Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Протокол для культивирования симпатических нейронов крысы из верхних шейных ганглиев (SCG)

23.7K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/988

⸱

30 января 2009 г.

 , 

В этой статье

Краткое содержание

Это протокол, описывающий, как изолировать и культуры первичных симпатических нейронов из верхних шейных ганглиев (SCG) новорожденных крысят.

Аннотация

Верхних шейных ганглиев (SCG) у крыс, мелкие, блестящие, миндалевидные структуры, которые содержат симпатические нейроны. Эти нейроны симпатической иннервации обеспечить для головы и шеи регионов и они представляют собой хорошо известных и относительно однородным населением (4). Симпатические нейроны зависят от фактора роста нервов (ФРН) за выживание, дифференцировку и рост аксонов и распространенный наличие NGF облегчает их культуре и экспериментальные манипуляции (2, 3, 6). По этим причинам, культурный симпатических нейронов были использованы в самых разнообразных исследований, включая нейронные развития и дифференцировки, механизмы запрограммированной и патологической гибели клеток и передачи сигнала (1, 2, 5 и 6). Пройдя из ГКО от новорожденных крыс и культивирования симпатических нейронов не очень сложна и может быть освоен достаточно быстро. В этой статье мы расскажем в деталях, как рассекают из ГКО от новорожденных крысят и использовать их для создания культурах симпатических нейронов. Статья будет также рассказано о подготовительных шагов и различных реагентов и оборудования, которые необходимы для достижения этой цели.

Протокол

1. Подготовка для вскрытия:

  1. Выберите подходящее блюдо культуры (10 см или 6-и или 24-луночных планшетах и ​​т.д.) в зависимости от характера вашего экспериментов, и покрыть их крысы хвост коллагена за 24 часа до вскрытия. Методы получения крысы хвост коллагена и использовать его для блюд пальто культуры были описаны в другом месте (1).
  2. Подготовка 0,25% раствора трипсина в фосфатном буферном растворе (PBS) (без ЭДТА) и фильтр стерилизуют. Подготовка 1 мл аликвоты и хранить при -20 º C.
  3. Подготовка раствора, содержащего 2,5 мМ каждого из уридина и 5-FDU в дистиллированной / деионизированной H 2 O. Фильтр-стерилизовать и подготови....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Мы используем Sprague Dawley крыс для нашей культуры.

Найдите время и ухода при чистке ганглиев. Удалите все обломки, кровеносных сосудов и жира. Этот шаг важен в обеспечении культуры, которая более или менее однородное и свободным от посторонних типов клеток. Добавление uridine/5-FDU будет в значительной степени устранить любые остающиеся без нейронов (митотический) клетки загрязняющих культуры или хотя бы подавить их распространения.

Кроме того, при диссоциации шаг, будьте терпеливы и не торопитесь, чтобы отдельные нейроны.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют конфликтов интересов, подлежащих раскрытию.

Благодарности

NZ хотел бы поблагодарить членов лаборатории Субхаса Бисвас, Эндрю Спроул, и Райан Виллет для обучения ее вскрытии и уборки симпатических нейронов. Поддержке грантов от NIH-NINDS.

....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Пинцет, из нержавеющей стали №5ИнструментRoboz Surgical Instruments Co.RS4976
Ножницы DEAVER прямые, остроконечные/тупоконечные, лезвия 43mm - 5.5ИнструментRoboz Surgical Instruments Co.RS6760
RPMI 1640 с L-глутаминомРеагентCellgro10-040-CV
Фетальная бычья сывороткаРеагентSAFC Global12103c
Сыворотка донорской лошадиРеагентJRH Biosciences12449Инактивировать нагреванием в водяной бане при 56°C в течение 30 минут.
Пенициллин/стрептомицинРеагентGIBCO, by Life Technologies15140-122
Трипсин без ЭДТАРеагентDifco LaboratoriesMT 25-050-CI
УридинРеагентSigma-AldrichU3003
5-фтор-5’-дезоксиуридинРеагентSigma-AldrichF-8791
NGFРеагентHarlan LaboratoriesBT-5025
Диссекционный микроскоп и источник светаМикроскоп
Полипропиленовые пробирки объемом 15 mlИнструментBD Biosciences352096
Чашки для культивирования клетокИнструментCorning

Ссылки

  1. Banker, G., Goslin, K. Culturing Nerve Cells. , MIT Press. (1998).
  2. Biswas, S. C., Shi, Y., Sproul, A., Greene, L. A. Pro-apoptotic Bim Induction in Response to Nerve Growth Factor Deprivation Requires Simultaneous Activation of Three Different Death Si....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Больше статей

фактор роста нервовдиссоциация клетокпокрытие коллагеномогнеполированная пипеткаобработка трипсиномуридин FDUпервичная культура клетоккрысята