Summary

Rottemodell av normoterm ex-situ perfusert heterotopisk hjertetransplantasjon

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Her presenterer vi en vurderingsprotokoll av et heterotopisk implantert hjerte etter normoterm ex situ konservering i rottemodellen.

Abstract

Hjertetransplantasjon er den mest effektive behandlingen for hjertesvikt i sluttstadiet. Til tross for forbedringer i terapeutiske tilnærminger og intervensjoner, øker antall hjertesviktpasienter som venter på transplantasjon fortsatt. Den normoterme ex situ preserveringsteknikken er etablert som en sammenlignbar metode med den konvensjonelle statiske kjølelagringsteknikken. Den største fordelen med denne teknikken er at donorhjerter kan bevares i opptil 12 timer i fysiologisk tilstand. Videre tillater denne teknikken gjenoppliving av donorhjertene etter sirkulasjonsdød og bruker nødvendige farmakologiske inngrep for å forbedre donorfunksjonen etter implantasjon. Tallrike dyremodeller har blitt etablert for å forbedre normoterm ex situ bevaringsteknikker og eliminere bevaringsrelaterte komplikasjoner. Selv om store dyremodeller er enkle å håndtere sammenlignet med små dyremodeller, er det kostbart og utfordrende. Vi presenterer en rottemodell med normoterm ex situ donorhjertekonservering etterfulgt av heterotopisk abdominaltransplantasjon. Denne modellen er relativt billig og kan oppnås av en enkelt eksperimentør.

Introduction

Hjertetransplantasjon er fortsatt den eneste levedyktige behandlingen for ildfast hjertesvikt 1,2,3,4. Til tross for en jevn økning i antall pasienter med behov for hjertetransplantasjon, er det ikke observert en proporsjonal økning i tilgjengeligheten av donororganer5. For å løse dette problemet har nye tilnærminger for å bevare donorhjerter blitt utviklet med mål om å forbedre utfordringene og øke tilgjengeligheten av givere 6,7,8,9.

Normothermic ex situ heart perfusion (NESHP) ved bruk av organpleiesystem (OCS) maskiner har dukket opp som en klinisk intervensjon 1,3. Denne teknikken har blitt ansett som et egnet alternativ til konvensjonell statisk kjølelager (SCS) metode 2,9. NESHP reduserer effektivt varigheten av kald iskemi, reduserer metabolsk etterspørsel og letter optimal næringstilførsel og oksygenering under transport av donororganer10,11. Til tross for det klare potensialet i denne metoden for å forbedre bevaring av donororganer, har dens kliniske anvendelse og videre undersøkelse blitt begrenset av høye kostnader. Derfor er prekliniske dyremodeller av NESHP avgjørende for å identifisere viktige tekniske utfordringer knyttet til denne teknikken12,13. Griser og rotter er de foretrukne dyremodellene for prekliniske studier på grunn av deres iskemiske toleranse9. Selv om svinemodellen er ideell for grunnleggende og translasjonsforskning, er den begrenset av høye kostnader og intensiv arbeidskraft som kreves for pleie og vedlikehold. Derimot er rottemodeller rimeligere og enklere å håndtere14.

I denne studien introduserer vi en forenklet rottemodell av NESHP, etterfulgt av heterotopisk hjertetransplantasjon, for å evaluere effekten av konserveringsteknikken på transplantattilstand etter implantasjon. Denne modellen er enkel, kostnadseffektiv og kan utføres av en enkelt eksperimentør. Figur 1 viser skjemaene for prosedyren.

