Summary
Er is een twee raster-scanning fotoakoetische imager ontworpen, die wide-field imaging en real-time imaging integreerde.
Abstract
Beeldvorming van vasculaire netwerken op kleine dieren heeft een belangrijke rol gespeeld in fundamenteel biomedisch onderzoek. Fotoakoetische beeldvormingstechnologie heeft een groot potentieel voor toepassing in de beeldkunde van kleine dieren. De fotoakoetische beeldvorming in het brede veld van kleine dieren kan afbeeldingen leveren met een hoge spatiotemporale resolutie, diepe penetratie en meerdere contrasten. Ook is het real-time fotoakoestische beeldvormingssysteem wenselijk om de hemodynamische activiteiten van vasculatuur van kleine dieren te observeren, die kunnen worden gebruikt om de dynamische monitoring van fysiologische kenmerken van kleine dieren te onderzoeken. Hier wordt een fotoakoetische imager met twee rasterscanningen gepresenteerd, met een schakelbare beeldfunctie in dubbele modus. De wide-field imaging wordt aangedreven door een tweedimensionale gemotoriseerde vertaalfase, terwijl de real-time imaging wordt gerealiseerd met galvanometers. Door verschillende parameters en beeldmodi in te stellen, kan in vivo visualisatie van het vasculaire netwerk van kleine dieren worden uitgevoerd. De real-time beeldvorming kan worden gebruikt om pulsverandering en bloedstroomverandering van door drugs geïnduceerde, enz. te observeren. De wide-field imaging kan worden gebruikt om de groeiverandering van tumor vasculatuur te volgen. Deze zijn gemakkelijk toe te nemen op verschillende gebieden van fundamenteel biomedisch onderzoek.
Introduction
Op biomedisch basisgebied kunnen kleine dieren de menselijke fysiologische functie simuleren. Daarom speelt beeldvorming van kleine dieren een belangrijke rol bij het begeleiden van het onderzoek naar menselijke homologe ziekten en het zoeken naar een effectieve behandeling1. Photoacoustic imaging (PAI) is een niet-invasieve beeldvormingstechniek die de voordelen van optische beeldvorming en echografie combineert2. Fotoakoetische microscopie (PAM) is een waardevolle beeldvormingsmethode voor fundamenteel onderzoek van kleine dieren3. PAM kan gemakkelijk hoge resolutie, diepe penetratie, hoge specificiteit en hoogcontrastbeelden verkrijgen die op optische excitatie en ultrasone opsporing worden gebaseerd4.
Een pulslaser met een specifieke golflengte wordt geabsorbeerd door endogene chromoforen van weefsels. Vervolgens stijgt de temperatuur van het weefsel, wat resulteert in de productie van foto-geïnduceerde ultrasone golven. De ultrasone golven kunnen worden gedetecteerd door een ultrasone transducer. Na signaalverwerving en beeldreconstructie kan de ruimtelijke verdeling van de absorber worden verkregen5. Aan de ene kant vereist de visualisatie van het vasculaire netwerk van het hele orgaan een breed gezichtsveld. Het proces van breedveldscanning duurt meestal lang om hoge resolutie6,7,8te garanderen . Aan de andere kant vereist het observeren van de hemodynamische activiteiten van kleine dieren een snelle real-time beeldvorming. De real-time beeldvorming is nuttig om de vitale functies van kleine dieren in realtime te bestuderen9,10,11. Het gezichtsveld van real-time imaging is meestal voldoende klein om een hoge updatesnelheid te garanderen. Er is dus vaak een afweging tussen het bereiken van een breed gezichtsveld en real-time beeldvorming. Voorheen werden twee verschillende systemen afzonderlijk gebruikt voor wide-field imaging of real-time imaging.
