Summary

Nye in vivo mikrocomputertomografibilleddannelsesteknikker til vurdering af progressionen af ikke-alkoholisk fedtleversygdom

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

Ved hjælp af en diætinduceret ikke-alkoholisk fedtleversygdom (NAFLD) musemodel beskriver vi brugen af nye in vivo mikrocomputertomografibilleddannelsesteknikker som en ikke-invasiv metode til vurdering af progressionsstadierne af NAFLD, overvejende med fokus på det hepatiske vaskulære netværk på grund af dets betydelige involvering i NAFLD-relateret leverdysregulering.

Abstract

Ikke-alkoholisk fedtleversygdom (NAFLD) er et voksende globalt sundhedsproblem, og virkningen af NAFLD forværres af den nuværende mangel på effektive behandlinger. Betydelige begrænsende faktorer, der hindrer rettidig og nøjagtig diagnose (herunder klassificering) og overvågning af NAFLD samt udvikling af potentielle terapier, er de nuværende mangler i karakteriseringen af den hepatiske mikromiljøstruktur og scoringen af sygdomsstadiet på en rumlig tidsmæssig og ikke-invasiv måde. Ved hjælp af en diætinduceret NAFLD-musemodel undersøgte vi brugen af in vivo mikrocomputertomografi (CT) billeddannelsesteknikker som en ikke-invasiv metode til at vurdere progressionsstadierne af NAFLD med overvejende fokus på det hepatiske vaskulære netværk på grund af dets betydelige involvering i NAFLD-relateret leverdysregulering. Denne billeddannelsesmetode muliggør langsgående analyse af leversteatose og funktionel vævsoptagelse samt evaluering af det relative blodvolumen, portalvenediameter og densitet af det vaskulære netværk. Forståelse af tilpasningerne af det hepatiske vaskulære netværk under NAFLD-progression og korrelering af dette med andre måder at karakterisere sygdomsprogressionen (steatose, inflammation, fibrose) ved hjælp af den foreslåede metode kan bane vejen for etablering af nye, mere effektive og reproducerbare tilgange til NAFLD-forskning i mus. Denne protokol forventes også at opgradere værdien af prækliniske dyremodeller til undersøgelse af udviklingen af nye terapier mod sygdomsprogression.

Introduction

Ikke-alkoholisk fedtleversygdom (NAFLD) er en metabolisk sygdom, der rammer ca. 25% af befolkningen og >80% af sygeligt overvægtige mennesker1. Det anslås, at en tredjedel af disse personer udvikler sig til ikke-alkoholisk steatohepatitis (NASH), som er karakteriseret ved hepatisk steatose, betændelse og fibrose2. NASH er et sygdomsstadium med en signifikant højere risiko for udvikling af cirrose og hepatocellulært karcinom (HCC)3,4. Af denne grund er NASH i øjeblikket den næsthyppigste årsag til levertransplantation, og det forventes også snart at blive den vigtigste forudsigelse for levertransplantation 5,6,7. På trods af dens udbredelse og sværhedsgrad er der ingen sygdomsspecifik terapi tilgængelig for NAFLD, og de eksisterende behandlinger sigter kun mod at tackle sygdomsassocierede patologier såsom insulinresistens og hyperlipidæmi 5,6.

I de senere år har den patofysiologiske rolle og tilpasninger af endotelet og generelt af det vaskulære netværk af metaboliske væv, såsom fedtvæv og lever, fået større betydning i forskning, især under fedme og metabolisk dysregulering 7,8. Endotelet er et cellulært monolag, der linjer det vaskulære netværk internt og fungerer som en funktionel og strukturel barriere. Det bidrager også til forskellige fysiologiske og patologiske processer, såsom trombose, metabolittransport, inflammation og angiogenese 9,10. I tilfælde af leveren er det vaskulære netværk blandt andet karakteriseret ved tilstedeværelsen af højt specialiserede celler, defineret som lever sinusformede endotelceller (LSEC’er). Disse celler mangler en kældermembran og har flere fenestrae, hvilket muliggør lettere overførsel af substrater mellem blod og leverparenchyma. På grund af deres karakteristiske anatomiske placering og egenskaber har LSEC’er sandsynligvis en afgørende rolle i leverens patofysiologiske processer, herunder udvikling af leverbetændelse og fibrose under NAFLD / NASH. Faktisk bidrager de patologiske, molekylære og cellulære tilpasninger, som LSEC’er gennemgår i løbet af NAFLD, til sygdomsprogressionen11. Specifikt er den LSEC-afhængige hepatiske angiogenese, der finder sted under NAFLD, signifikant forbundet med udviklingen af inflammation og sygdommens progression til NASH eller endda HCC12. Desuden er fedmerelateret tidlig NAFLD karakteriseret ved udviklingen af insulinresistens i LSEC’er, som går forud for udviklingen af leverbetændelse eller andre avancerede NAFLD-tegn13.

