Summary
여기 우리는 수동 조직의 알레르기 (PSA) 및 적외선 온도계를 사용 하 여 음식 알레르기 마우스 모델에서 몸 온도 차이 정확 하 게 측정 하는 새로운 방법을 제시. 이 절차는 이전 PSA 결과에 정확 하 게 중복 되었습니다.
Abstract
마우스 신체 온도 측정은 알레르기 및 과민 증상 조사에 대 한 파라마운트 중요 합니다. 온도 판독을 위한 직장 프로브는 일반적, 그리고 그들은 정확 하 고 귀중 한 이런 맥락에서 입증 되었습니다. 그러나, 온도 측정의이 방법 동물에 상해 없이 프로브를 삽입 하기 위해 취 수에 쥐를 요구 한다. 이 마우스의 다른 고기를 동시에 관찰 하는 능력을 제한 합니다. 온도 측정 하는 동안 다른 고기를 조사 하기 위하여 직장 프로브는 이상적, 그리고 또 다른 방법은 원하는. 여기, 우리가 동등한 신뢰성 체온 측정 프로브를 직장을 유지 하면서 마우스 마 취에 대 한 요구 사항을 나빠지고 온도 측정의 비 침범 성 방법 소개. 2, 150 m m 사이의 범위에서 신체 표면 온도 감지 하는 적외선 온도계를 사용 합니다. 이 신체 온도 측정 방법은 수동 시스템 알레르기 실험 쥐에 있는 동안 온도 변화 트렌드를 안정적으로 복제에 성공입니다. 우리 몸 표면 온도 약 2.0 ° C 직장 프로브 측정, 보다 낮은 보여주지만 온도 하락의 정도 같은 추세는 다음과 같습니다. 또한, 같은 기술을 사용 하 여 온도 및 활동 레벨을 동시에 평가 하는 식품 알레르기 모델에서 쥐를 관찰.
Introduction
체온의 측정은 동물에 과민 증상의 효과 모니터링의 필수적인 부분 모델1,2되었습니다. 온도 차이 마우스3,4직장 프로브의 온도계에 의해 전통적으로 측정 되었다. 이러한 측정 조사 안정적으로 변수; 간의 온도 차이 묘사는 그러나,이 방법은 시간이 많이 걸리는 절차 이며 몸 핵심 온도 증가 시킬 수 있는 마우스, 조 난 발생. 직장 검색 해도 점 막 찢 어 및 감염3발생할 수 있습니다. 또한, 고통 없이 측정 온도3직장 프로브를 삽입 하기 위해 쥐를 취 한다. 이것은 느린 과정, 그리고 그것은 시간의 짧은 기간 내에 연속으로 온도 측정을 금지. 또한, 마우스 활동 고기까지 마 취는 완전히 없어진, 또 다른 시간이 걸리는 과정은이 시간 동안 관찰 될 수 없습니다. 더 최근에, 다른 신뢰할 수 있는 방법으로 체온을 측정 하는 피하 이식된 수동 적외선 트랜스폰더 태그 또는 무선 송신기는 온도 센서3,,56을 포함 하는 사용 됩니다. 그들은 이상적인 방법으로 일부 연구자에 의해 받아들여진다, 비록 이러한 방법은 높은 초기 비용 및 마우스, 피부 또는 신체의 다른 부분에서 온도 센서의 외과 이식 때문에 조 난 널리 사용 되지 않습니다.
온도 차이 질병 모델1,2에서 증상의 정확한 반영을 설명 하기 위해 마우스와 이어야 합니다 깨어 온도 측정 하는 동안 그들의 정상적인 phenotypic 활동에 복귀 하실 수 즉시 전후 측정. 이 위해, 우리는이 달성 될 수 있는 방법 모색.