Dit werk rapporteert een dual raster-scanning photoacoustic imager (DRS-PAI), die wide-field imaging integreerde op basis van een tweedimensionale gemotoriseerde vertaalfase en real-time imaging op basis van een tweeassige galvanometerscanner. De wide-field imaging mode (WIM) wordt uitgevoerd om vasculaire morfologie te tonen. Voor de real-time imaging mode (RIM) zijn er momenteel twee functies. Ten eerste kan RIM realtime B-scanafbeeldingen leveren. Door de verplaatsing van vasculatuur langs de diepterichting te meten, kunnen de kenmerken van ademhaling of pols worden onthuld. Ten tweede kan de RIM kwantitatief het specifieke gebied in de WIM-afbeelding meten. Door vergelijkbare beelden van lokale WIM-regio's te bieden, kunnen de details van de lokale verandering nauwkeurig worden onthuld. Het systeem ontwerpt een flexibele overgang tussen breedveldbeeldvorming van vasculaire visualisatie en real-time beeldvorming van de lokale dynamiek. Het systeem is wenselijk in fundamenteel biomedisch onderzoek waar behoefte is aan beeldvorming van kleine dieren.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Alle dierproeven werden uitgevoerd in overeenstemming met de richtlijnen van de institutionele commissie voor dierverzorging en -gebruik van de South China Normal University, Guangzhou, China.
1. Systeeminstellingen
- Optisch pad (figuur 1)
- Gebruik een pulslaser van 532 nm als systeemlaserbron. Stel de herhalingssnelheid van de laser in op 10 kHz, de uitgangsenergie op 100% en de triggerinstelling op externe trigger met behulp van een door de gebruiker gedefinieerd programma.
- Koppel de laserstraal aan single-mode fiber (SMF) via een optische vezelkoppeling (FC1). Verbots de laserstraal met behulp van een optische vezel collimator (FC2) in een tweedimensionaal gemotoriseerd stadium (Motor, maximale snelheid: 20 mm/s).
- Leid de laserstraal af met behulp van een tweeassige galvanometerscanner (Galva). Gebruik een beweegbare spiegel (M1) om de straal te reflecteren. Focus de straal door een 4× objectieve lens (OL, Numeriek diafragma: 0.1).
- Gebruik een XY translator mount (TM) om de zelfgemaakte holle ultrasone transducer (UT, centrale frequentie: 25 MHz) te bevestigen; Bandbreedte: meer dan 90%; Middengat: 3 mm) aan de onderkant van de OL12. Passeer de geconcentreerde straal door het middelste gat van de ultrasone transducer.
- Scanpad
- Vergrendel de Galva met behulp van een veldprogrammeerbare poortarray (FPGA 2) tijdens WIM. Stel het juiste scanbereik en scansnelheid in met een door de gebruiker gedefinieerd programma.
- Vergrendel de motor met behulp van een veldprogrammeerbare poortarray (FPGA 1) tijdens RIM. Stel de scanfrequentie en het aantal scanpunten in met FPGA 2. Gebruik een door de gebruiker gedefinieerd programma om het scannen te starten en te stoppen.
- Gegevensverwerving
- Gebruik een 50-dB versterker (AMP) om het PA-signaal te versterken. Digitaliseer het signaal met de data acquisition card (DAQ). Verkrijg het triggersignaal via FPGA 1 of FPGA 2.
- Gebruik een GPU (Graphics Processing Unit) om gegevens te verwerken en afbeeldingen parallel weer tegeven 13.
- CCD beeldvormingssysteem
- Gebruik een ringvormige witte LED (Kleurtemperatuur: 6500 K; Verlichtingssterkte: 40000 lux; Diameter: 7,5 cm) als lichtbron. Verwijder M1, gebruik een vaste spiegel (M2) om het licht weer te geven.
- Neem de beelden op met een CCD-camera (6,3 miljoen pixels) op het PA-beeldsysteem. Geef de afbeeldingen weer met een weergavesoftware.
2. Systeemuitlijning
- Kies een watertank (10 cm × 10 cm × 4,4 cm; onderste venster: 3 cm × 3 cm). Bedek de hele watertank met een polyethyleenmembraan (membraan dik: 10 μm). Voeg voldoende ultrapure water toe.
- Plaats de watertank op het werkstadium.
- Zet de laserschakelaar aan. Selecteer het laserbesturingsprogramma. Verwarm voor 5 min. Druk op de toets "ON" op de pompschakelaar. Stel de laserparameters in volgens stap 1.1.1. Open de baffle van de laser.
- Selecteer het verzamelde A-lijnprogramma. Druk op de knop "Start" om het enkelpuntssignaal vast te leggen en amplitude en spectrum van het huidige A-lijnsignaal weer te geven.
- Plaats een mes op de bodem van de watertank. Dompel het onderste deel van ut onder in de watertank voor akoestische koppeling. Vermijd bubbels in het onderste deel van de UT.