Derudover er LSEC’er for nylig opstået som centrale regulatorer af hepatisk blodgennemstrømning og vaskulære netværkstilpasninger under leversygdom af flere ætiologier14,15. Faktisk er kronisk leversygdom karakteriseret ved fremtrædende intra-hepatisk vasokonstriktion og øget modstand mod blodgennemstrømning, hvilket bidrager til udviklingen af portalhypertension16. I tilfælde af NAFLD bidrager flere LSEC-relaterede mekanismer til dette fænomen. For eksempel er LSEC-specifik insulinresistens, som nævnt ovenfor, forbundet med reduceret insulinafhængig vasodilatation af levervaskulaturen13. Desuden bliver levervaskulaturen i løbet af sygdommen mere følsom over for vasokonstriktorer, hvilket yderligere bidrager til forringelse af leverblodgennemstrømningen og fører til fremkomsten af forskydningsstress, hvilket begge resulterer i en forstyrrelse af den sinusformede mikrocirkulation17. Disse fakta tyder på, at vaskulaturen er et centralt mål i leversygdom. Ikke desto mindre er begrænsende faktorer, der hindrer rettidig diagnose og overvågning af NAFLD / NASH samt udviklingen af potentielle terapier, manglerne i den konsekvente karakterisering af det hepatiske mikromiljø og (mikro) vaskulære struktur samt scoring af sygdomsstadiet på en rumlig tidsmæssig og ikke-invasiv måde.

Mikrocomputertomografi (CT) billeddannelse er i øjeblikket den guldstandard ikke-invasive billeddannelsesmetode til nøjagtigt at skildre anatomisk information i en levende organisme. Micro-CT og MR repræsenterer to komplementære billeddannelsesmetoder, der kan dække en lang række patologier og give enestående opløsning og detaljer i de afbildede strukturer og væv. Især mikro-CT er et meget hurtigt og præcist værktøj, der ofte bruges til at studere patologier som knoglesygdomme og tilhørende knogleoverfladeændringer18, vurdere udviklingen af lungefibrose over tid19, diagnosticere lungekræft og dens iscenesættelse20 eller endda undersøge tandpatologier21 uden nogen særlig forberedelse (eller ødelæggelse) af prøverne, der afbildes.

Billeddannelsesteknologien for mikro-CT er baseret på forskellige organers forskellige dæmpningsegenskaber med hensyn til interaktionen mellem røntgenstråler og stof. Organer med høje røntgendæmpningsforskelle er afbildet med høj kontrast i CT-billeder (dvs. lungerne ser mørke ud og knoglerne lyse). Organer med meget ens dæmpningsegenskaber (forskellige bløde væv) er udfordrende at skelne på CT-billeder22. For at løse denne begrænsning er specialiserede kontrastmidler baseret på jod, guld og vismut blevet grundigt undersøgt til in vivo-brug . Disse midler ændrer svækkelsesegenskaberne af det væv, hvori de akkumuleres, fjernes langsomt fra kredsløbet og muliggør ensartet og stabil opacifikation af hele vaskulærsystemet eller udvalgte væv23.

I human diagnostik anvendes CT-billeddannelse og sammenlignelige teknikker, såsom MR-afledt protondensitetsfedtfraktion, allerede til bestemmelse af leverfedtindhold24,25. I forbindelse med NAFLD er høj bløddelskontrast afgørende for nøjagtigt at skelne patologiske læsioner eller små kar. Til dette formål anvendes kontrastmidler, der giver forbedret kontrast mellem levervævets egenskaber. Sådanne værktøjer og materialer muliggør undersøgelse af flere leverkarakteristika og mulige patologiske udtryk, såsom arkitekturen og densiteten af det vaskulære netværk, lipidaflejring / steatose og funktionel vævsoptagelse / lipid (chylomicron) overførsel i leveren. Derudover kan leverens relative blodvolumen og portalvenediameter også evalueres. På meget kort scanningstid giver alle disse parametre forskellige og komplementære oplysninger om evaluering og progression af NAFLD, som kan bruges til at udvikle en ikke-invasiv og detaljeret diagnose.