우리의 목표는 정확 하 고 저렴 하 게 측정 마우스 몸 온도, 무감각을 위한 필요 없이 중 고 온도 측정의 시간 후 고기 행동의 관찰 수 있도록 활동에 제한 없이 했다. 이 목표를 달성 하기 위해 그것은 분명 그 보다 적게 침략 적인 기술 표준 직장 온도 프로브 보다 필요 했다. 적외선 온도계는 정확한 온도 수치를 임상 의학, 소아과, 특히에서 수십 년 동안 사용 되어 왔습니다. 그것은 임상 신속 하 고 정확 하 게 온도 측정 유아와 적극적으로 모바일는 까다로운 아이 얻을 수 있다 다른 방법 되었습니다. 우리는 쥐에이 같은 기술을 구현 하 고 마 취 없이 온도 얻기 위해 성공적인 방법을 개발 했습니다. 중요 한 것은, 우리는이 메서드는 또한 측정을 통해 마우스의 활동을 관찰 하는 수 있는 동안 온도 변화에 관한 확고 수동 조직의 알레르기 결과 복제 능력을 보여줍니다. 또한, 우리 메서드 사용 하 여 같은 다른 증상, 체온은 실제로 정확 하 게 반영 활동 수준 및 전반적인 표현 형의 입증을 동시에 조사 하는 동안 음식 알레르기 쥐의 체온을 평가 하는 마우스입니다.
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Protocol
모든 동물 실험은 알레르기와 면역학에 대 한 동물 관리 및 사용 라호야 연구소의 위원회에 의해 승인 되었다.
1. 마우스 Anesthetization 동안 신체 온도 측정
- 마 취 유도 상자에 마우스를 놓습니다. 5 %isoflurane 산소 1 L/min 흐름을 사용 하 여 anesthetize.
참고: Anesthetization 확인 때 마우스 자발적인 운동 중단 되었습니다 모바일 30 s. 또는 모니터 호흡 속도, 그리고 쥐 매 2 당 1 호흡 호흡은 일단 s anesthetization 확인 이상, 또는. - 마우스는 검지 손가락과 엄지손가락으로 목의 목 덜 미를 잡고 하 고 더 낮은 복 부를 노출 하려면 새끼 손가락으로 꼬리를 잡고.
- 땅에 병렬의 시체와 함께 마우스를 잡고 아랫 배는 아래 적외선 온도계 센서를 놓습니다.
참고: 외부 평평한 표면 온도계 (아니라 센서의 표면)의 복 부의 표면에서 약 2-5 m m 이어야 한다. 이 복제 결과 온도 측정 동안 마우스 (2 절에서 설명한) 마 취는 하지. 그것은 복 부의 대상 사이트를 확인 해야 합니다. 위 두 젖꼭지 사이 목표로 일관 된 결과 수 있습니다. - 온도 측정 하는 방 아 쇠를 잡으십시오. 마우스와 온도계의 안정적 개최를 확인 합니다.
2. 마우스 마 취 없이 신체 온도 측정
- 꼬리의 중간으로 마우스를 선택 합니다.
-
마우스의 복 부를 노출 합니다.
- 마우스는 오픈 케이지 나 케이지-상단의 forepaws의 입술 같은 직선-가장자리 표면에 개최를 허용 합니다.
참고: 마우스를 상체 스트레칭과 복 부를 노출 수 있습니다. - 또는, 마우스는 온도계의 위쪽 직선 가장자리에 유지 하는 것을 허용 하 고 적외선 센서 이상 그것의 복 부와 온도계의 외부 평면 표면에 앉아 마우스.
참고: 언제 든 지 뒷 발 온도계의 표면에 쉬고 발 복 부 표면에서 센서를 방해 하지는 확인 합니다. 온도계 발 방해와 복 부의 그것 보다 낮은 온도 측정 합니다.
- 마우스는 오픈 케이지 나 케이지-상단의 forepaws의 입술 같은 직선-가장자리 표면에 개최를 허용 합니다.
- 온도 측정 하는 방 아 쇠를 잡으십시오.
참고: 마우스 이동; 하는 경향이 있다 마우스는 상대적으로 덜 모바일 때 온도 측정을 복용 하 여 본문의 동일한 위치를 지속적으로 측정 하는 방법에 주의.
