Summary

Protokoll för odling sympatiska nervceller från Rat Superior Cervikal Ganglia (SCG)

Published: January 30, 2009
doi:

Summary

Detta är ett protokoll som beskriver hur man isolera och odla primära sympatiska nervceller från överlägsen livmoderhalscancer ganglierna (SCG) för nyfödda råttungar.

Abstract

Den överlägsna livmoderhalscancer ganglierna (SCG) hos råttor är små, glänsande, mandelformade strukturer som innehåller sympatiska nervceller. Dessa nervceller ger sympatiska innervations för huvudet och hals och de utgör en väldefinierad och relativt homogen befolkning (4). Sympatiska nervceller är beroende av nervtillväxtfaktor (NGF) för överlevnad, differentiering och axonal tillväxt och den utbredda tillgängligheten av NGF underlättar deras kultur och experimentell manipulation (2, 3, 6). Av dessa skäl har odlade sympatiska nervceller använts i en mängd olika studier med nervsystemets utveckling och differentiering, mekanismer för programmerad och patologiska celldöd och signal transduktion (1, 2, 5 och 6). Dissekera ut SCG från nyfödda råttor och odling sympatiska nervceller inte är mycket komplicerat och kan bemästras ganska snabbt. I denna artikel kommer vi att beskriva i detalj hur man dissekera ut SCG från nyfödda råttungar och att använda dem för att upprätta kulturer av sympatiska nervceller. Artikeln kommer även att beskriva de förberedande åtgärder och de olika reagenser och utrustning som behövs för att uppnå detta.

Protocol

1. Förberedelse för dissekering: Välj lämplig kulturen skålen (10 cm eller 6-bra eller 24-brunnars plattor, osv) beroende på vilken typ av dina experiment, och päls dem med rått-svans kollagen 24 timmar före dissekering. Metoderna för att förbereda rat-tail kollagen och använda den till rätter pälsen kulturen har beskrivits på andra ställen (1). Bered en 0,25% Trypsin lösning i fosfatbuffrad saltlösning (PBS) (inget EDTA) och filtrera sterilisera. Bered 1 ml alikvoter och förvara v…

Discussion

Vi använder Sprague Dawley för våra kulturer.

Ta dig tid och omsorg vid rengöring av ganglierna. Ta bort allt skräp, blodkärl och fett. Detta steg är viktig för att se en kultur som är mer eller mindre homogen och fri från främmande celltyper. Tillskottet av uridine/5-FDU kommer till stor del eliminera återstående icke-neuronala (mitotiska) celler förorenar kultur eller åtminstone hämma deras spridning.

Dessutom, under dissociation steg, ha tålamod och ta dig tid att separera nervceller så att de inte finns…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

NZ vill tacka labbet medlemmar Subhas Biswas, Andrew Sproul, och Ryan Willet för träning henne i dissekera och skörd sympatiska nervceller. Finansierats med bidrag från NIH-NINDS.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Forceps, Stainless steel #5 Tool Roboz RS4976  
Scissors, DEAVER straight sharp-blunt- 43mm blades – 5.5 Tool Roboz RS6760  
RPMI 1640 w/ L-Glutamin Reagent Cellgro, Mediatech, Inc. 10-040-CV  
Fetal Bovine Serum Reagent SAFC Biosciences 12103c  
Donor Horse Serum Reagent JRH Biosciences 12449 Heat-inactivate by incubating in 56°C waterbath for 30 minutes.
Penicillin/streptomycin Reagent Gibco, Invitrogen 15140-122  
Trypsin without EDTA Reagent Difco MT 25-050-CI  
Uridine Reagent Sigma U3003  
5-Fluoro-5′ deoxyuridine Reagent Sigma F-8791  
NGF Reagent Harlan Bioproduct BT-5025  
Dissection Microscope and light source Microscope      
15 ml polypropylene tubes Tool BD Falcon 352096  
Cell culture dishes Tool Corning, Nunclone    

References

  1. Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , (1998).
  2. Biswas, S. C., Shi, Y., Sproul, A., Greene, L. A. Pro-apoptotic Bim Induction in Response to Nerve Growth Factor Deprivation Requires Simultaneous Activation of Three Different Death Signaling Pathways. The Journal of Biological Chemistry. 282 (40), 29368-29374 (2007).
  3. Bocchini, V., Angeletti, P. U. The Nerve Growth Factor: purification as a 30,000-molecular-weight protein. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. (64), 787-794 (1969).
  4. Dechant, G. Chat in the Trophic Web: NGF Activates Ret by Inter-RTK Signaling. Neuron. 33 (2), 156-158 (2002).
  5. Deckwerth, T., Elliott, J. L., Knudson, C. M., Johnson, E. M., Snider, W. D., Korsmeyer, S. J. Bax is required for neuronal death after trophic factor deprivation and during development. Neuron. (17), 401-411 (1996).
  6. Greene, L. A. Quantitative in Vitro Studies on the Nerve Growth Factor (NGF) Requirement of Neurons – I. Sympathetic Neurons. Developmental Biology. (58), 96-105 (1977).
  7. Park, D. S., Morris, E. J., Padmanabhan, J., Shelanski, M. L., Geller, H. M., Greene, L. A. Cyclin-dependent kinases participate in death of neurons evoked by DNA-damaging agents. The Journal of Cell Biology. 143, 457-467 (1998).
  8. Pierchala, B. A., Ahrens, R. C., Paden, A. J., Johnson, E. M. Nerve Growth Factor Promotes the Survival of Sympathetic Neurons through the Cooperative Function of the Protein Kinase C and Phosphatidylinositol 3-Kinase Pathways. The Journal of Cell Biology. 279, 27986-27993 (2004).

Play Video

Cite This Article
Zareen, N., Greene, L. A. Protocol for Culturing Sympathetic Neurons from Rat Superior Cervical Ganglia (SCG). J. Vis. Exp. (23), e988, doi:10.3791/988 (2009).

View Video