- Pas de positie van Galva aan, pas de XY-vertaler aan tussen UT en OL om oscillatiesignaal te voorkomen en zorg ervoor dat dit confocaal is.
- Pas de hoogte van de werkfase aan om de amplitude van het signaal te maximaliseren en de scherpstelpositie te bepalen.
3. Dierexperiment
- Gebruik een 5\u20126 weken oude BALB/c muis met een lichaamsgewicht van 20\u201230 g.
- Verdoof het dier met behulp van urethaan (1 g/kg) dat intraperitoneaal vóór het experiment wordt geïnjecteerd.
- Voer de overgang tussen WIM en RIM uit.
- Gebruik een planaire ultrasone transducer. Scheer de vacht op de achterkant van de muis met behulp van een trimmer en ontharingscrème. Plaats de muis op de houder (8 cm × 2,8 cm × 2 cm) in de liggende positie.
- Laat het beeldvormingsgebied in contact komen met het polyethyleenmembraan met behulp van ultrasone gel. Vermijd bellen in het contactgedeelte.
- Plaats de houder op het werkpodium voor akoestische koppeling. Volg stap 2.3\u20122.4 om de laser te starten en het A-lijnsignaal te verzamelen. Volg stap 2.6\u20122.7 om uit te lijnen. Druk op "Stop" om de verzameling na uitlijning te beëindigen.
- Selecteer het WIM-programma. Geef de nieuw gemaakte map een naam. Stel de scanparameter in op 20 mm/s op het tabblad "Scansnelheid", "20 mm*20 mm" op het tabblad "Scangebied" en "20" op het tabblad "Stap". Klik op de knop Verzamelen om te beginnen met scannen.
- Klik op de knop Stoppen om het scannen na acquisitie te beëindigen. Klik op Terug naar nul om de motor op nul te zetten. Sluit de laser baffle. Stel de triggerinstelling in op interne trigger. Druk op de UIT-knop voor het pompen van de schakelaar.
- Vervang wim trigger als RIM trigger en sluit deze aan op de externe laser trigger. Druk op de ON-knop voor het pompen van de schakelaar. Stel de triggerinstelling in op de externe trigger. Klik op de knop Afsluiten om het WIM-programma af te sluiten.
- Gebruik stap 2.4 om het A-lijnsignaal te verzamelen. Open de laser baffle. Volg stap 2.6\u20122.7 om uit te lijnen. Druk op Stoppen om de verzameling te beëindigen na uitlijning.
- Selecteer het RIM-programma. Geef de nieuw gemaakte map een naam. Klik op de knop Verzamelen om te beginnen met scannen.
- Klik op de knop Stoppen om het scannen te beëindigen nadat u de acquisitie hebt voltooid. Klik op de knop Afsluiten om het RIM-programma af te sluiten.
- Euthanaseer het dier met behulp van cervicale dislocatie aan het einde van de beeldvorming.
- Voer WIM uit van vasculaire visualisatie.
- Gebruik een gerichte ultrasone transducer (centrale frequentie: 25 MHz; Bandbreedte: meer dan 90%; Brandpuntsafstand: 8 mm). Verwijder het haar van muizenoor of hoofdhuid.
- Gebruik een scalpel om een kleine incisie te maken aan de zijkant van de craniale temporale bovenkant van de muis (diepte tot aan de schedel). Gebruik een oogschaar om te beginnen met deze incisie. Snijd de hoofdhuid rond de buitenkant van de schedel. Comprimeer het bloedingspunt om het bloeden te stoppen. Was de wond met normale zoutoplossing. Plaats de muis op de houder.
- Laat het beeldvormingsgebied in contact komen met het polyethyleenmembraan met behulp van ultrasone gel. Vermijd bellen in het contactgebied (Aanvullend figuur 1).
- Plaats de houder op het werkpodium voor akoestische koppeling. Gebruik stappen 2.3\u20122.4 om laser te openen en A-lijnsignaal te verzamelen. Gebruik stap 2.6\u20122.7 om uit te lijnen. Druk op Stoppen om de verzameling te beëindigen na uitlijning.
- Selecteer WIM-programma. Geef de nieuw gemaakte map een naam. Stel de scanparameter in op "10 mm/s" op het tabblad "Scansnelheid", "10 mm*10 mm" onder het tabblad "Scangebied" en "10" op het tabblad "Stap". Klik op de knop Verzamelen om te beginnen met scannen.
