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Medicine

OP-IVM: Combinación de la maduración in vitro después de la recuperación de ovocitos con cirugía ginecológica

Published: May 9, 2021 doi: 10.3791/61647
*1,2,3,4,5, *1,2,3,4,5, *1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5
* These authors contributed equally

ERRATUM NOTICE

Summary

La maduración in vitro (MIV) antes de la operación ginecológica (OP-IVM) combina la IVM después de la recuperación de ovocitos con la cirugía ginecológica de rutina y sirve como una extensión de las aplicaciones convencionales de IVM para la preservación de la fertilidad.

Abstract

El uso de la maduración in vitro (MIV) antes de la operación ginecológica (OP-IVM) es una extensión de la IVM convencional que combina la IVM después de la recuperación de ovocitos con la cirugía ginecológica de rutina. OP-IVM es adecuado para pacientes sometidas a cirugía ginecológica benigna que tienen la necesidad de preservación de la fertilidad (PF) o tratamientos de infertilidad como la fertilización in vitro y la transferencia de embriones (FIV-ET). En el quirófano, las pacientes sometidas a cirugía ginecológica benigna son primero anestesiadas y reciben tratamiento de aspiración de folículo inmaduro (IMFA) guiado por ultrasonido. A medida que se realiza la cirugía ginecológica posterior, se examinan los complejos cúmulo-ovocito (AOC) y los AOC inmaduros se transfieren al medio IVM y se cultivan durante 28-32 horas en el laboratorio de FIV. Después de la evaluación, los ovocitos maduros en la etapa MII se seleccionarán y criopreservarán en nitrógeno líquido para FP o se fertilizarán mediante inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI) para FIV-ET. Al combinar la IVM con la cirugía ginecológica, los ovocitos inmaduros que habrían sido descartados se pueden guardar y utilizar para la tecnología de reproducción asistida (ART). El procedimiento, la importancia y los aspectos críticos de OP-IVM se describen en este artículo.

Introduction

IVM es un TAR en el que los ovocitos inmaduros humanos se cultivan in vitro para la maduración para FIV-ET o FP. En la IVM, no se utilizan medicamentos de inducción de la ovulación, lo que reduce el dolor, la carga financiera y las complicaciones como el síndrome de hiperestimulación ovárica (SHO)1,2. Además, la IVM es particularmente adecuada para la FP de pacientes con cáncer y el tratamiento de la infertilidad de pacientes sensibles a las hormonas que pueden no poder o no tener tiempo para recibir la terapia de inducción de la ovulación3. Por lo tanto, aunque el número de ovocitos recuperados, la tasa de embarazo clínico (RCP) y la tasa de nacidos vivos (LBR) son más bajas que las de la FIV4,5,la IVM tiene sus propias ventajas únicas.

Las pacientes infértiles con lesiones endometriales, hidrosalpinx o quistes ováricos generalmente se someten a cirugía ginecológica antes del tratamiento con TAR, y sus ovocitos suelen ser inmaduros. OP-IVM utiliza ultrasonido transvaginal guiado para recuperar los ovocitos inmaduros y cultivarlos in vitro hasta la maduración para FIV-ET o FP. OP-IVM combina IVM después de la recuperación de ovocitos y la cirugía ginecológica, reduciendo así las complicaciones que son comunes en los ciclos controlados de hiperestimulación ovárica y ahorrando tiempo y dinero. Para los pacientes fértiles, OP-IVM podría servir como un "seguro de fertilidad" mientras se somete a una cirugía ginecológica de rutina.

Además, los daños causados por las cirugías ginecológicas, como la electrocauterización6,7 y la resección del tumor ovárico, podrían reducirse a través de la recuperación de ovocitos antes de la cirugía ginecológica. Por lo tanto, en comparación con la cirugía ginecológica de rutina, OP-IVM podría reducir el número de operaciones durante el tratamiento de la infertilidad y prevenir la pérdida de ovocitos funcionales durante la cirugía ovárica.

Un estudio previo ha demostrado que el procedimiento adicional de recuperación de ovocitos no aumentaría las complicaciones quirúrgicas y los resultados adversos del embarazo, ni prolongaría la estancia hospitalaria8. Algunas pacientes han dado a luz viva a través de OP-IVM8,lo que indica la viabilidad de este método. Este artículo describe las características de los pacientes que pueden beneficiarse de OP-IVM, así como los procedimientos y puntos críticos de OP-IVM y discute la evaluación de la madurez de los ovocitos humanos.

