Summary

Nieuwe in vivo micro-computertomografie beeldvormingstechnieken voor het beoordelen van de progressie van niet-alcoholische leververvetting

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

Met behulp van een dieet-geïnduceerde niet-alcoholische leververvetting (NAFLD) muismodel, beschrijven we het gebruik van nieuwe in vivo micro-computertomografie beeldvormingstechnieken als een niet-invasieve methode om de progressiestadia van NAFLD te beoordelen, voornamelijk gericht op het hepatische vasculaire netwerk vanwege de significante betrokkenheid bij NAFLD-gerelateerde leverontregeling.

Abstract

Niet-alcoholische leververvetting (NAFLD) is een groeiend wereldwijd gezondheidsprobleem en de impact van NAFLD wordt verergerd door het huidige gebrek aan effectieve behandelingen. Aanzienlijke beperkende factoren die de tijdige en nauwkeurige diagnose (inclusief grading) en monitoring van NAFLD belemmeren, evenals de ontwikkeling van potentiële therapieën, zijn de huidige tekortkomingen in de karakterisering van de hepatische micro-omgevingsstructuur en de score van het ziektestadium op een spatiotemporale en niet-invasieve manier. Met behulp van een dieet-geïnduceerd NAFLD-muismodel onderzochten we het gebruik van in vivo micro-computertomografie (CT) beeldvormingstechnieken als een niet-invasieve methode om de progressiestadia van NAFLD te beoordelen, voornamelijk gericht op het hepatische vasculaire netwerk vanwege de significante betrokkenheid bij NAFLD-gerelateerde leverontregeling. Deze beeldvormingsmethodologie maakt longitudinale analyse van leversteatose en functionele weefselopname mogelijk, evenals de evaluatie van het relatieve bloedvolume, de poortaderdiameter en de dichtheid van het vasculaire netwerk. Het begrijpen van de aanpassingen van het hepatische vasculaire netwerk tijdens NAFLD-progressie en dit correleren met andere manieren om de ziekteprogressie (steatose, ontsteking, fibrose) te karakteriseren met behulp van de voorgestelde methode, kan de weg vrijmaken voor de oprichting van nieuwe, efficiëntere en reproduceerbare benaderingen voor NAFLD-onderzoek bij muizen. Dit protocol zal naar verwachting ook de waarde van preklinische diermodellen voor het onderzoeken van de ontwikkeling van nieuwe therapieën tegen ziekteprogressie verbeteren.

Introduction

Niet-alcoholische leververvetting (NAFLD) is een stofwisselingsziekte die ongeveer 25% van de bevolking en >80% van de morbide zwaarlijvige mensen treft1. Naar schatting een derde van deze personen ontwikkelt zich tot niet-alcoholische steatohepatitis (NASH), die wordt gekenmerkt door leversteatose, ontsteking en fibrose2. NASH is een ziektestadium met een significant hoger risico op de ontwikkeling van cirrose en hepatocellulair carcinoom (HCC)3,4. Om deze reden is NASH momenteel de tweede meest voorkomende oorzaak van levertransplantatie, en het zal naar verwachting ook binnenkort de belangrijkste voorspeller van levertransplantatieworden 5,6,7. Ondanks de prevalentie en ernst is er geen ziektespecifieke therapie beschikbaar voor NAFLD en zijn de bestaande behandelingen alleen gericht op het aanpakken van ziektegerelateerde pathologieën zoals insulineresistentie en hyperlipidemie 5,6.

In de afgelopen jaren zijn de pathofysiologische rol en aanpassingen van het endotheel en, in het algemeen, van het vasculaire netwerk van metabole weefsels, zoals het vetweefsel en de lever, belangrijker geworden in onderzoek, vooral tijdens obesitas en metabole ontregeling 7,8. Het endotheel is een cellulaire monolaag die het vasculaire netwerk intern bekleedt en fungeert als een functionele en structurele barrière. Het draagt ook bij aan verschillende fysiologische en pathologische processen, zoals trombose, metaboliettransport, ontsteking en angiogenese 9,10. In het geval van de lever wordt het vasculaire netwerk, naast andere kenmerken, gekenmerkt door de aanwezigheid van zeer gespecialiseerde cellen, gedefinieerd als lever sinusoïdale endotheelcellen (LSEC’s). Deze cellen missen een keldermembraan en hebben meerdere fenestrae, waardoor de overdracht van substraten tussen het bloed en leverparenchym gemakkelijker is. Vanwege hun onderscheidende anatomische locatie en kenmerken hebben LSEC’s waarschijnlijk een cruciale rol in de pathofysiologische processen van de lever, waaronder de ontwikkeling van leverontsteking en fibrose tijdens NAFLD / NASH. Inderdaad, de pathologische, moleculaire en cellulaire aanpassingen die LSEC’s ondergaan in de loop van NAFLD dragen bij aan de ziekteprogressie11. In het bijzonder is de LSEC-afhankelijke leverangiogenese die plaatsvindt tijdens NAFLD significant geassocieerd met de ontwikkeling van ontsteking en de progressie van de ziekte naar NASH of zelfs HCC12. Bovendien wordt obesitas-gerelateerde vroege NAFLD gekenmerkt door de ontwikkeling van insulineresistentie in LSEC’s, die voorafgaat aan de ontwikkeling van leverontsteking of andere geavanceerde NAFLD-tekenen13.