Protocol

Den etiske komiteen ved Laboratory Animal Research Center ved Chonnam National University Hospital (godkjenning nr. CNU IACUC – H – 2022-36) godkjente alle dyreforsøkene. Mannlige Sprague-Dawley-rotter (350-450 g), brukt i denne studien, fikk omsorg i samsvar med retningslinjene for stell og bruk av forsøksdyrene. Rottene ble plassert i temperaturkontrollerte rom med en 12 timers lys-mørk syklus, med standard mat og vann tilgjengelig. 1. Forberedelse <p class="jove_conten…

Representative Results

Figur 1 illustrerer det eksperimentelle designet som ble brukt i en smådyrmodell. Figur 2 viser det modifiserte Langendorff perfusjonsapparatet, som inkluderer en oksygenator for små dyr. Rekkefølgen av anastomose ved heterotopisk abdominalimplantasjon er presentert i figur 3. Figur 4 viser parametrene som brukes til å vurdere hjertets levedyktighet under ex situ…

Discussion

Vårt fokus i å etablere denne modellen var å replikere normoterm human hjertetransplantasjon. Ikke-utstøtende modeller er den vanligste foretrukne teknikken for å bevare donorhjertet i et ex situ-miljø 16. Selv om utkastingsmodeller gir mange fordeler ved vurdering av hjertefunksjon under ex situ perfusjon17, er de ikke egnet for heterotopiske transplantasjonsmodeller. Ved heterotopisk transplantasjon må det implanterte donorhjertet overvinne systol…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av et stipend B2021-0991 fra Chonnam National University Hospital Biomedical Research Institute og NRF-2020R1F1A1073921 fra National Research Foundation of Korea

Materials

AES active evacuation system Smiths medical PC-6769-51A Utilize CO2 and excess isoflurane
Anesthesia machine Smiths medical PC-8801-01A Mixes isoflurane and oxyegn and delivers to animal
B20 patient monitor GE medical systems B20 to observe mean aortic pressure and temperature
Homeothermic Monitoring System Harvard apparatus 55-7020 To monitor and maintain animal's temperature
Micro-1 Rat oxygenator Dongguan Kewei medical instruments Micro-MO For gas exchange in the langendorff circuit
Micropuncture introducer Set COOK medical G48007 for delivering cardioplegic solution to the arch through the abdominal aorta
Microscope Amscope MU1403 For zooming surgical field (Recipient)
Surgical loupe SurgiTel L2S09 For zooming surgical field (Donor)
Syringe pump AMP all SP-8800 To deliver cardioplegic solution
Transonic flow sensor Transonic ME3PXL-M5 Perfusion circuit flow sensor
Transonic tubing flow module Transonic TS410 flow acquiring system
Watson – Marlow pumps Harvard apparatus 010.6131.DAO Peristaltic pump used for recirculate perfusate
WBC-1510A JEIO TECH E03056D Heating bath
Sprague-Dawley rats Samtako Bio Korea Co., Ltd., Osan City Korea
Medications
BioHAnce Gel Eye Drops SENTRIX Animal care wet ointments for eye
Cefazolin JW pharmaceutical For prophilaxis
Custodiol DR, FRANZ KOHLER CHEMIE GMBH For heart harvesting
Diclofenac Myungmoon Pharm. Co. Ltd For pain control
Heparin JW pharmaceutical Anticoagulant
Insulin JW pharmaceutical hormon therapy
Saline JW pharmaceutical For hydration therapy