3. 수동 조직의 알레르기7
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하루 0: 면역 글로불린 E (IgE)와 감광 성.
- PBS에서 100 µ g/mL의 농도에서 안티-dinitrophenyl (DNP) IgE의 (마우스) 당 200 µ L를 준비 합니다.
- Intraperitoneally 단계 3.1.1 또는 PBS에만 준비 하는 안티-dinitrophenyl (DNP) IgE의 200 µ L를 주사 (PBS 전용은 부정적인 제어). 주입에 대 한 26 G 바늘을 사용 합니다. 그냥 약 두 가장 열 등 한 젖꼭지 사이 중간에 측면 주사 수행 합니다.
-
제 1 일: DNP HSA와 알레르기 유발.
- 준비 하는 100 µ L (마우스) 당 DNP HSA의 0.9%에 10 mg/mL의 농도에 NaCl.
- 1.1 단계에서 설명한 대로 쥐를 anesthetize.
- 1 단계에서 설명한 기술을 사용 하 여 체온을 측정 합니다.
- DNP HSA 단계 3.2.1에서에서 준비의 100 µ L를 정 맥 주사. 30g 바늘을 사용 하 여 주입을 위해. Retroorbital 정 맥 공동에는 주사를 수행 합니다. 눈 뒤에 목표로 얕은 각도에서 눈의 중간에 바늘을 삽입 합니다.
- 주입 후 개별 장에 쥐를 놓습니다. 쥐 마 취에서 회복을 확인 합니다. 그들은 각 성 하 고 자발적으로 모바일을 관찰 합니다.
- 적외선 온도계를 사용 하 여 체온을 측정 하 고 그들의 활동 70 분 마다 10 분 합니다.
4. 마우스 모델의 음식 알레르기8,9
참고: 회로도 그림 2에 표시 됩니다.
-
하루 0: 민감하게 OVA/졸업생와 쥐.
- OVA (0.5 mg/mL) 및 졸업생 (10 mg/mL) PBS에 함께 (마우스) 당 100 µ L를 준비 합니다. 30 분 동안 낮은 설정에 소용돌이입니다.
- 1.1 단계에서 설명한 대로 쥐를 anesthetize.
- 4.1.1 단계에서 준비 된 OVA/졸업생 혼합물의 100 µ L를 각 마우스를 주사 intraperitoneally 26 G 바늘을 사용 하 여.
주: 소용돌이 OVA/졸업생 혼합 다시, 각 주입 전에 짧게 최고 확인 무 균된 혼합물. 사출 사이트에 대 한 자세한 내용은 단계 3.1.3을 참조 하십시오. - 주입 후 다시 새 장에 그들의 원래 마우스를 놓습니다. 쥐 마 취에서 회복을 확인 합니다. 그들은 각 성 하 고 자발적으로 모바일을 관찰 합니다.
-
14 일: OVA/졸업생과 두 번째 민감 화를 수행 합니다.
- 4.1.1와 4.1.2, 4.1.3 단계를 반복 합니다.
-
일 28-46: OVA와 쥐에 게 매일 도전.
- 100 µ L (마우스) 당 OVA의 PBS에 250 mg/mL의 농도에서 준비 합니다.
참고: 혼합 해야 한다 보다는 소용돌이와 손으로 부드럽게 앞뒤로 출 렁 여 거품 형성을 최소화 하기 위해.- 음식 알레르기 억제제를 사용 하는 경우9억제제 준비 합니다. PBS에서 1 mg/mL의 농도에서 억제 물의 (마우스) 당 100 µ L를 준비 합니다. 이 각 마우스에 대 한 억제제의 100 µ g의 배달을 허용합니다.
참고: 생쥐는 하나의 도전 하루 동안 총 gavage 볼륨의 200 µ L을 처리할 수만 마우스, 당 억제제의 100 µ L를 초과 하지 마십시오. 100 µ L 인 OVA 도전 뿐만에 필요한 100 µ L 최대 권장 억제제 사용에 대 한 볼륨입니다.