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Protocol

NOTA: Los estudios relacionados con el método OP-IVM han sido aprobados por la junta de revisión institucional (IRB) del Tercer Hospital de la Universidad de Pekín y el Comité de Ética de la Universidad de Pekín (2014S2004). En la Figura 1se muestra un resumen de OP-IVM. El procedimiento paso a paso se introducirá en la siguiente sección.

1. Introducción de OP-IVM a pacientes apropiados

  1. Identificar pacientes potenciales que puedan beneficiarse de OP-IVM como los descritos en los pasos 1.1.1-1.1.3.:
    1. Pacientes con síndrome de ovario poliquístico (SOP) con resistencia al clomifeno que necesitan cirugía de perforación ovárica laparoscópica.
    2. Pacientes infértiles que necesitan cirugías ginecológicas benignas, como miomectomía histeroscópica, polipectomía, resección transcervical del tabique y cirugía tubárica laparoscópica, y ooforocistectomía, antes del tratamiento con TARV.
    3. Pacientes con cáncer o enfermedad hematológica que están recibiendo quimiorradioterapia o radioterapia.

2. Consentimiento informado

  1. Proporcionar información completa a los pacientes, incluyendo por qué OP-IVM puede ser beneficioso, su procedimiento, los usos de los ovocitos IVM (FIV-ET o criopreservación), RCP y LBR estimados, y posibles complicaciones. Pida a los pacientes que den su consentimiento informado firmando el formulario de consentimiento.

3. Preparar etiquetas y medio de ovocitos IVM

  1. Imprima las etiquetas de identificación (ID) con el nombre y las fechas del paciente para los platos y tubos de cultivo.
  2. Agregue 0.5 ml de medio IVM suplementado con 0.075 UI / ml de hormona foliculoestimulante (FSH) y 0.075 UI / ml de hormona luteinizante (LH) a cada pozo de una placa de 4 pozos. Cubra el medio con aceite.
    NOTA: Realice todos estos procedimientos en bancos limpios de flujo laminar.
  3. Precalentar la placa de 4 pomos con medio de ovocitos IVM a 37 °C en aire humidificado que contenga 5% de CO2 y 5% de O2 al menos 6 h antes de su uso.

4. Administrar anestesia en quirófano

  1. Verifique el nombre del paciente antes de administrar anestesia.
  2. Anestesiar por vía intravenosa al paciente por anestesiólogo.

5. Realizar la recuperación de ovocitos

  1. Etiquete las etiquetas con el nombre, la fecha y la identificación en los platos y tubos de cultivo.
  2. Coloque al paciente en la posición de litotomía vesical; desinfectar, cubrir y frotar constantemente la vagina con solución salina tibia.
  3. Coloque la sonda de ultrasonido dentro de la vagina; escanear y registrar el número de folículos en ambos ovarios. Encuentre la ubicación más cercana al ovario como el sitio de punción y evite el intestino, la vejiga y los vasos sanguíneos grandes.
  4. Aspirar líquido folicular.
    1. Lave la aguja con un medio de manipulación de pH estable antes de perforar (consulte la Tabla de materiales).
    2. Inyecte la aguja de aspiración de un solo lumen de 19 G en los ovarios bajo la guía de ultrasonido.
    3. Punción de folículos más grandes con límites claros más cercanos a la sonda. En una posición baja, inyecte rápidamente la solución de enjuague suplementada con 25 U/ml de heparina. Aspire el líquido folicular con la aguja a una presión de 80-90 mmHg, girando la aguja ligeramente para aspirar la mayor cantidad de líquido folicular posible. Perfore otros folículos del lado cercano al lejano en este plano.
      NOTA: Durante la aspiración, el líquido folicular que contiene ovocitos fluirá hacia un tubo de ensayo estéril de 10 ml bajo presión negativa. La heparina puede reducir la viscosidad del líquido folicular para facilitar el proceso de aspiración.
    4. Retire la aguja del ovario (manténgala en la pared vaginal). Ajuste la dirección de la sonda de ultrasonido y perfore los folículos restantes en otros planos. Intente aspirar todos los folículos con un diámetro de ~ 5-9 mm.
      NOTA: Ajuste la posición de la sonda para mantenerla más cerca de los ovarios en todo momento. Presione el fórnix vaginal con la fuerza adecuada para reducir las lesiones y el sangrado.
    5. Extraiga la aguja después de terminar en un ovario, lave la aguja con el medio de manipulación y perfore el otro lado con el mismo método.
      NOTA: Aspiración completa del folículo en 25-30 min.
  5. Transfiera el líquido folicular de la sala de operaciones al laboratorio de FIV dentro de unos minutos después de confirmar el nombre y la identificación del paciente.
    NOTA: Transfiera el líquido folicular aspirado al banco de laboratorio de FIV lo antes posible para prevenir la coagulación.
  6. Detectar hemorragia activa en la cavidad pélvica con ecografía en modo B después de perforar todos los folículos. Inserte un espéculo y apunte la punta al fórnix posterior para detectar sangrado activo en el sitio de la punción.
    NOTA: No se debe observar sangrado activo en el sitio de punción vaginal si la posición del ovario es normal y la recuperación de ovocitos se realiza con cuidado. Para un sangrado leve que continúa incluso después de la compresión, mantenga una compresa de gasa estéril en la vagina durante 2-4 h. Controle el sangrado excesivo de las arterias pequeñas utilizando pinzas con pinzas vasculares durante 2-4 h. El sangrado en la cavidad pélvica u ovario, que rara vez ocurre, debe controlarse mediante electrocoagulación mediante cirugía laparoscópica.

