet studeras. Denna modell ger experimentella möjligheter att observera och kvantifiera perifer myelinisering och att studera effekterna av föreningar av intresse på myelinskidan.

Abstract

Myeliniseringsprocessen är avgörande för att möjliggöra snabb och tillräcklig signaltransduktion i nervsystemet. I det perifera nervsystemet engagerar neuroner och Schwann-celler en komplex interaktion för att kontrollera myelineringen av axoner. Störningar av denna interaktion och nedbrytning av myelinskidan är kännetecken för inflammatoriska neuropatier och förekommer sekundärt vid neurodegenerativa störningar. Här presenterar vi en samodlingsmodell av dorsala rotganglieexplantat och Schwann-celler, som utvecklar en robust myelinering av perifera axoner för att undersöka myeliniseringsprocessen i det perifera nervsystemet, studera axon-Schwann-cellinteraktioner och utvärdera de potentiella effekterna av terapeutiska medel på varje celltyp separat. Metodologiskt skördades dorsala rotganglioner av embryonala råttor (E13.5), dissocierades från sin omgivande vävnad och odlades som hela explantat i 3 dagar. Schwannceller isolerades från 3 veckor gamla vuxna råttor och ischiasnerver smältes enzymatiskt. De resulterande Schwann-cellerna renades genom magnetaktiverad cellsortering och odlades under neuregulin- och forskolinberikade förhållanden. Efter 3 dagar av dorsal root ganglion explantkultur tillsattes 30 000 Schwann-celler till en dorsal root ganglion explantat i ett medium innehållande askorbinsyra. De första tecknen på myelinisering upptäcktes på dag 10 av samodling, genom spridda signaler för myelinbasprotein vid immunocytokemisk färgning. Från dag 14 och framåt bildades myelinmantlar och förökades längs axonerna. Myelinisering kan kvantifieras genom myelinbasisk proteinfärgning som ett förhållande mellan myeliniseringsområdet och axonområdet för att ta hänsyn till skillnaderna i axonal densitet. Denna modell ger experimentella möjligheter att studera olika aspekter av perifer myelinisering in vitro, vilket är avgörande för att förstå patologin och möjliga behandlingsmöjligheter för demyelinisering och neurodegeneration vid inflammatoriska och neurodegenerativa sjukdomar i det perifera nervsystemet.

Introduction

I det perifera nervsystemet (PNS) förmedlas snabb informationstransduktion av myelinlindade axoner. Myelineringen av axoner är avgörande för att möjliggöra snabb utbredning av elektriska impulser, eftersom nervfibrernas ledningshastighet korrelerar med axondiametern och myelintjockleken1. Sensorisk signalering från periferin till centrala nervsystemet (CNS) bygger på aktivering av första ordningens sensoriska neuroner som ligger i utvidgningar av dorsalroten, kallad dorsala rotganglier (DRG). För bildning och underhåll av myelin är kontinuerlig kommunikation mellan axoner och Schwann-celler, vilka är de myeliniserande Glia-cellerna i PNS, obligatorisk2.

Många sjukdomar i PNS stör överföringen av information genom antingen primär axonal eller demyeliniserande skada, vilket resulterar i hypestesi eller dysestesi. Första ordningens sensoriska neuroner har förmågan att regenerera i viss utsträckning efter neuronal skada, genom en komplex interaktion mellan neuronen och omgivande Schwann-celler3. I detta fall kan Schwann-celler genomgå cellulär omprogrammering för att rensa axonalt såväl som myelinskräp och främja axonal regenerering, vilket resulterar i remyelinering4. Att förstå mekanismerna för myelinisering vid hälsa och sjukdom är viktigt för att hitta möjliga behandlingsalternativ för demyeliniserande störningar i PNS. Myelin kan också skadas av akut neurotrauma, och metoder för att främja myelinisering för att främja funktionell återhämtning efter perifer nervskada undersöks5.