- 음식 알레르기 억제제를 사용 하는 경우9억제제 준비 합니다. PBS에서 1 mg/mL의 농도에서 억제 물의 (마우스) 당 100 µ L를 준비 합니다. 이 각 마우스에 대 한 억제제의 100 µ g의 배달을 허용합니다.
- 1.1 단계에서 설명한 대로 쥐를 anesthetize.
- 구두로 gavage 각 단계 4.3.1에서에서 준비 된 OVA 솔루션 PBS 마우스 당 gavaged의 100 µ L에 OVA (25 mg)의 100 µ L로 마우스.
- 억제제를 사용 하는 경우 준비 단계 4.3.1.1에서에서 OVA 도전 하기 전에 30 분 억제제 (또는 PBS 제어)의 gavage에 대 한 다음 단계에 설명 된 동일한 기술을 이용 한다. 30 분 후 다음 단계로 이동.
- 1 mL 주사기 gavage 바늘을 사용 합니다. 주사기에 OVA의 100 µ L를 차지 합니다.
- 입;에 바늘을 삽입 다음, 식도 통해 바늘을 밀어 부드럽게 목 구멍의 왼쪽 또는 오른쪽으로 바늘을 가리키는. OVA의 100 µ L를 주사.
참고: 바늘은 되도록 하지 기도에, OVA를 주입 하기 전에 호흡 활성 관찰 합니다. 바늘의 삽입 됩니다 또한 수 저항 일찍 경우 식도 아닌 기관에 들어갔습니다.
- 자신의 개인적인 새에는 마우스를 놓습니다. 자 품질의 쉽게 관찰에 대 한 침구 없이 감 금 소를 사용 합니다.
- 마 취에서 회복을 확인 합니다. 쥐 자각 하 고 자발적으로 모바일을 관찰 합니다.
- 2 절에서 설명한 기술을 사용 하 여 timepoints 10, 20, 40, 및 60 분 쥐의 체온을 측정 합니다.
- 100 µ L (마우스) 당 OVA의 PBS에 250 mg/mL의 농도에서 준비 합니다.
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Representative Results
수동 체계 알레르기: iv 주입에 대 한 10 주 오래 된 여성 BALB/c 마우스 했다 마 취. 주입, 이전 1 단계에 설명 된 대로 그들의 체온 (비디오 1)를 측정 했습니다. 그림 1 은 4 주사 후 두 모집단의 온도 추세를 보여줍니다. IgE 응 마우스 PBS 컨트롤 마우스 20 분71.1 ° C의 최대 드롭 했다 하는 동안 20 분 3.0 ° C의 최대 온도 하락을 보여주었다. 또한,이 과정을 통해 활동 점수 각 마우스의 이동에 따라 평가 했다. 마우스는 어떤 동요 없이 처음 관찰 되었다. 다음, 그들은으로 계산기의 손을 소개 하 고 마우스와 부드러운 접촉 하 여 동요와 함께 관찰 되었다. 그들의 반응에 따라, 쥐 평가 고 1 ~ 3의 규모에 득점. 1의 점수를 나타냅니다 마우스 움직이기 또는 동요; 없이 최소한 모바일 2의 점수는 동요 하지 않고 모바일 이며 동요와 함께 모바일 빠른 회피 움직임; 하지 않고 마우스를 나타냅니다. 그리고 3의 점수는 모바일 또는 동요, 없이 움직이지 및 동요와 함께 모바일 이며 빠른 회피 움직임 마우스를 나타냅니다. 동영상 2 , 3 해당 활동 레벨 측정으로 온도 측정 방법 예시 두 그룹의 예제를 제공 합니다. 행동 표현 형 평가, 중, 전과 후 온도 측정;에 대 한 허용 차례로 마 취 없이 온도 측정에 대 한 허용 하는 적외선 온도계의 사용 반면, 전통적인 직장 조사는 마 취를 요구 하 고 따라서 온도 측정을 둘러싼 몇 분 이내 어떤 행동 평가 배제 것입니다.