Bovendien zijn LSEC’s onlangs naar voren gekomen als centrale regulatoren van hepatische bloedstroom en vasculaire netwerkaanpassingen tijdens leverziekte van verschillende etiologieën14,15. Inderdaad, chronische leverziekte wordt gekenmerkt door prominente intra-hepatische vasoconstrictie en verhoogde weerstand tegen de bloedstroom, die bijdragen aan de ontwikkeling van portale hypertensie16. In het geval van NAFLD dragen verschillende LSEC-gerelateerde mechanismen bij aan dit fenomeen. LSEC-specifieke insulineresistentie, zoals hierboven vermeld, is bijvoorbeeld geassocieerd met verminderde insulineafhankelijke vaatverwijding van de levervasculatuur13. Bovendien wordt de levervasculatuur in de loop van de ziekte gevoeliger voor vasoconstrictoren, wat verder bijdraagt aan een verslechtering van de leverbloedstroom en leidt tot het ontstaan van schuifspanning, die beide resulteren in een verstoring van de sinusoïdale microcirculatie17. Deze feiten suggereren dat de vasculatuur een belangrijk doelwit is bij leverziekte. Niettemin zijn beperkende factoren die de tijdige diagnose en monitoring van NAFLD / NASH belemmeren, evenals de ontwikkeling van potentiële therapieën, de tekortkomingen in de consistente karakterisering van de hepatische micro-omgeving en (micro)vasculaire structuur, evenals de score van het ziektestadium op een spatiotemporale en niet-invasieve manier.

Micro-computertomografie (CT) beeldvorming is momenteel de gouden standaard niet-invasieve beeldvormingsmethode voor het nauwkeurig weergeven van anatomische informatie in een levend organisme. Micro-CT en MRI vertegenwoordigen twee complementaire beeldvormingsmethoden die een breed scala aan pathologieën kunnen bestrijken en uitzonderlijke resolutie en detail bieden in de afgebeelde structuren en weefsels. Micro-CT, in het bijzonder, is een zeer snel en nauwkeurig hulpmiddel dat vaak wordt gebruikt voor het bestuderen van pathologieën zoals botziekten en bijbehorende veranderingen in het botoppervlak18, het beoordelen van de progressie van longfibrose in de loop van de tijd19, het diagnosticeren van longkanker en de stadiëring ervan20, of zelfs het onderzoeken van tandheelkundige pathologieën21, zonder dat een speciale voorbereiding (of vernietiging) van de monsters in beeld wordt gebracht.

De beeldvormingstechnologie van micro-CT is gebaseerd op de verschillende verzwakkingseigenschappen van verschillende organen in termen van de interactie van röntgenstralen met materie. Organen met hoge röntgenverzwakkingsverschillen worden afgebeeld met een hoog contrast in CT-beelden (d.w.z. de longen lijken donker en de botten licht). Organen met zeer vergelijkbare verzwakkingseigenschappen (verschillende zachte weefsels) zijn moeilijk te onderscheiden op CT-beelden22. Om deze beperking aan te pakken, zijn gespecialiseerde contrastmiddelen op basis van jodium, goud en bismut uitgebreid onderzocht voor in vivo gebruik. Deze middelen veranderen de verzwakkingseigenschappen van de weefsels waarin ze zich ophopen, worden langzaam uit de bloedsomloop verwijderd en maken de uniforme en stabiele opacificatie van het gehele vasculaire systeem of gekozen weefsels mogelijk23.

