Summary

चूहा सुपीरियर सरवाइकल ganglia (एससीजी) से सहानुभूति न्यूरॉन्स संवर्धन के लिए प्रोटोकॉल

Published: January 30, 2009
doi:

Summary

यह प्रोटोकॉल का वर्णन कैसे अलग करने के लिए और संस्कृति नवजात चूहे पिल्ले की बेहतर ग्रीवा ganglia (एससीजी) से प्राथमिक सहानुभूति न्यूरॉन्स है.

Abstract

चूहों में बेहतर ग्रीवा ganglia (एससीजी) छोटे, चमकदार, बादाम के आकार का संरचनाओं कि सहानुभूति न्यूरॉन्स होते हैं. इन न्यूरॉन्स सिर और गर्दन के क्षेत्रों के लिए सहानुभूति innervations प्रदान करते हैं और वे एक अच्छी तरह से विशेषता और अपेक्षाकृत सजातीय जनसंख्या (4) का गठन. सहानुभूति न्यूरॉन्स के अस्तित्व भेदभाव, और axonal विकास और प्रसार व्यापक NGF की उपलब्धता को अपनी संस्कृति और प्रयोगात्मक हेरफेर (2, 3, 6) की सुविधा के लिए तंत्रिका वृद्धि कारक (NGF) पर निर्भर हैं. इन कारणों के लिए, सुसंस्कृत सहानुभूति न्यूरॉन्स अध्ययन की एक विस्तृत विविधता में neuronal विकास और भेदभाव, और क्रमादेशित रोग कोशिका मृत्यु के तंत्र, और संकेत पारगमन (1, 2, 5, और 6) सहित इस्तेमाल किया गया है. नवजात चूहों और संवर्धन सहानुभूति न्यूरॉन्स से बाहर विदारक एससीजी बहुत जटिल नहीं है और काफी जल्दी में महारत हासिल किया जा सकता है है. इस अनुच्छेद में, हम विस्तार से वर्णन कैसे बाहर काटना नवजात चूहे पिल्ले से एससीजी और उन्हें उपयोग करने के लिए सहानुभूति न्यूरॉन्स की संस्कृतियों की स्थापना करेंगे. लेख भी तैयारी कदम और विभिन्न अभिकर्मकों और उपकरण है कि इस लक्ष्य को हासिल करने के लिए की जरूरत है वर्णन करेंगे.

Protocol

1. विच्छेदन के लिए तैयार: उपयुक्त संस्कृति पकवान (10 सेमी या छह अच्छी तरह से या 24 अच्छी तरह प्लेटें, आदि) अपने प्रयोगों की प्रकृति पर निर्भर करता है, और उन्हें चूहे की पूंछ कोलेजन विच्छेदन से पहले 24 घंटे क…

Discussion

हम हमारे संस्कृतियों के लिए Sprague Dawley चूहों का उपयोग करें.

समय और ध्यान रखना जब ganglia सफाई. सभी मलबे, रक्त वाहिकाओं और वसा निकालें. यह कदम एक संस्कृति है कि अधिक या कम सजातीय और बाहरी सेल प्रकार के मुक्त है सुनिश्चित …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

NZ उसे सहानुभूति न्यूरॉन्स विदारक और कटाई में प्रशिक्षण के लिए प्रयोगशाला के सदस्यों सुभाष बिस्वास, एंड्रयू Sproul, और रयान Willet धन्यवाद देना चाहूंगा. NIH-NINDS से अनुदान द्वारा समर्थित है.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Forceps, Stainless steel #5 Tool Roboz RS4976  
Scissors, DEAVER straight sharp-blunt- 43mm blades – 5.5 Tool Roboz RS6760  
RPMI 1640 w/ L-Glutamin Reagent Cellgro, Mediatech, Inc. 10-040-CV  
Fetal Bovine Serum Reagent SAFC Biosciences 12103c  
Donor Horse Serum Reagent JRH Biosciences 12449 Heat-inactivate by incubating in 56°C waterbath for 30 minutes.
Penicillin/streptomycin Reagent Gibco, Invitrogen 15140-122  
Trypsin without EDTA Reagent Difco MT 25-050-CI  
Uridine Reagent Sigma U3003  
5-Fluoro-5′ deoxyuridine Reagent Sigma F-8791  
NGF Reagent Harlan Bioproduct BT-5025  
Dissection Microscope and light source Microscope      
15 ml polypropylene tubes Tool BD Falcon 352096  
Cell culture dishes Tool Corning, Nunclone    

References

  1. Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , (1998).
  2. Biswas, S. C., Shi, Y., Sproul, A., Greene, L. A. Pro-apoptotic Bim Induction in Response to Nerve Growth Factor Deprivation Requires Simultaneous Activation of Three Different Death Signaling Pathways. The Journal of Biological Chemistry. 282 (40), 29368-29374 (2007).
  3. Bocchini, V., Angeletti, P. U. The Nerve Growth Factor: purification as a 30,000-molecular-weight protein. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. (64), 787-794 (1969).
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Cite This Article
Zareen, N., Greene, L. A. Protocol for Culturing Sympathetic Neurons from Rat Superior Cervical Ganglia (SCG). J. Vis. Exp. (23), e988, doi:10.3791/988 (2009).

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