음식 알레르기8의 마우스 모델: 마우스 모델의 회로도 그림 2에 표시 됩니다. 마우스는 8 ~ 10 주 된 민감성의 때에 연령의 여성 BALB/c 마우스. 마우스는 체온과 활동에 대 한 각 도전 후 10, 20, 40, 60 분에서 관찰 되었다. 대표 결과 도전 7 중의 온도 변화 그림 3 에 표시 됩니다. 10 분;에서 최대한 온도 하락을 보였다 쥐 따라서, 10 분 온도와 상관 관계를 10 분 활동 수준에서 체온 (위의 묘사 하는 기준에 따라 채 점)으로 사용 되었다. 활동 점수와 온도 드롭 (그림 4) 통계적으로 중요 한 상관 관계를 보였다. 행동 관찰 마 취의 부족으로 인해 수행 된 수동 체계 알레르기 섹션에서 설명 했 듯이, 그리고 적외선 온도계 이용 되었다. 반면, 직장 프로브 온도 측정의 시간 동안 어떤 행동 관찰 이나 평가 막아 것입니다. 언제 든 지 그 온도 고기를 기록 해야 합니다 다른 활동, 그것은 마 취를 필요로 하지 않는 온도 측정 시스템을 활용 하는 것이 필수적.
그림 1 : 수동 조직의 알레르기 BALB/c 마우스. 두 쥐 날 0, 안티-DNP IgE와 주입 ip 다음 iv 주입 정상적인 염 분 또는 DNP HSA 하루에 1. 체온은 70 분에 대 한 주입 후 주입 하기 전에 모든 10 분 적외선 온도계를 사용 하 여 측정 되었다 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2 : 음식 알레르기 마우스 모델 회로도. 당일 0 BALB/c 마우스 민감하게 ip OVA와 졸업생, 그리고 14 일에 다시 했다. 하루 28, 각 도전 전에 30 분에 마우스 했다 PBS 제어 또는 음식 알레르기 반응 억제제 (HRF 2CArecombinant 히 스타 민 방출 인자 alanines와 교환 하는 두 시스테인) 구두 gavaged9. 마우스 다음 도전 OVA의 25 mg와 ig. 과제 9 과제에 대 한 다른 모든 일을 수행 했다. 마우스는 신체 온도 측정 및 도전 후 10, 20, 40, 60 분에서 득점 하는 활동에 대 한 관찰 되었다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3 : BALB/c 마우스에서 식품 알레르기 모델. 온도 변경 후 7 OVA 도전 적외선 온도계에 의해 감시 되었다. 일반적인 결과 적어도 4 개의 독립적인 실험에서 표시 됩니다 (* *, p < 스튜던트 t-검정; 여 PBS와 2CA 치료 사이 0.01 ns: 중요 하지). 오차 막대 SEM. = 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 4 : 활동 및 온도 음식 알레르기 실험에서 10 분 사이 상관 관계가. 결과 반영 측정 실험의 4 별도 세트에서 촬영. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
비디오 1: 쥐 취는 하는 동안 온도 측정을 몸. 마우스 신체 온도 측정 또는 마 취 없이 반입할 수 있습니다. 일관 된 측정을 위해 항상 같은 몸 위치에 온도계를 목표로 하는 필수적 이다. 이 비디오를 보려면 여기 클릭 하십시오 (다운로드 오른쪽 클릭.)
비디오 2: 활동 수준 DNP HSA iv 주입 후 40 분. 마우스는 관찰 했다 동요 없이 처음, 다음 동요와 함께. 그들의 반응에 따라, 쥐 고 1 ~ 3의 활동 규모에 평가 했다. 왼쪽 (안티-DNP 민감하게 마우스)에 마우스 동안 마우스 오른쪽 (PBS 컨트롤 마우스)에 3의 점수는 1의 점수를 주어진 다. 이 비디오를 보려면 여기 클릭 하십시오 (다운로드 오른쪽 클릭.)