6. Cirugía ginecológica

  1. En función de la necesidad y la condición de la paciente, realice la cirugía ginecológica adecuada después de la recuperación de ovocitos.
    1. Realizar cirugía laparoscópica de perforación ovárica para pacientes con síndrome de ovario poliquístico (SOP) con resistencia al clomifeno.
    2. Realizar cirugía ginecológica benigna para pacientes infértiles antes del tratamiento con TAR, como miomectomía histeroscópica, polipectomía, resección transcervical del tabique y cirugía tubárica laparoscópica, y ooforocistectomía.
    3. Realizar ovariectomía para la criopreservación de la fertilidad de pacientes con cáncer o enfermedad hematológica que necesiten recibir quimiorradioterapia.
      NOTA: Estas cirugías ginecológicas son operaciones clínicas básicas y estandarizadas. Las pautas de operación en varios países y hospitales deben ser relativamente similares.

7. Realizar IVM

NOTA: Realizar todo el proceso de IVM en un plano homotérmico de 37 °C.

  1. Filtre el líquido del folículo aspirado con un colador de células de nylon de 70 μm. Enjuague repetidamente el tubo de cultivo y el colador con un medio de manipulación de pH estable precalentado. Asegúrese de que todos los AOC inmaduros se transfieran completamente al plato de cultivo. Recoger el líquido filtrado, enjuagar y cultivar en una placa de Petri de 100 x 15 mm.
  2. Examine los ACO (Figura 2) bajo el estereoscopio con un aumento de 40x. Transfiera rápidamente los inmaduros a un medio de ovocitos IVM precalentado.
    NOTA: Elija un aumento apropiado dependiendo del hábito del operador.
  3. Registre el número de AOC inmaduros cultivados.
  4. Informar al paciente sobre el número de AOC cultivados. Discuta la recolección de semen con los pacientes y sus parejas. Realizar la extracción de espermatozoides de acuerdo con el procedimiento normal.
  5. Culture los AOC inmaduros a 37 °C en aire humidificado que contenga 5% de CO2 y 5% de O2 durante 28-32 h.
  6. Evaluar la madurez de los ovocitos.
    1. Denude las células del cúmulo mediante pipeteo repetido usando una pipeta Pasteur de vidrio debajo del estereoscopio con aumento de 40x. Examinar la extrusión del cuerpo polar (PB) para identificar la etapa de desarrollo de los ovocitos. Consulte la Figura 2 para obtener imágenes representativas de ovocitos en AOCs, metafase II (MII), metafase I (MI) y vesículas germinales (GV) con características morfológicas claras.
      NOTA: Utilice una llama vertical (por ejemplo, de un quemador Bunsen) para ajustar el diámetro de la pipeta Pasteur de vidrio al tamaño de un ovocito.
    2. Cuente los ovocitos MII y registre el número.
    3. Elija ovocitos maduros para FIV o vitrificación.
      NOTA: Recolecte esperma el día en que los ovocitos maduran para la FIV, pero no para la vitrificación de ovocitos.
    4. Culta los ovocitos inmaduros en la etapa GV e IM en el medio de cultivo IVM original con células cúmulos durante otras 10-14 h. Repita los pasos 7.6.2-7.6.3.

