Summary

Un método eficiente y rápido para etiquetar y analizar glomérulos de ratón

Published: February 09, 2024
doi:

Summary

Este estudio presenta un conjunto de métodos fáciles de usar, completos y simples para etiquetar y analizar glomérulos de riñones de ratón aclarados por CUBIC. Los datos como el número y el volumen del glomérulo se pueden obtener de forma fácil y fiable utilizando isotiocianato de fluoresceína (FITC)-Dextrano, microscopía de fluorescencia de lámina de luz (LSFM) o microscopía confocal común y software como Imaris.

Abstract

Los glomérulos son unidades fundamentales en el riñón; Por lo tanto, el estudio de los glomérulos es fundamental para comprender la función renal y la patología. Las imágenes biológicas proporcionan información intuitiva; Por lo tanto, es de gran importancia etiquetar y observar los glomérulos. Sin embargo, los métodos de observación de glomérulos que se utilizan actualmente requieren operaciones complicadas y los resultados pueden perder detalles de la etiqueta o información tridimensional (3D). La tecnología de limpieza de tejidos de análisis computacional (CUBIC) y cócteles de imágenes cerebrales transparentes y sin obstrucciones se ha utilizado ampliamente en la investigación renal, lo que permite una detección más precisa y una profundidad de detección más profunda. Descubrimos que los glomérulos de ratón pueden marcarse rápida y eficazmente mediante la inyección en la vena de la cola de FITC-Dextrano de peso molecular medio, seguida del método de aclaramiento CUBIC. El riñón de ratón aclarado podría escanearse con un microscopio de lámina de luz (o un microscopio confocal cuando se corta) para obtener pilas de imágenes tridimensionales de todos los glomérulos de todo el riñón. Procesadas con el software adecuado, las señales de los glomérulos podrían digitalizarse fácilmente y analizarse más a fondo para medir el número, el volumen y la frecuencia de los glomérulos.

Introduction

El número y el volumen de los glomérulos son muy importantes para el diagnóstico y tratamiento de diversas enfermedades renales 1,2,3,4,5. El estándar de oro de la estimación del número de glomérulos es la combinación física de disector/fraccionador. Sin embargo, este método requiere reactivos y equipos especiales, lo que lo hace lento y costoso 6,7,8,9. La biopsia proporciona una gran cantidad de información, pero obviamente, este método solo es adecuado para estimaciones aproximadas10,11. Las tecnologías de imágenes médicas, como la resonancia magnética (RM), la tomografía computarizada (TC) y los rayos X, también se utilizan ampliamente en la detección glomerular 12,13,14,15, pero estas tecnologías requieren instrumentos voluminosos. También se han utilizado nuevos métodos, como el espectrómetro de masas de imágenes de imágenes por láser asistido por matriz (MALDI)16 o el método de sección gruesa y delgada17, en la detección glomerular, aunque siguen siendo tediosos y laboriosos.

Con la ayuda de las tecnologías de transparencia, es posible observar profundidades más profundas y obtener información más rica y completa de tejidos gruesos o incluso de órganos enteros 18,19,20,21,22,23. Por lo tanto, las tecnologías de transparencia han sido ampliamente utilizadas en la investigación renal24. También está implicada la observación y detección de glomérulos en los riñones aclarados. Sin embargo, estos artículos publicados solo se refirieron brevemente a la detección glomerular25 o utilizaron métodos de etiquetado difíciles de lograr, como animales transgénicos26, colorantes autoproducidos13 o incubación de anticuerpos de alta concentración27 para etiquetar los glomérulos. Además, a pesar de que los estudios habían analizado glomérulos en riñones aclarados, los análisis siempre fueron limitados13 o se basaron en algoritmos de análisis establecidos por los propios autores26.

Anteriormente hemos demostrado una forma más conveniente de etiquetar los glomérulos en riñones de ratones28. Mediante el uso de Imaris, descubrimos que el recuento, la frecuencia y el volumen de los glomérulos se podían obtener rápidamente. Por lo tanto, aquí presentamos un conjunto de métodos más accesibles, completos y simplificados para etiquetar y analizar los glomérulos de los riñones de ratones.