In de menselijke diagnostiek worden CT-beeldvorming en vergelijkbare technieken, zoals MRI-afgeleide protondichtheid vetfractie, al gebruikt voor de bepaling van het levervetgehalte24,25. In de context van NAFLD is een hoog contrast van zacht weefsel essentieel om pathologische laesies of kleine bloedvaten nauwkeurig te onderscheiden. Voor dit doel worden contrastmiddelen gebruikt die een verbeterd contrast van de leverweefselkenmerken bieden. Dergelijke hulpmiddelen en materialen maken de studie van meerdere leverkenmerken en mogelijke pathologie-expressies mogelijk, zoals de architectuur en dichtheid van het vasculaire netwerk, lipideafzetting / steatose en functionele weefselopname / lipide (chylomicron) overdracht in de lever. Bovendien kunnen het relatieve levervolume en de poortaderdiameter ook worden geëvalueerd. In een zeer korte scantijd bieden al deze parameters verschillende en complementaire informatie over de evaluatie en progressie van NAFLD, die kan worden gebruikt om een niet-invasieve en gedetailleerde diagnose te ontwikkelen.

In dit artikel bieden we een stapsgewijs protocol voor het gebruik van nieuwe in vivo micro-CT-beeldvormingstechnieken als een niet-invasieve methode om de progressiestadia van NAFLD te beoordelen. Met behulp van dit protocol kan de longitudinale analyse van leversteatose en functionele weefselopname, evenals de evaluatie van het relatieve bloedvolume, de poortaderdiameter en de dichtheid van het vasculaire netwerk, worden uitgevoerd en toegepast in muismodellen van leverziekte.

Protocol

Alle procedures werden uitgevoerd door het personeel van BIOEMTECH in overeenstemming met de Europese en nationale welzijnsvoorschriften en werden goedgekeurd door de nationale autoriteiten (licentienummer EL 25 BIOexp 45/PN 49553 21/01/20). Alle experimenten werden ontworpen en gerapporteerd met inachtneming van ARRIVE-richtlijnen26. De muizen werden gekocht bij het Hellenic Pasteur Institute, Athene, Griekenland. OPMERKING: De dieren werden gehuisvest in individueel g…

Representative Results

In deze representatieve studie wees micro-CT-beeldvorming zonder enig contrastmiddel op een hoger percentage levervet bij muizen met NAFLD in vergelijking met controles (tabel 2), wat de pathologie bevestigde. Met behulp van het ExiTron-contrastmiddel en de hierboven beschreven analyse van de levervasculaire netwerkarchitectuur en dichtheid, bleek de totale volumedichtheid van het hepatische vasculaire netwerk hoger te zijn bij muizen met NAFLD in vergelijking met gezonde controles (…

Discussion

De huidige aanbevolen methode voor NAFLD-diagnose en stadiëring bij mensen is leverbiopsie, die het risico op bloedingscomplexiteiten herbergt, evenals bemonsteringsonnauwkeurigheden40. Integendeel, in diermodellen wordt een dergelijke diagnose uitgevoerd door histologie post-mortem, hoewel protocollen voor overleefbare leverbiopsie nu beschikbaar zijn en worden aanbevolen wanneer de onderzoeksopzet41 toestaat. Het gebruik van postmortale histologie betekent dat een groot …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Figuur 1 is gemaakt met BioRender.com. Dit werk werd ondersteund door de Hellenic Foundation for Research and Innovation (#3222 tot A.C.). Anna Hadjihambi wordt gefinancierd door het Roger Williams Institute of Hepatology, Foundation for Liver Research.

Materials

eXIA160 Binitio Biomedical, Inc. https://www.binitio.com/?Page=Products
High fat diet with 60% of kilocalories from fat Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12492
High-fructose corn syrup  Best flavors, CA hfcs-1gallon
Lacrinorm ophthalmic ointment  Bausch & Lomb
Normal diet with 10% of kilocalories from fat  Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12450
Viscover ExiTron nano 12000  Milteny Biotec, Bergisch Gladbach, Germany 130-095-698
VivoQuant Invicro
X-CUBE  Molecubes, Belgium https://www.molecubes.com/systems/