Vår kunskap om perifer myelinisering har till stor del gynnats av myeliniserande samkulturer av Schwann-celler och sensoriska neuroner. Sedan de första metoderna tillämpades 6,7,8 har myelinisering studerats intensivt med användning av olika samkultursystem9,10,11. Här tillhandahåller vi ett snabbt och enkelt protokoll för robust in vitro-myelinering av dorsalrotganglieaxoner. Protokollet för Schwann-cellberedning är baserat på protokollet av Andersen et al.12, tidigare publicerat i Pitarokoili et al.13. Vi använder Schwann-celler som härrör från unga råttor och embryonala DRG-explantkulturer för samkulturen, där myelinisering sker runt dag 14. Målet med metoden är att tillhandahålla ett system för att undersöka bildandet av myelin som ett resultat av direkt axon-Schwann-cellinteraktion, och att studera modulatorer av PNS-myelinisering. I jämförelse med dissocierade neuronala cellkulturer är DRG-explantat mer anatomiskt bevarade och bildar långa axonala processer. Kvantifiering av det myeliniserade axonområdet ger en tillräcklig avläsning för myelinisering i samkulturen. Metoden är ett värdefullt verktyg för att screena terapeutiska substanser för deras potentiella effekt på PNS-myelinisering, och kan även användas som tillägg till in vivo-studier i djurmodeller14.

Protocol

Alla försök utfördes i enlighet med Europeiska gemenskapernas rådsdirektiv för vård och användning av försöksdjur. 1. Schwann cellodling Beläggning för Schwann-cellodlingBelägg cellodlingsrätterna under sterila förhållanden. Applicera 2 ml 0,01% poly-L-lysin (PLL) på två 60 mm vävnadsodlingsrätter (TC) vardera och inkubera över natten vid 4 °C. Ta bort PLL, tvätta TC-diskarna 2x med destillerat vatten och inkubera med 2 ml 1 ?…

Representative Results

Myelinisering i samkulturen bedömdes dag 10, 12, 14, 16, 18 och 20. DRG-explantaterna och Schwann-cellerna färgades för MBP, βIII-tubulin och DAPI. Axonalnätverket i samkulturen var tätt och förändrades inte synligt under observationens tidsförlopp. De första tecknen på myelin, i form av små fragment, detekterades på dag 10 och ökade på dag 12 (figur 2). De MBP-positiva områdena ökade över tid fram till dag 20 av kulturen. Myeliniseringen kvantifierades som ett förhålland…

Discussion

Här presenterar vi ett snabbt och enkelt protokoll för generering av in vitro-myelinering genom att slå samman två separata celltypkulturer, Schwann-celler och dorsalrotganglionexplantat.

Ett kritiskt steg i protokollet är odling av DRG-explantat, särskilt under de första dagarna av kulturen. DRG är mycket ömtåliga innan ett starkt axonalt nätverk byggs och måste hanteras mycket försiktigt, till exempel när de tas ut ur inkubatorn eller vid byte av medium. DRG som lossna…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Prof. Dr. Ralf Gold och PD Dr. Gisa Ellrichmann för deras råd och stöd.