Protocol

En este estudio se utilizaron ratones adultos C57BL/6 (6 semanas de edad, 25-30 g). Todos los procedimientos se realizaron de acuerdo con las regulaciones locales de bienestar animal y ética experimental. El estudio fue aprobado por el Comité de Ética de Investigación Biomédica del Hospital de China Occidental de la Universidad de Sichuan. 1. Marcaje de glomérulos y preparación de tejidos Etiquetado de glomérulosDisolver FITC-dextrano (10 mg) en soluc…

Representative Results

Este estudio proporciona un método simple y eficiente para etiquetar y analizar los glomérulos en riñones de ratones. Los glomérulos (vasos sanguíneos) pueden ser bien marcados por FITC-Dextrano inyectado intravascularmente. Después del proceso de limpieza, el riñón se volvió transparente (Figura 1A) y los glomérulos se pudieron observar claramente mediante el uso de microscopía de lámina de luz (Figura 1B) o microscopía …

Discussion

Las tecnologías de limpieza de tejidos se pueden clasificar en 3 o 4 grupos 29,30,31. En la limpieza de los riñones se ha aplicado la limpieza de tejidos a base de disolventes orgánicos (p. ej., DISCO y PEGASOS), la limpieza de tejidos a base de agua (p. ej., CUBIC) y la limpieza de tejidos con incrustación de hidrogel (p. ej., CLARITY) 25,26,28,32.<sup cl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudio contó con el apoyo de subvenciones de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (82204951) y el Programa de Ciencia y Tecnología de Sichuan (2020JDRC0102).

Materials

4% PFA Biosharp 7007171800 Fixation reaagen
502 Glue  Deli 7146 For fixing the kidney to the sample fixing adapter 
Antipyrine Aladdin A110660 Clearing reagent
Brain Matrix RWD Life Science 1mm 40-75 Tissue slicing
Confocal microscopy Nikon A1plus Image acquisition
FITC-Dextran Sigma-Aldrich FD150S Labeling reagent
Light sheet fluorescence microscopy  Zeiss Light sheet 7  Image acquisition
Mice Ensiweier Adult C57BL/6 mice (6 weeks of age, 25–30 g) 
N-Butyldiethanolamine Aladdin B299095 Clearing reagent
Nicotinamide Aladdin N105042 Clearing reagent
Pentobarbital Natriumsalz Sigma-Aldrich P3761
Tail vein fixator JINUOTAI JNT-FS35 Fix the mouse for vail injection
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787 Clearing reagent