I denne artikel giver vi en trinvis protokol til brug af nye in vivo mikro-CT-billeddannelsesteknikker som en ikke-invasiv metode til vurdering af progressionsstadierne af NAFLD. Ved hjælp af denne protokol kan den langsgående analyse af leversteatose og funktionel vævsoptagelse samt evalueringen af det relative blodvolumen, portalvenediameter og densitet af det vaskulære netværk udføres og anvendes i musemodeller af leversygdom.

Protocol

Alle procedurer blev udført af BIOEMTECHs personale i overensstemmelse med europæiske og nationale velfærdsbestemmelser og blev godkendt af nationale myndigheder (licensnummer EL 25, BIOexp 45/PN 49553, 21/01/20). Alle eksperimenter blev designet og rapporteret i overensstemmelse med ARRIVE-retningslinjerne26. Musene blev købt fra Hellenic Pasteur Institute, Athen, Grækenland. BEMÆRK: Dyrene blev opstaldet i individuelt ventilerede bure beriget med skinner og papr…

Representative Results

I denne repræsentative undersøgelse indikerede mikro-CT-billeddannelse uden kontrastmiddel en højere procentdel af leverfedt hos mus med NAFLD sammenlignet med kontroller (tabel 2), hvilket bekræftede patologien. Ved anvendelse af ExiTron-kontrastmidlet og hepatisk vaskulær netværksarkitektur og densitetsanalyse beskrevet ovenfor blev den totale volumentæthed af det hepatiske vaskulære netværk fundet at være højere hos mus med NAFLD sammenlignet med raske kontroller (figur…

Discussion

Den nuværende anbefalede metode til NAFLD-diagnose og iscenesættelse hos mennesker er leverbiopsi, som rummer risikoen for blødningskompleksitet samt prøveudtagningsunøjagtigheder40. Tværtimod, i dyremodeller udføres en sådan diagnose ved histologi post mortem, selvom protokoller for overlevelsesdygtig leverbiopsi nu er tilgængelige og anbefales, når undersøgelsesdesignet tillader41. Anvendelsen af post mortem histologi betyder, at et stort antal dyr er forpligte…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Figur 1 blev oprettet med BioRender.com. Dette arbejde blev støttet af Hellenic Foundation for Research and Innovation (#3222 til A.C.). Anna Hadjihambi er finansieret af The Roger Williams Institute of Hepatology, Foundation for Liver Research.

Materials

eXIA160 Binitio Biomedical, Inc. https://www.binitio.com/?Page=Products
High fat diet with 60% of kilocalories from fat Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12492
High-fructose corn syrup  Best flavors, CA hfcs-1gallon
Lacrinorm ophthalmic ointment  Bausch & Lomb
Normal diet with 10% of kilocalories from fat  Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12450
Viscover ExiTron nano 12000  Milteny Biotec, Bergisch Gladbach, Germany 130-095-698
VivoQuant Invicro
X-CUBE  Molecubes, Belgium https://www.molecubes.com/systems/