References

  1. Langmuur, S. J. J., et al. Normothermic ex-situ heart perfusion with the organ care system for cardiac transplantation: A meta-analysis. Transplantation. 106 (9), 1745-1753 (2022).
  2. Ardehali, A., et al. Ex-vivo perfusion of donor hearts for human heart transplantation (PROCEED II): a prospective, open-label, multicentre, randomized non-inferiority trial. Lancet. 385 (9987), 2577-2584 (2015).
  3. Dang Van, S., et al. Ex vivo perfusion of the donor heart: Preliminary experience in high-risk transplantations. Archives of Cardiovascular Diseases. 114 (11), 715-726 (2021).
  4. Zhou, P., et al. Donor heart preservation with hypoxic-conditioned medium-derived from bone marrow mesenchymal stem cells improves cardiac function in a heart transplantation model. Stem Cell Research and Therapy. 12 (1), 5f6 (2021).
  5. Messer, S., Large, S. Resuscitating heart transplantation: the donation after circulatory determined death donor.European. Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 49 (1), 1-4 (2016).
  6. Trahanas, J. M., et al. Achieving 12 hour normothermic ex situ heart perfusion: an experience of 40 porcine hearts. ASAIO Journal. 62 (4), 470-476 (2016).
  7. Yang, Y., et al. Keeping donor hearts in completely beating status with normothermicblood perfusion for transplants. The Annals of Thoracic Surgery. 95 (6), 2028-2034 (2013).
  8. Van Caenegem, O., et al. Hypothermic continuous machine perfusion enables preservation of energy charge and functional recovery of heart grafts in an ex vivo model of donation following circulatory death. European Journal of Cardiothoracic Surgery. 49 (5), 1348-1353 (2016).
  9. Lu, J., et al. Normothermic ex vivo heart perfusion combined with melatonin enhances myocardial protection in rat donation after circulatory death hearts via inhibiting NLRP3 inflammasome-mediated pyroptosis. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 733183 (2021).
  10. Pinnelas, R., Kobashigawa, J. A. Ex vivo normothermic perfusion in heart transplantation: a review of the TransMedics Organ Care System. Future Cardiology. 18 (1), 5-15 (2022).
  11. Fuchs, M., et al. Does the heart transplant have a future. European Journal of Cardiothoracic Surgery. 55, i38-i48 (2019).
  12. Pahuja, M., Case, B. C., Molina, E. J., Waksman, R. Overview of the FDA’s circulatory system devices panel virtual meeting on the TransMedics Organ Care System (OCS) Heart – portable extracorporeal heart perfusion and monitoring system. American Heart Journal. 247, 90-99 (2022).
  13. Jawitz, O. K., Devore, A. D., Patel, C. B., Bryner, B. S., Schroder, J. N. Expanding the donor pool: quantifying the potential impact of a portable organ-care system for expanded criteria heart donation. Journal of Cardiac Failure. 27 (12), 1462-1465 (2021).
  14. van Suylen, V., et al. Ex situ perfusion of hearts donated after euthanasia: a promising contribution to heart transplantation. Transplantation Direct. 7 (3), e676 (2021).
  15. Westhofen, S., et al. The heterotopic heart transplantation in mice as a small animal model to study mechanical unloading – Establishment of the procedure, perioperative management and postoperative scoring. PLoS One. 14 (4), e0214513 (2019).
  16. Qin, G., Jernryd, T., Sjoberg, S., Steen, S., Nilsson, J. Machine perfusion for human heart preservation: A systematic review. Transplant International. 35, 10258 (2022).
  17. Dang Van, S., Brunet, D., Akamkam, A., Decante, B., Guihaire, J. Functional assessment of the donor heart during ex situ perfusion: insights from pressure-volume loops and surface echocardiography. Journal of Visual Experiments. (188), e63945 (2022).
  18. Fu, X., Segiser, A., Carrel, T. P., Tevaearai Stahel, H. T., Most, H. Rat heterotopic heart transplantation model to investigate unloading-induced myocardial remodeling. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 3, 34 (2016).
  19. Niimi, M. The technique for heterotopic cardiac transplantation in mice: experience of 3000 operations by one surgeon. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 20 (10), 1123-1128 (2001).
  20. Qi, X., et al. The evaluation of constant coronary artery flow versus constant coronary perfusion pressure during normothermic ex-situ heart perfusion. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 41 (12), 1738-1750 (2022).
  21. Okahara, S., et al. A novel blood viscosity estimation method based on pressure-flow characteristics of an oxygenator during cardiopulmonary bypass. Artificial Organs. 41 (3), 262-266 (2017).
  22. Quader, M., Torrado, J. F., Mangino, M. J., Toldo, S. Temperature and flow rate limit the optimal ex-vivo perfusion of the heart – an experimental study. Journal of Cardiothoracic Surgery. 15 (1), 180 (2020).
check_url/64954?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kayumov, M., Jeong, I. S., Kim, D., Kwak, Y., Obiweluozor, F. O., Yoon, N., Kim, H. S., Cho, H. J. Rat Model of Normothermic Ex-Situ Perfused Heterotopic Heart Transplantation. J. Vis. Exp. (194), e64954, doi:10.3791/64954 (2023).

View Video