Materials

Anti-MBP, rabbit Novus Biologicals, Centannial, USA ABIN446360
Anti-ßIII-tubulin, mouse  Biolegend, San Diego, USA 657402
Ascorbic acid  Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  A4403-100MG
B27-supplement Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  17504-044
Biosphere Filter Tip, 100 µL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  70760212
Biosphere Filter Tip, 1250 µL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  701186210
Biosphere Filter Tip, 20 µL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  701114210
Biosphere Filter Tip, 300 µL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  70765210
Bovine serum albumin Carl Roth, Karlsruhe, Germany  8076.4
Cell strainer, 100 µM BD Bioscience, Heidelberg, Germany 352360
Centrifuge 5810-R Eppendorf AG, Hamburg, Germany 5811000015
CO2 Incubator Heracell Heraeus Instruments, Hanau, Germany  51017865
Coverslips 12 mm Carl Roth, Karlsruhe, Germany  P231.1
Curved fine forceps  Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany 11370-42
DAPI fluoromount-G(R) Biozol, Eching, Germany SBA-0100-20
Dispase II Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  4942078001
Distilled water (Water Purification System)  Millipore, Molsheim, France ZLXS5010Y
DMEM/F-12, GlutaMAX Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  31331093
DPBS (no Ca2+ and no Mg2+) Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  D8537-6X500ML
Ethanol  VWR, Radnor, USA  1009862500
FCS Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  F7524 FCS must be tested for Schwann cell culture
Fine forceps (Dumont #5) Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany 11252-20
Forceps Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany 11370-40
Forskolin Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  F6886-10MG
Gelatin Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  G1393-20ML
Gentamycin Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany 5710064
Goat anti-mouse IgG Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  A11036
Goat anti-rabbit IgG Alexa Fluor 568 Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  A11001
HBSS (no Ca2+ and no Mg2+ Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  14170138
HERAcell Incubator Heraeus Instruments, Hanau, Germany  51017865
Heraguard ECO 1.2 Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  51029882
Horse serum Pan-Biotech, Aidenbach, Germany P30-0712
Image J Software HIH, Bethesda, USA
Laminin Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  L2020-1MG
Leibovitz´s L-15 Medium Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  11415064
L-Glutamine 200 mM  Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  25030024
MACS Multistand  Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany 130042303
Microscissors Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany 15000-08
Microscope  Motic, Wetzlar, Germany Motic BA 400
Microscope Axio observer 7 Zeiss, Oberkochen, Germany  491917-0001-000
Microscope slide VWR, Radnor, USA  630-1985
MiniMACS separator Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany 130091632
MS columns Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany 130-042-201
Neubauer counting chamber  Assistant, Erlangen, Germany 40441  
Neuregulin Peprotech, Rocky Hill, USA 100-03
Neurobasal medium  Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  21103049
NGF Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  N1408
Normal goat serum Biozol, Eching, Germany S-1000
Nunclon Δ multidishes, 4 well Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  D6789
Paraformaldehyde Acros Organics, New Jersey, USA  10342243
Penicillin/Streptomycin Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  15140-122
Pipetboy Eppendorf AG, Hamburg, Germany 4430000018 
Pipettes Eppendorf AG, Hamburg, Germany 2231300004
Poly-D-Lysin Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  P6407-5MG
Poly-L-Lysin Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  P4707-50ML
Reaction tubes, 15 mL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  62554502
Reaction tubes, 50 mL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  62547254
Reaction vessels, 1.5 mL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  72690001
Safety Cabinet S2020 1.8 Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  51026640
Scissors Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany 14083-08
Serological pipette, 10 mL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  861254025
Serological pipette, 25 mL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  861685001
Serological pipette, 5 mL Sarstedt, Nümbrecht, Germany  861253001
Spatula Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany 10094-13
Stereomicroscope Discovery.V8 Zeiss, Oberkochen, Germany  495015-0012-000 
Surgical scissors Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany 14007-14
TC dish 100, cell + Sarstedt, Nümbrecht, Germany  833902300
TC dish 35, cell + Sarstedt, Nümbrecht, Germany  833900300
TC dish 60, cell + Sarstedt, Nümbrecht, Germany  833901300
Thy-1 Microbeads (MACS Kit) Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany 130-094-523
Triton X-100  Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  X100-500ML
Trypan Blue Solution 0.4%  Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  15250061
Trypsin (2.5%), no phenol red Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  15090-046
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany  25300-054
Type I Collagenase Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany  C1639
Water bath type 1008 GFL, Burgwedel, Germany  4285