- Klik op de knop Stoppen om het scannen te beëindigen nadat u de acquisitie hebt voltooid. Klik op de return to zero om de motor terug te laten keren naar nul. Klik op de knop Afsluiten om het WIM-programma af te sluiten.
- Euthanaseer het dier aan het einde van de procedure terwijl het dier nog onder narcose is.
- Gebruik een gerichte ultrasone transducer (centrale frequentie: 25 MHz; Bandbreedte: meer dan 90%; Brandpuntsafstand: 8 mm). Verwijder het haar van muizenoor of hoofdhuid.
- Voer RIM uit voor dynamische monitoring van kleine dieren.
- Scheer het haar van de muizenbuik. Plaats de muis op de houder in de liggende positie.
- Laat het beeldvormingsgebied in contact komen met het polyethyleenmembraan met behulp van ultrasone gel. Vermijd bellen in het contactgebied.
- Plaats de houder op het werkpodium voor akoestische koppeling. Voer stappen 2.3\u20122.4 uit om de laser te starten en het A-lijnsignaal te verzamelen. Voer stap 2.6\u20122.7 uit om uit te lijnen. Druk op Stoppen om de verzameling te beëindigen na uitlijning.
- Selecteer het RIM-programma. Geef de nieuw gemaakte map een naam. Klik op de knop Verzamelen om te beginnen met scannen.
- Klik op de knop Stoppen om het scannen te beëindigen nadat u de acquisitie hebt voltooid. Klik op de knop Afsluiten om het RIM-programma af te sluiten.
- Gebruik de RIM-gegevens voor de reconstructie van de maximale amplitudeprojectie (MAP) langs de diepterichting door het door de gebruiker gedefinieerde programma. Observeer de dynamische veranderingen bij het dier.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Het schema van de DRS-PAI wordt weergegeven in figuur 1. Het systeem maakt flexibel en herhaalbaar schakelen tussen WIM en RIM mogelijk. Het verkregen PA-signaal wordt snel verwerkt om PA B-Scan- en MAP-afbeeldingen te genereren. De CCD-camera kan foto's van monsters leveren.
Alle componenten van de DRS-PAI zijn geïntegreerd en geassembleerd in een imager setup(figuur 2),waardoor het eenvoudig te monteren en te bedienen is. In de WIM wordt continu rasterscanning van een tweedimensionaal gemotoriseerd stadium gebruikt. Het signaal van de loopfase wordt geregistreerd. De gegevensverwerving verliep tijdens een uniforme vertaling van de fase. In de RIM werd een tweeassige galvanometerscanner gebruikt. De gegevens werden synchroon verzameld met de Galva-scan (figuur 3).
Hier werden de vasculaire beelden van monsters met elke beeldvormingsmodus verzameld. Figuur 4A toont de MAP-afbeelding van de muis terug in WIM. De beeldtijd was ongeveer 33 min. Figuur 4B toont B-scan beelden van muisrug tijdens RIM. Het hele proces van RIM wordt weergegeven in Video 1. Vervolgens werd een gerichte ultrasone transducer gebruikt. De vasculaire netwerken van het muizenoor en de hersenen worden weergegeven in figuur 5. De beeldtijd was ongeveer 16 minuten. Dit toont het vermogen van DRS-PAI aan om vasculatuur in groot veld in beeld te stellen. Bovendien laat figuur 6A zien dat het beeldbereik een vat bevat. Het beeldbereik van RIM is ongeveer 100 μm door het gebruik van de gerichte ultrasone transducer. Het verplaatsingsbeeld langs de diepterichting van de muisbuik versus de tijd wordt weergegeven in figuur 6B. Video 2 toont het proces van vasculaire verplaatsing en het verkrijgen van de huidige puls- of ademhalingscurve.
Figuur 1: Het schema van het DRS-PAI-systeem. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 2: Het ontwerp van het DRS-PAI-systeem.
(A) De foto van het DRS-PAI-systeem. (B) Het paneel toont een foto van de opstelling voor laserpadassemblage. (C) Het paneel toont het 3D-model voor laserpadassemblage. (D) Het paneel toont de tweeassige snelle galvanometerscannerassemblage. (E) Het paneel toont de sondeassemblage. (F) Het paneel toont de CCD optische padassemblage. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 3: De instelling van de scan voor verschillende beeldmodi.