비디오 3: DNP HSA iv 주입 후 40 분에 온도 측정을 몸. 이 그림을 적외선 온도계의 능력을 정확 하 게 보여 고 noninvasively anesthetization 없이 체온을 측정 한다. 또한, 활동 점수 비디오 2 에 온도 하락이 비디오에서 측정의 정도 반영 합니다. 이 비디오를 보려면 여기 클릭 하십시오 (다운로드 오른쪽 클릭.)
비디오 4: 뒷 다리에 의해 읽고 온도에 오류 발 방해 센서의. 이 비디오에서는 센서 둘레 내의 발 없이 온도에 차이 보여 줍니다. 이 비디오를 보려면 여기 클릭 하십시오 (다운로드 오른쪽 클릭.)
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Discussion
설명 하는 프로토콜은 마 취의 사용 없이 온도 측정 하는 목적으로 설립 되었다. 상대적 용이성은 온도 판독을 얻을 수 있습니다에 불구 하 고 스트레스와 다른 주위 온도 처리 등 더 확실 한 효과 뿐만 아니라이 기술을 수용 하는 몇 가지 경고가 있다.
첫째, 실험을 통해 일관 된 온도 판독을 유지 하기 위해 온도 측정 되 고 위치 해야 합니다. 수 미리 정해진 해부학 랜드마크를 사용 하 여 및 조사 했다 시체의 측정을 복제할 수 있어야 합니다. 위치입니다. 보호 하는 마우스의 forepaws는 감 금 소 또는 온도계의 지의 입술 같은 직선-가장자리 표면에 복 부는 온도계의 적외선 센서에 쉽게 노출 됩니다. 일반적으로, 복 부 일관 된 결과 대 한 몇 가지 유연성을 허용 하는 큰 표면 영역입니다. 또한, 복 부는 마우스의 등 쪽 표면 보다 엷 머리 하 고 따라서 더 정확한 신체 온도 독서에 대 한 있습니다.
둘째, 뒷 발 때 온도 측정 모니터링 항상 해야 합니다. 온도계는 복 부에 가까운 때 쥐 온도계 자체에 자신의 발을 장소 경향이 있다. 발 또는 발가락 센서의 둘레 안에 들어오면 온도 판독값 비디오 4에서 같이 복 부 보다 낮은 수 있습니다. 그것은 어떤 신체 부위 또는 복 부 표면 외 개체 둘레를 유지 하면서 센서의 어느 한쪽에 그것의 발 걸치기 마우스를 허용 해야 합니다.
셋째, 쥐의 복 부 표면에서 측정 때는 젖은 수 없습니다. 젖은 표면; 정확 하 게 온도 측정 하는 온도계의 능력을 바꿀 것 이다 일반적으로, 측정된 온도 실제 값 보다 낮은 것 이다. 관측 기간 동안 신선한 침구와 감 금 소에는 마우스를 유지 하 여이 문제를 방지할 수 있습니다. 그러면 또한 복 부 표면의 건조 온도 측정 때마다 표준화 된다.
마지막으로, 적외선 온도계만 이라도 직장 프로브, 보다 더 큰 허용 오차는 약간. 직장 프로브 측정에 대 한 오차의 한계는 ± 0.1 ° C, 적외선 온도계, 그것은 ± 0.2 ° c. 이 허용 오차 전체 차이 온도 드롭 PSA 실험에서 인구에 비해 최소 했다. 더 중요 한 것은, ± 0.1 ° C 또한 오류 문제의 다른 마진을 예견 수 있습니다 미묘한 차이 필요로 하는 프로젝트에 관계 없이 여부는 적외선 온도계 또는 직장 프로브 사용 됩니다. 이 프로토콜의 준비 하는 동안 그것은 또한 되었습니다 표시 했다 매우 좋은 상관관계 몸 핵심 온도 삽입형 온도 트랜스폰더 및 중 적외선 온도계로 측정 하는 신체 표면 온도 측정은 저체온증 lipopolysaccharide 유도6.