References

  1. Hoy, W. E., et al. Nephron number, glomerular volume, renal disease and hypertension. Current Opinion in Nephrology and Hypertension. 17 (3), 258-265 (2008).
  2. Bertram, J. F., Douglas-Denton, R. N., Diouf, B., Hughson, M. D., Hoy, W. E. Human nephron number: implications for health and disease. Pediatric Nephrology. 26 (9), 1529-1533 (2011).
  3. Nyengaard, J. R., Bendtsen, T. F. Glomerular number and size in relation to age, kidney weight, and body surface in normal man. The Anatomical Record. 232 (2), 194-201 (1992).
  4. Rasch, R. Prevention of diabetic glomerulopathy in streptozotocin diabetic rats by insulin treatment. Kidney size and glomerular volume. Diabetologia. 16 (2), 125-128 (1979).
  5. Puelles, V. G., et al. Glomerular number and size variability and risk for kidney disease. Current Opinion in Nephrology and Hypertension. 20 (1), 7-15 (2011).
  6. Bertram, J. F., et al. Why and how we determine nephron number. Pediatric Nephrology. 29, 575-580 (2014).
  7. Bertram, J. F., Soosaipillai, M. C., Ricardo, S. D., Ryan, G. B. Total numbers of glomeruli and individual glomerular cell types in the normal rat kidney. Cell and Tissue Research. 270 (1), 37-45 (1992).
  8. Nyengaard, J. R. Stereologic methods and their application in kidney research. Journal of the American Society of Nephrology. 10 (5), 1100-1123 (1999).
  9. Bertram, J. F. Analyzing renal glomeruli with the new stereology. International Review of Cytology. 161, 111-172 (1995).
  10. Lødrup, A. B., Karstoft, K., Dissing, T. H., Pedersen, M., Nyengaard, J. R. Kidney biopsies can be used for estimations of glomerular number and volume: a pig study. Virchows Archiv. 452 (4), 393-403 (2008).
  11. Lane, P. H., Steffes, M. W., Mauer, S. M. Estimation of glomerular volume: a comparison of four methods. Kidney International. 41 (4), 1085-1089 (1992).
  12. Baldelomar, E. J., Charlton, J. R., deRonde, K. A., Bennett, K. M. In vivo measurements of kidney glomerular number and size in healthy and Os(/+) mice using MRI. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 317 (4), F865-F873 (2019).
  13. Huang, J., et al. A cationic near infrared fluorescent agent and ethyl-cinnamate tissue clearing protocol for vascular staining and imaging. Scientific Reports. 9 (1), 521 (2019).
  14. Beeman, S. C., et al. Measuring glomerular number and size in perfused kidneys using MRI. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 300 (6), F1454-F1457 (2011).
  15. Basgen, J. M., Steffes, M. W., Stillman, A. E., Mauer, S. M. Estimating glomerular number in situ using magnetic resonance imaging and biopsy. Kidney International. 45 (6), 1668-1672 (1994).
  16. Prentice, B. M., Caprioli, R. M., Vuiblet, V. Label-free molecular imaging of the kidney. Kidney International. 92 (3), 580-598 (2017).
  17. Sanden, S. K., Wiggins, J. E., Goyal, M., Riggs, L. K., Wiggins, R. C. Evaluation of a thick and thin section method for estimation of podocyte number, glomerular volume, and glomerular volume per podocyte in rat kidney with Wilms’ tumor-1 protein used as a podocyte nuclear marker. Journal of the American Society of Nephrology. 14 (10), 2484-2493 (2003).
  18. Hama, H., et al. Scale: a chemical approach for fluorescence imaging and reconstruction of transparent mouse brain. Nature Neuroscience. 14 (11), 1481-1488 (2011).
  19. Susaki, E. A., et al. Whole-brain imaging with single-cell resolution using chemical cocktails and computational analysis. Cell. 157 (3), 726-739 (2014).
  20. Lloyd-Lewis, B., et al. Imaging the mammary gland and mammary tumours in 3D: optical tissue clearing and immunofluorescence methods. Breast Cancer Research. 18 (1), 127 (2016).
  21. Ren, Z., et al. CUBIC-plus: An optimized method for rapid tissue clearing and decolorization. Biochemical and Biophysical Research Communications. 568, 116-123 (2021).
  22. Azaripour, A., et al. A survey of clearing techniques for 3D imaging of tissues with special reference to connective tissue. Progress in Histochemistry and Cytochemistry. 51 (2), 9-23 (2016).
  23. Matsumoto, K., et al. Advanced CUBIC tissue clearing for whole-organ cell profiling. Nature Protocols. 14 (12), 3506-3537 (2019).
  24. Puelles, V. G., Moeller, M. J., Bertram, J. F. We can see clearly now: optical clearing and kidney morphometrics. Current Opinion in Nephrology and Hypertension. 26 (3), 179-186 (2017).
  25. Zhu, J., et al. Optimal combinations of fluorescent vessel labeling and tissue clearing methods for three-dimensional visualization of vasculature. Neurophotonics. 9 (4), 045008 (2022).
  26. Klingberg, A., et al. Fully automated evaluation of total glomerular number and capillary tuft size in nephritic kidneys using lightsheet microscopy. Journal of the American Society of Nephrology. 28 (2), 452-459 (2017).
  27. Renier, N., et al. iDISCO: A simple, rapid method to immunolabel large tissue samples for volume imaging. Cell. 159 (4), 896-910 (2014).
  28. Bai, L., et al. A simple and effective vascular network labeling method for transparent tissues of mice. Journal of Biophotonics. 16 (7), e202300042 (2023).
  29. Richardson, D. S., Lichtman, J. W. Clarifying tissue clearing. Cell. 162 (2), 246-257 (2015).
  30. Kolesová, H., Olejníčková, V., Kvasilová, A., Gregorovičová, M., Sedmera, D. J. I. Tissue clearing and imaging methods for cardiovascular development. Iscience. 238 (2), 489-507 (2021).
  31. Tian, T., Yang, Z., Li, X. Tissue clearing technique: Recent progress and biomedical applications. Journal of Anatomy. 238 (2), 489-507 (2021).
  32. Du, H., Hou, P., Zhang, W., Li, Q. Advances in CLARITY-based tissue clearing and imaging. Experimental and Therapeutic. 16 (3), 1567-1576 (2018).
  33. Ertürk, A., Lafkas, D., Chalouni, C. Imaging cleared intact biological systems at a cellular level by 3DISCO. Journal of Visualized Experiments: JoVE. 89, e51382 (2014).
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Bai, L., Wu, Y., Dai, W., Shi, Q., Wu, L., Zhang, J., Zheng, L. An Efficient and Fast Method for Labeling and Analyzing Mouse Glomeruli. J. Vis. Exp. (204), e65973, doi:10.3791/65973 (2024).

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