References

  1. Lazarus, J. V., et al. Advancing the global public health agenda for NAFLD: A consensus statement. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 19 (1), 60-78 (2022).
  2. Takahashi, Y., Fukusato, T. Histopathology of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis. World Journal of Gastroenterology. 20 (42), 15539-15548 (2014).
  3. Huang, D. Q., El-Serag, H. B., Loomba, R. Global epidemiology of NAFLD-related HCC: Trends, predictions, risk factors and prevention. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 18 (4), 223-238 (2021).
  4. Niederseer, D., Wernly, B., Aigner, E., Stickel, F., Datz, C. NAFLD and cardiovascular diseases: Epidemiological, mechanistic and therapeutic considerations. Journal of Clinical Medicine. 10 (3), 467 (2021).
  5. Lefere, S., et al. Differential effects of selective- and pan-PPAR agonists on experimental steatohepatitis and hepatic macrophages. Journal of Hepatology. 73 (4), 757-770 (2020).
  6. Chrysavgis, L., Papatheodoridi, A. M., Chatzigeorgiou, A., Cholongitas, E. The impact of sodium glucose co-transporter 2 inhibitors on non-alcoholic fatty liver disease.Journal of Gastroenterology and Hepatology. Journal of Gastroenterology and Hepatology. 36 (4), 893-909 (2021).
  7. Li, M., Qian, M., Xu, J. Vascular endothelial regulation of obesity-associated insulin resistance. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 4, 51 (2017).
  8. Pi, X., Xie, L., Patterson, C. Emerging roles of vascular endothelium in metabolic homeostasis. Circulation Research. 123 (4), 477-494 (2018).
  9. Chiu, J. J., Chien, S. Effects of disturbed flow on vascular endothelium: Pathophysiological basis and clinical perspectives. Physiological Reviews. 91 (1), 327-387 (2011).
  10. Koyama, Y., Brenner, D. A. Liver inflammation and fibrosis. The Journal of Clinical Investigation. 127 (1), 55-64 (2017).
  11. Nasiri-Ansari, N., et al. Endothelial cell dysfunction and non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD): A concise review. Cells. 11 (16), 2511 (2022).
  12. Lefere, S., et al. Angiopoietin-2 promotes pathological angiogenesis and is a therapeutic target in murine non-alcoholic fatty liver disease. Hepatology. 69 (3), 1087-1104 (2019).
  13. Pasarin, M., et al. Insulin resistance and liver microcirculation in a rat model of early NAFLD. Journal of Hepatology. 55 (5), 1095-1102 (2011).
  14. Hammoutene, A., Rautou, P. E. Role of liver sinusoidal endothelial cells in non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 70 (6), 1278-1291 (2019).
  15. Sun, X., Harris, E. N. New aspects of hepatic endothelial cells in physiology and non-alcoholic fatty liver disease. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 318 (6), C1200-C1213 (2020).
  16. Iwakiri, Y., Shah, V., Rockey, D. C. Vascular pathobiology in chronic liver disease and cirrhosis – current status and future directions. Journal of Hepatology. 61 (4), 912-924 (2014).
  17. Baffy, G. Origins of portal hypertension in non-alcoholic fatty liver disease. Digestive Diseases and Sciences. 63 (3), 563-576 (2018).
  18. Ruhli, F. J., Kuhn, G., Evison, R., Muller, R., Schultz, M. Diagnostic value of micro-CT in comparison with histology in the qualitative assessment of historical human skull bone pathologies. American Journal of Physical Anthropology. 133 (4), 1099-1111 (2007).
  19. Rodt, T., et al. Micro-computed tomography of pulmonary fibrosis in mice induced by adenoviral gene transfer of biologically active transforming growth factor-beta1. Respiratory Research. 11 (1), 181 (2010).
  20. Deng, L., Xiao, S. M., Qiang, J. W., Li, Y. A., Zhang, Y. Early lung adenocarcinoma in mice: Micro-computed tomography manifestations and correlation with pathology. Translational Oncology. 10 (3), 311-317 (2017).
  21. Feng, J., et al. Abnormalities in the enamel in bmp2-deficient mice. Cells, Tissues, Organs. 194 (2-4), 216-221 (2011).
  22. Kagadis, G. C., Loudos, G., Katsanos, K., Langer, S. G., Nikiforidis, G. C. In vivo small animal imaging: current status and future prospects. Medical Physics. 37 (12), 6421-6442 (2010).
  23. Starosolski, Z., et al. Ultra high-resolution in vivo computed tomography imaging of mouse cerebrovasculature using a long circulating blood pool contrast agent. Scientific Reports. 5, 10178 (2015).
  24. Caussy, C., Reeder, S. B., Sirlin, C. B., Noninvasive Loomba, R. quantitative assessment of liver fat by MRI-PDFF as an endpoint in NASH trials. Hepatology. 68 (2), 763-772 (2018).