사용 되는 식품 알레르기 모델에서 온도 강하 했다 하지 관찰 되었습니다 이전8,10. 평가 위한 표준 이전 설사 득점; 형 심각도 결정 했던 그러나,이 방법은 객관성 부족. 우리는 그 미묘한 온도 보였다 적외선 온도계를 사용 하 여 방울 검출 될 수 있습니다. 우리 다음으로 쥐 절차 동안 취 하지 했다 활동 수준, 이러한 상관 관계를 수 있었다. 이 메서드는 쥐 직장 프로브 측정에 대 한 마 취는 경우 그렇지 않으면 놓칠 수는 다른 고기를 관찰 하는 수 있는 동안 쥐에 체온을 측정 하는 빠른, 정확한, 사용 하기 쉬운, 비 침범 성, 그리고 저렴 한 방법에 대 한 수 있습니다.
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Disclosures
저자는 공개 없다.
Acknowledgments
연구 실험실 NIH에 의해 지원 되었다 가와카미에 부여: R01 AR064418-01A1, R01 HL124283-01, R21 AI 115534-01, 및 R41AI124734-01.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Non-contact infrared thermometer | SinoPie | DT-8861 | |
| Anti-dinitrophenyl (DNP) IgE | Sigma Aldrich | D8406-.2MG | |
| PrecisionGlide 30 G needle | BD | 305128 | |
| PrecisionGlide 26 G needle | BD | 305111 | |
| 1 mL syringe | BD | 309659 | |
| Dinitrophenyl - human serum albumin | Biosearch Technologies | D-5059-10 | |
| Ovalbumin from chicken egg white | Sigma Aldrich | A5503-50G | |
| Imject Alum | ThermoFisher Scientific | 77161 | |
| Animal Feeding Needles, disposable | Fisher Scientific | 01-208-87 |
References
- Finkelman, F. D. Anaphylaxis: lessons from mouse models. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 120 (3), Quiz 516-507 506-515 (2007).
- Lee, J. K., Vadas, P. Anaphylaxis: mechanisms and management. Clinical and Experimental Allergy: Journal of the British Society for Allergy and Clinical Immunology. 41 (7), 923-938 (2011).
- Newsom, D. M., Bolgos, G. L., Colby, L., Nemzek, J. A. Comparison of body surface temperature measurement and conventional methods for measuring temperature in the mouse. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 43 (5), 13-18 (2004).
- Wong, J. P., Saravolac, E. G., Clement, J. G., Nagata, L. P. Development of a murine hypothermia model for study of respiratory tract influenza virus infection. Laboratory Animal Science. 47 (2), 143-147 (1997).
- Quimby, J. M., Olea-Popelka, F., Lappin, M. R. Comparison of digital rectal and microchip transponder thermometry in cats. Journal of American Association for Laboratory Animal Science. 48 (4), 402-404 (2009).
- Mei, J., Riedel, N., Grittner, U., Endres, M., Banneke, S., Emmrich, J. V. Body temperature measurement in mice during acute illness: implantable temperature transponder versus surface infrared thermometry. Scientific Reports. 8 (1), 3526 (2018).
- Doyle, E., Trosien, J., Metz, M. Protocols for the induction and evaluation of systemic anaphylaxis in mice. Methods in Molecular Biology. 1032, 133-138 (2013).
- Brandt, E. B., et al. Mast cells are required for experimental oral allergen-induced diarrhea. The Journal of Clinical Investigations. 112 (11), 1666-1677 (2003).
- Ando, T., et al. Histamine-releasing factor enhances food allergy. The Journal of Clinical Investigations. 127 (12), 4541-4553 (2017).
- Brandt, E. B., et al. Targeting IL-4/IL-13 signaling to alleviate oral allergen-induced diarrhea. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 123 (1), 53-58 (2009).