(A) Het scanpad van WIM. (B) Het scanpad van RIM. (C) De trigger-instelling van twee beeldmodi. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 4: De fotoakoetische WIM en RIM van de muisrug.
(A) De KAART-afbeelding van de muis terug in WIM. (B) De B-Scan afbeeldingen van de muis terug in RIM. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 5: De fotoakoetische WIM van een muis.
(A) De MAP-afbeelding van het muisoor in WIM. (B) De MAP-afbeelding van het muisbrein in WIM. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 6: De fotoakotische RAND van de muisbuik.
(A) De B-scan beelden van de muisbuik in RIM. (B) De MAP-afbeelding langs de diepterichting van de muisbuik versus de tijd in RIM. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Video 1: Het proces van RIM van de muisrug. Klik hier om deze video te downloaden.
Video 2: Het proces van MAP-afbeelding langs de diepterichting van de muisbuik versus tijd. Klik hier om deze video te downloaden.
Aanvullende figuur 1: Het deel van het beeldvormende gebied dat in contact komt met het polyethyleenmembraan. Klik hier om dit cijfer te downloaden.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Hier presenteerden we een dubbele raster-scanning fotoakoetische kleine dier imager voor niet-invasieve vasculaire visualisatie die werd ontworpen en ontwikkeld om de structuur van de vasculatuur en de bijbehorende dynamische verandering van bloed vast te leggen. Het voordeel van DRS-PAI is dat het de WIM en de RIM integreert in één systeem, waardoor het gemakkelijker wordt om vasculaire dynamische en vasculaire netwerkstructuur van kleine dieren te bestuderen. Het systeem kan een hoge resolutie breedveld vasculaire visualisatie en real-time bloeddynamiek bieden.
In het huidige systeem werd de optische excitatie geïmplementeerd met een lichtbron met één golflengte. Een toekomstig multigolflengtesysteem zou andere parameters bieden, zoals zuurstofverzadiging in het bloed. Verder kan een speciaal beeldverwerkingsalgoritme worden ontwikkeld voor kwantitatieve analyse, waaronder het schatten van vasculaire diameter, vasculaire dichtheid, vasculaire tortuositeit, enz. De kwantitatieve analyse kan waardevolle informatie opleveren voor vroegtijdige diagnose en behandeling van ziekten.
Kortom, het systeem stelt onderzoekers in staat om hoogdimensionale fysiologische en pathologische inzichten te verkrijgen in onderzoek bij kleine dieren met biomedische relevantie. Het systeem kan worden aangepast aan de meeste onderzoeksinstellingen voor kleine dieren, waaronder maar niet beperkt tot beeldvorming van angiogenese, tumormicromilieus, hemodynamische, functionele verbindingen in de hersenen, microcirculatie, geneesmiddelreacties en therapieresponsen. Kritieke stappen binnen het protocol zijn onder meer het ontwerp van de dubbele scanstructuur, de confocale aanpassing van de optische en akoestische focus in de WIM en de centrumpuntaanpassing van het geluidsveld in de RIM.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Alle dierproeven werden uitgevoerd volgens de goedgekeurde richtlijnen en voorschriften van de Institutional Animal Care and Use Committee. De auteurs hebben geen relevante financiële belangen in het manuscript en geen andere potentiële belangenconflicten om openbaar te maken.