References

  1. Lazarus, J. V., et al. Advancing the global public health agenda for NAFLD: A consensus statement. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 19 (1), 60-78 (2022).
  2. Takahashi, Y., Fukusato, T. Histopathology of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis. World Journal of Gastroenterology. 20 (42), 15539-15548 (2014).
  3. Huang, D. Q., El-Serag, H. B., Loomba, R. Global epidemiology of NAFLD-related HCC: Trends, predictions, risk factors and prevention. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 18 (4), 223-238 (2021).
  4. Niederseer, D., Wernly, B., Aigner, E., Stickel, F., Datz, C. NAFLD and cardiovascular diseases: Epidemiological, mechanistic and therapeutic considerations. Journal of Clinical Medicine. 10 (3), 467 (2021).
  5. Lefere, S., et al. Differential effects of selective- and pan-PPAR agonists on experimental steatohepatitis and hepatic macrophages. Journal of Hepatology. 73 (4), 757-770 (2020).
  6. Chrysavgis, L., Papatheodoridi, A. M., Chatzigeorgiou, A., Cholongitas, E. The impact of sodium glucose co-transporter 2 inhibitors on non-alcoholic fatty liver disease.Journal of Gastroenterology and Hepatology. Journal of Gastroenterology and Hepatology. 36 (4), 893-909 (2021).
  7. Li, M., Qian, M., Xu, J. Vascular endothelial regulation of obesity-associated insulin resistance. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 4, 51 (2017).
  8. Pi, X., Xie, L., Patterson, C. Emerging roles of vascular endothelium in metabolic homeostasis. Circulation Research. 123 (4), 477-494 (2018).
  9. Chiu, J. J., Chien, S. Effects of disturbed flow on vascular endothelium: Pathophysiological basis and clinical perspectives. Physiological Reviews. 91 (1), 327-387 (2011).
  10. Koyama, Y., Brenner, D. A. Liver inflammation and fibrosis. The Journal of Clinical Investigation. 127 (1), 55-64 (2017).
  11. Nasiri-Ansari, N., et al. Endothelial cell dysfunction and non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD): A concise review. Cells. 11 (16), 2511 (2022).
  12. Lefere, S., et al. Angiopoietin-2 promotes pathological angiogenesis and is a therapeutic target in murine non-alcoholic fatty liver disease. Hepatology. 69 (3), 1087-1104 (2019).
  13. Pasarin, M., et al. Insulin resistance and liver microcirculation in a rat model of early NAFLD. Journal of Hepatology. 55 (5), 1095-1102 (2011).
  14. Hammoutene, A., Rautou, P. E. Role of liver sinusoidal endothelial cells in non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 70 (6), 1278-1291 (2019).
  15. Sun, X., Harris, E. N. New aspects of hepatic endothelial cells in physiology and non-alcoholic fatty liver disease. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 318 (6), C1200-C1213 (2020).
  16. Iwakiri, Y., Shah, V., Rockey, D. C. Vascular pathobiology in chronic liver disease and cirrhosis – current status and future directions. Journal of Hepatology. 61 (4), 912-924 (2014).
  17. Baffy, G. Origins of portal hypertension in non-alcoholic fatty liver disease. Digestive Diseases and Sciences. 63 (3), 563-576 (2018).
  18. Ruhli, F. J., Kuhn, G., Evison, R., Muller, R., Schultz, M. Diagnostic value of micro-CT in comparison with histology in the qualitative assessment of historical human skull bone pathologies. American Journal of Physical Anthropology. 133 (4), 1099-1111 (2007).
  19. Rodt, T., et al. Micro-computed tomography of pulmonary fibrosis in mice induced by adenoviral gene transfer of biologically active transforming growth factor-beta1. Respiratory Research. 11 (1), 181 (2010).
  20. Deng, L., Xiao, S. M., Qiang, J. W., Li, Y. A., Zhang, Y. Early lung adenocarcinoma in mice: Micro-computed tomography manifestations and correlation with pathology. Translational Oncology. 10 (3), 311-317 (2017).
  21. Feng, J., et al. Abnormalities in the enamel in bmp2-deficient mice. Cells, Tissues, Organs. 194 (2-4), 216-221 (2011).
  22. Kagadis, G. C., Loudos, G., Katsanos, K., Langer, S. G., Nikiforidis, G. C. In vivo small animal imaging: current status and future prospects. Medical Physics. 37 (12), 6421-6442 (2010).
  23. Starosolski, Z., et al. Ultra high-resolution in vivo computed tomography imaging of mouse cerebrovasculature using a long circulating blood pool contrast agent. Scientific Reports. 5, 10178 (2015).
  24. Caussy, C., Reeder, S. B., Sirlin, C. B., Noninvasive Loomba, R. quantitative assessment of liver fat by MRI-PDFF as an endpoint in NASH trials. Hepatology. 68 (2), 763-772 (2018).