References

  1. Lee, K. H., Chung, K., Chung, J. M., Coggeshall, R. E. Correlation of cell body size, axon size, and signal conduction velocity for individually labelled dorsal root ganglion cells in the cat. The Journal of Comparative Neurology. 243 (3), 335-346 (1986).
  2. Taveggia, C. Schwann cells-axon interaction in myelination. Current Opinion in Neurobiology. 39, 24-29 (2016).
  3. Gordon, T. Peripheral nerve regeneration and muscle reinnervation. International Journal of Molecular Sciences. 21 (22), 8652 (2020).
  4. Nocera, G., Jacob, C. Mechanisms of Schwann cell plasticity involved in peripheral nerve repair after injury. Cellular and Molecular Life Sciences. 77 (20), 3977-3989 (2020).
  5. Modrak, M., Talukder, M. A. H., Gurgenashvili, K., Noble, M., Elfar, J. C. Peripheral nerve injury and myelination: Potential therapeutic strategies. Journal of Neuroscience Research. 98 (5), 780-795 (2020).
  6. Salzer, J. L., Bunge, R. P., Glaser, L. Studies of Schwann cell proliferation. III. Evidence for the surface localization of the neurite mitogen. The Journal of Cell Biology. 84 (3), 767-778 (1980).
  7. Wood, P. M., Bunge, R. P. Evidence that sensory axons are mitogenic for Schwann cells. Nature. 256 (5519), 662-664 (1975).
  8. Eldridge, C. F., Bunge, M. B., Bunge, R. P., Wood, P. M. Differentiation of axon-related Schwann cells in vitro. I. Ascorbic acid regulates basal lamina assembly and myelin formation. The Journal of Cell Biology. 105 (2), 1023-1034 (1987).
  9. Paivalainen, S., et al. Myelination in mouse dorsal root ganglion/Schwann cell cocultures. Molecular and Cellular Neuroscience. 37 (3), 568-578 (2008).
  10. Clark, A. J., et al. Co-cultures with stem cell-derived human sensory neurons reveal regulators of peripheral myelination. Brain. 140 (4), 898-913 (2017).
  11. Taveggia, C., Bolino, A. DRG neuron/Schwann cells myelinating cocultures. Methods in Molecular Biology. 1791, 115-129 (2018).
  12. Andersen, N. D., Srinivas, S., Pinero, G., Monje, P. V. A rapid and versatile method for the isolation, purification and cryogenic storage of Schwann cells from adult rodent nerves. Scientific Reports. 6, 31781 (2016).
  13. Pitarokoili, K., et al. Intrathecal triamcinolone acetonide exerts anti-inflammatory effects on Lewis rat experimental autoimmune neuritis and direct anti-oxidative effects on Schwann cells. Journal of Neuroinflammation. 16 (1), 58 (2019).
  14. Grüter, T., et al. Immunomodulatory and anti-oxidative effect of the direct TRPV1 receptor agonist capsaicin on Schwann cells. Journal of Neuroinflammation. 17 (1), 145 (2020).
  15. Lehmann, H. C., Höke, A. Schwann cells as a therapeutic target for peripheral neuropathies. CNS & Neurological Disorders – Drug Targets. 9 (6), 801-806 (2010).
  16. Joshi, A. R., et al. Loss of Schwann cell plasticity in chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy (CIDP). Journal of Neuroinflammation. 13 (1), 255 (2016).
  17. Klimas, R., et al. Dose-dependent immunomodulatory effects of bortezomib in experimental autoimmune neuritis. Brain Communications. 3 (4), (2021).
  18. Szepanowski, F., et al. LPA1 signaling drives Schwann cell dedifferentiation in experimental autoimmune neuritis. Journal of Neuroinflammation. 18 (1), 293 (2021).
check_url/64768?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Blusch, A., Sgodzai, M., Rilke, N., Motte, J., König, J., Pitarokoili, K., Grüter, T. In Vitro Myelination of Peripheral Axons in a Coculture of Rat Dorsal Root Ganglion Explants and Schwann Cells. J. Vis. Exp. (192), e64768, doi:10.3791/64768 (2023).

View Video