Acknowledgments
De auteurs willen graag de financiële steun van de National Natural Science Foundation of China (61822505; 11774101; 61627827; 81630046), The Science and Technology Planning Project of Guangdong Province, China (2015B020233016) en The Science and Technology Program of Guangzhou (No. 2019020001).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 12 bit multi-purpose digitizer | Spectrum | M3i.3221 | Data acquisition card |
| A-line collected program | National Instrument | LabVIEW | User-defined program |
| Amplifier | RF Bay | LNA-650 | Amplifier |
| Depilatory Cream | Veet | 33-II | Animal depilatory |
| Fiberport Coupler | Thorlab | PAF-X-7-A | Fiber Coupler |
| Field Programmable Gate Array | Altera | Cyclone IV | Trigger Control |
| Fixed Focus Collomation Packages | Thorlabs | F240FC-532 | Fiber Collimator |
| Foused ultrasonic transducer | Self-made | ||
| Graphics Processing Unit | NVIDIA | GeForce GTX 1060 | Processing data |
| Holder | Self-made | Animal fixation | |
| Laser control program | National Instrument | LabVIEW | User-defined program |
| Mice | Guangdong Medical Laboratory Animal Center | BALB/c | Animal Model |
| Microscope camera | Mshot | MS60 | CCD camera |
| Microscope Objective | Daheng Optics | GCO-2111 | Objective Lens |
| Mirror | Daheng Optics | GCC-1011 | Moveable/Fixed Mirror |
| Moving Magnet Capacitive Detector Galvanometer Scanner | Century Sunny | S8107 | real-time scanner |
| Mshot image analysis system | Mshot | Display software | |
| Normal Saline | CR DOUBLE-CRANE | H34023609 | Normal Saline |
| Ophthalmic Scissors | SUJIE | Scalp Remove | |
| Planar ultrasonic transducer | Self-made | ||
| Plastic Wrap | HJSJLSL | Polyethylene Membrane | |
| Program Control Software | National Instrument | LabVIEW | User-defined Program |
| Pulsed Q-swithched Laser | Laser-export | DTL-314QT | 532-nm pulse Laser |
| Real-time imaging program | National Instrument | LabVIEW | User-defined program |
| Ring-shaped white LED | Self-made | ||
| Shaver | Codos | CP-9200 | Animal Shaver |
| Single-Mode Fibers | Nufern | 460-HP | Single-mode fiber |
| Surgical Blade | SUJIE | 11 | Blade |
| Surgical Scalpel | SUJIE | 7 | Scalp Remove |
| Translation Stage | Jiancheng Optics | LS2-25T | wide-field scanning stage |
| Ultrasonic Transducer | Self-made | ||
| Ultrasound gel | GUANGGONG PAI | ZC4252418 | Acoustic Coupling |
| Urethane | Tokyo Chemical Industry | C0028 | Animal Anestheized |
| Water tank | Self-made | ||
| Wide-field imaging program | National Instrument | LabVIEW | User-defined program |
| XY Translator Mount | Self-made |
References
- Li, L., et al. Single-impulse panoramic photoacoustic computed tomography of small-animal whole-body dynamics at high spatiotemporal resolution. Nature Biomedical Engineering. 1 (5), 0071 (2017).
- Jeon, S., Kim, J., Lee, D., Baik, J. W., Kim, C. Review on practical photoacoustic microscopy. Photoacoustics. 15, 100141 (2019).
- Baik, J. W., et al. Super wide-field photoacoustic microscopy of animal and humans in vivo. IEEE Transactions on Medical Imaging. 39 (4), 975-984 (2019).
- Omar, M., Aguirre, J., Ntziachristos, V.
- Lin, L., et al. Single-breath-hold photoacoustic computed tomography of the breast. Nature Communications. 9 (1), 2352 (2018).
- Yang, F., et al. Wide-field monitoring and real-time local recoding microvascular networks on small animals with a dual-raster-scanned photoacoustic microscope. Journal of Biophotonics. 13 (6), 202000022 (2020).
- Sun, J., Zhou, Q., Yang, S. Label-free photoacoustic imaging guided sclerotherapy for vascular malformations: a feasibility study. Optics Express. 26 (4), 4967-4978 (2018).
- Xu, D., Yang, S., Wang, Y., Gu, Y., Xing, D. Noninvasive and high-resolving photoacoustic dermoscopy of human skin. Biomedical Optics Express. 7 (6), 2095-2102 (2016).
- Zhang, W., et al. Miniaturized photoacoustic probe for in vivo imaging of subcutaneous microvessels within human skin. Quantitative Imaging in Medicine and Surgery. 9 (5), 807-814 (2019).
- Chen, Q., et al.
- Lan, B., et al. High-speed widefield photoacoustic microscopy of small-animal hemodynamics. Biomedical Optics Express. 9, 4689-4700 (2018).
- Ma, H., Yang, S., Cheng, Z., Xing, D. Photoacoustic confocal dermoscope with a waterless coupling and impedance matching opto-sono probe. Optics Letters. 42 (12), 2342-2345 (2017).
- Kang, H., Lee, S. W., Lee, E. S., Kim, S. H., Lee, T. G. Real-time GPU-accelerated processing and volumetric display for wide-field laser-scanning optical-resolution photoacoustic microscopy. Biomedical Optics Express. 6 (12), 4650-4660 (2015).