  25. Lubura, M., et al. Non-invasive quantification of white and brown adipose tissues and liver fat content by computed tomography in mice. PLoS One. 7 (5), e37026 (2012).
  26. Perciedu Sert, N., et al. The ARRIVE guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 18 (7), e3000410 (2020).
  27. Tetri, L. H., Basaranoglu, M., Brunt, E. M., Yerian, L. M., Neuschwander-Tetri, B. A. Severe NAFLD with hepatic necroinflammatory changes in mice fed trans fats and a high-fructose corn syrup equivalent. American Journal of Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 295 (5), G987-G995 (2008).
  28. Machado, M. V., et al. Mouse models of diet-induced non-alcoholic steatohepatitis reproduce the heterogeneity of the human disease. PLoS One. 10 (5), 0127991 (2015).
  29. Jensen, T., et al. Fructose and sugar: A major mediator of non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 68 (5), 1063-1075 (2018).
  30. Nevzorova, Y. A., Boyer-Diaz, Z., Cubero, F. J., Gracia-Sancho, J. Animal models for liver disease – A practical approach for translational research. Journal of Hepatology. 73 (2), 423-440 (2020).
  31. De Rudder, M., et al. Automated computerized image analysis for the user-independent evaluation of disease severity in preclinical models of NAFLD/NASH. Laboratory Investigation. 100 (1), 147-160 (2020).
  32. Willekens, I., et al. Time-course of contrast enhancement in spleen and liver with Exia 160, Fenestra LC, and VC. Molecular Imaging and Biology. 11 (2), 128-135 (2009).
  33. Das, N. M., et al. In vivo quantitative microcomputed tomographic analysis of vasculature and organs in a normal and diseased mouse model. PLoS One. 11 (2), e0150085 (2016).
  34. Ehling, J., et al. CCL2-dependent infiltrating macrophages promote angiogenesis in progressive liver fibrosis. Gut. 63 (12), 1960-1971 (2014).
  35. Zhang, J., et al. Gamna-Gandy bodies of the spleen detected with susceptibility weighted imaging: maybe a new potential non-invasive marker of esophageal varices. PLoS One. 8 (1), e55626 (2013).
  36. Chen, Y., Li, J., Zhou, Q., Lyu, G., Li, S. Detection of liver and spleen stiffness in rats with portal hypertension by two-dimensional shear wave elastography. BMC Medical Imaging. 22 (1), 68 (2022).
  37. Lessa, A. S., et al. Ultrasound imaging in an experimental model of fatty liver disease and cirrhosis in rats. BMC Veterinary Research. 6, 6 (2010).
  38. Abikhzer, G., Alabed, Y. Z., Azoulay, L., Assayag, J., Rush, C. Altered hepatic metabolic activity in patients with hepatic steatosis on FDG PET/CT. AJR. American Journal of Roentgenology. 196 (1), 176-180 (2011).
  39. Newman, E. M., Rowland, A. A physiologically based pharmacokinetic model to predict the impact of metabolic changes associated with metabolic associated fatty liver disease on drug exposure. International Journal of Molecular Sciences. 23 (19), 11751 (2022).
  40. Tsai, E., Lee, T. P. Diagnosis and evaluation of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis, including noninvasive biomarkers and transient elastography. Clinics in Liver Disease. 22 (1), 73-92 (2018).
  41. Oldham, S., Rivera, C., Boland, M. L., Trevaskis, J. L. Incorporation of a survivable liver biopsy procedure in mice to assess non-alcoholic steatohepatitis (NASH) resolution. Journal of Visualized Experiments. 146, e59130 (2019).
  42. Boll, H., et al. Comparison of Fenestra LC, ExiTron nano 6000, and ExiTron nano 12000 for micro-CT imaging of liver and spleen in mice. Academic Radiology. 20 (9), 1137-1143 (2013).
  43. Ashton, J. R., West, J. L., Badea, C. T. In vivo small animal micro-CT using nanoparticle contrast agents. Frontiers in Pharmacology. 6, 256 (2015).
  44. Rothe, J. H., et al. Time course of contrast enhancement by micro-CT with dedicated contrast agents in normal mice and mice with hepatocellular carcinoma: Comparison of one iodinated and two nanoparticle-based agents. Academic Radiology. 22 (2), 169-178 (2015).
  45. Toczek, J., et al. Computed tomography imaging of macrophage phagocytic activity in abdominal aortic aneurysm. Theranostics. 11 (12), 5876-5888 (2021).
  46. Mannheim, J. G., et al. Comparison of small animal CT contrast agents. Contrast Media & Molecular Imaging. 11 (4), 272-284 (2016).
check_url/64838?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hadjihambi, A., Velliou, R., Tsialios, P., Legaki, A., Chatzigeorgiou, A., Rouchota, M. G. Novel In Vivo Micro-Computed Tomography Imaging Techniques for Assessing the Progression of Non-Alcoholic Fatty Liver Disease. J. Vis. Exp. (193), e64838, doi:10.3791/64838 (2023).

View Video