  25. Lubura, M., et al. Non-invasive quantification of white and brown adipose tissues and liver fat content by computed tomography in mice. PLoS One. 7 (5), e37026 (2012).
  26. Perciedu Sert, N., et al. The ARRIVE guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 18 (7), e3000410 (2020).
  27. Tetri, L. H., Basaranoglu, M., Brunt, E. M., Yerian, L. M., Neuschwander-Tetri, B. A. Severe NAFLD with hepatic necroinflammatory changes in mice fed trans fats and a high-fructose corn syrup equivalent. American Journal of Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 295 (5), G987-G995 (2008).
  28. Machado, M. V., et al. Mouse models of diet-induced non-alcoholic steatohepatitis reproduce the heterogeneity of the human disease. PLoS One. 10 (5), 0127991 (2015).
  29. Jensen, T., et al. Fructose and sugar: A major mediator of non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 68 (5), 1063-1075 (2018).
  30. Nevzorova, Y. A., Boyer-Diaz, Z., Cubero, F. J., Gracia-Sancho, J. Animal models for liver disease – A practical approach for translational research. Journal of Hepatology. 73 (2), 423-440 (2020).
  31. De Rudder, M., et al. Automated computerized image analysis for the user-independent evaluation of disease severity in preclinical models of NAFLD/NASH. Laboratory Investigation. 100 (1), 147-160 (2020).
  32. Willekens, I., et al. Time-course of contrast enhancement in spleen and liver with Exia 160, Fenestra LC, and VC. Molecular Imaging and Biology. 11 (2), 128-135 (2009).
  33. Das, N. M., et al. In vivo quantitative microcomputed tomographic analysis of vasculature and organs in a normal and diseased mouse model. PLoS One. 11 (2), e0150085 (2016).
  34. Ehling, J., et al. CCL2-dependent infiltrating macrophages promote angiogenesis in progressive liver fibrosis. Gut. 63 (12), 1960-1971 (2014).
  35. Zhang, J., et al. Gamna-Gandy bodies of the spleen detected with susceptibility weighted imaging: maybe a new potential non-invasive marker of esophageal varices. PLoS One. 8 (1), e55626 (2013).
  36. Chen, Y., Li, J., Zhou, Q., Lyu, G., Li, S. Detection of liver and spleen stiffness in rats with portal hypertension by two-dimensional shear wave elastography. BMC Medical Imaging. 22 (1), 68 (2022).
  37. Lessa, A. S., et al. Ultrasound imaging in an experimental model of fatty liver disease and cirrhosis in rats. BMC Veterinary Research. 6, 6 (2010).
  38. Abikhzer, G., Alabed, Y. Z., Azoulay, L., Assayag, J., Rush, C. Altered hepatic metabolic activity in patients with hepatic steatosis on FDG PET/CT. AJR. American Journal of Roentgenology. 196 (1), 176-180 (2011).
  39. Newman, E. M., Rowland, A. A physiologically based pharmacokinetic model to predict the impact of metabolic changes associated with metabolic associated fatty liver disease on drug exposure. International Journal of Molecular Sciences. 23 (19), 11751 (2022).
  40. Tsai, E., Lee, T. P. Diagnosis and evaluation of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis, including noninvasive biomarkers and transient elastography. Clinics in Liver Disease. 22 (1), 73-92 (2018).
  41. Oldham, S., Rivera, C., Boland, M. L., Trevaskis, J. L. Incorporation of a survivable liver biopsy procedure in mice to assess non-alcoholic steatohepatitis (NASH) resolution. Journal of Visualized Experiments. 146, e59130 (2019).
  42. Boll, H., et al. Comparison of Fenestra LC, ExiTron nano 6000, and ExiTron nano 12000 for micro-CT imaging of liver and spleen in mice. Academic Radiology. 20 (9), 1137-1143 (2013).
  43. Ashton, J. R., West, J. L., Badea, C. T. In vivo small animal micro-CT using nanoparticle contrast agents. Frontiers in Pharmacology. 6, 256 (2015).
  44. Rothe, J. H., et al. Time course of contrast enhancement by micro-CT with dedicated contrast agents in normal mice and mice with hepatocellular carcinoma: Comparison of one iodinated and two nanoparticle-based agents. Academic Radiology. 22 (2), 169-178 (2015).
  45. Toczek, J., et al. Computed tomography imaging of macrophage phagocytic activity in abdominal aortic aneurysm. Theranostics. 11 (12), 5876-5888 (2021).
  46. Mannheim, J. G., et al. Comparison of small animal CT contrast agents. Contrast Media & Molecular Imaging. 11 (4), 272-284 (2016).
check_url/64838?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hadjihambi, A., Velliou, R., Tsialios, P., Legaki, A., Chatzigeorgiou, A., Rouchota, M. G. Novel In Vivo Micro-Computed Tomography Imaging Techniques for Assessing the Progression of Non-Alcoholic Fatty Liver Disease. J. Vis. Exp. (193), e64838, doi:10.3791/64838 (2023).

View Video