8. Realizar ICSI o vitrificación de ovocitos

  1. Siga el procedimiento estándar del centro reproductivo8.

9. Cultivar embriones y realizar criopreservación embrionaria

  1. Siga el procedimiento estándar del centro reproductivo8.

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Representative Results

Hasta diciembre de 2019, OP-IVM se utilizó para la preservación de la fertilidad de 274 pacientes. Los resultados embriológicos y reproductivos de 158 pacientes entre 2014 y 2016 se publicaron en un artículo anterior8. En el siguiente ejemplo se describe el procedimiento seguido para un paciente con SOP que recibió OP-IVM en 2016. El paciente es un joven de 28 años diagnosticado con infertilidad primaria, quiste anexial izquierdo y SOP. Recibió cistectomía laparoscópica y OP-IVM el 28 de septiembrede2016; Se obtuvieron 27 AOCs inmaduros. Después de un cultivo de 28 h, 7 ovocitos en la etapa MII fueron seleccionados y fertilizados por ICSI. El número de pronócleos 2 (2PN) de buena calidad en el día 1 y embriones en el día 3 y el día 5 fueron 6, 6 y 2, respectivamente. Los blastocistos obtenidos el día 5 (4 de octubrede2016) fueron congelados. El 14defebrero de 2017, un blastocisto se descongeló. Esta blástula descongelada estaba viva y se transfirió al útero el 14 de febrerode2017. Los resultados de una prueba de gonadotropina coriónica humana (hCG) en sangre fueron positivos, y la ecografía mostró un embarazo intrauterino temprano. La paciente dio a luz a una niña sana por cesárea a las 40 semanas el 2denoviembre de 2017.

Figure 1
Figura 1: Diagrama de flujo OP-IVM. Antes de la cirugía ginecológica, bajo guía de ultrasonido transvaginal, el líquido del folículo se aspira a través de IMFA. El líquido folicular obtenido se transfiere al laboratorio de FIV, se filtra y se enjuaga. Los AOC inmaduros se transfieren a una solución de cultivo de IVM precalentada y se cultivan durante 28-32 h. Los ovocitos maduros con PB se utilizan para la criopreservación o FIV-ET. Abreviaturas: IMFA = aspiración de folículo inmaduro; FIV = fertilización in vitro; FIV-ET = FIV y transferencia de embriones; AOC = complejos cúmulo-ovocito; IVM = maduración in vitro; OP-IVM = IVM antes de una operación ginecológica; GV = vesícula germinal; IM = metafase I; ICSI = inyección intracitoplasmática de espermatozoides; PB = cuerpo polar; PN = pro-núcleo; D1 = día 1. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 2
Figura 2: Características morfológicas de imágenes representativas de ovocitos. (A) ACO, (B) MII, (C) MI, (D) GV etapa. Abreviaturas: AOC = complejos cúmulos-oocitos; GV = vesícula germinal; IM = metafase I; MII = metafase II. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Discussion

El método OP-IVM descrito en este artículo se extiende a las aplicaciones convencionales de IVM y combina IVM después de la recuperación de ovocitos con cirugía ginecológica de rutina. Los ovocitos que se habrían perdido en la cirugía ginecológica ahora se pueden usar para FIV-ET o FP sin riesgos quirúrgicos adicionales. OP-IVM se utilizó por primera vez para recuperar ovocitos antes de la perforación ovárica en pacientes con SOP. Su aplicación pronto se expandió a pacientes infértiles que necesitan cirugía ginecológica benigna y pacientes con cáncer o enfermedad hematológica que necesitan quimiorradioterapia. Debido al riesgo potencial de metástasis, OP-IVM no es adecuado ni recomendado para pacientes con tumores malignos. Basado en OP-IVM, se ha establecido en esta institución un nuevo modo chino de banco de óvulos para la PF de pacientes infértiles y pacientes con cáncer.

Para OP-IVM, se debe considerar tanto la urgencia de la cirugía ginecológica como el potencial de obtener un mayor número de ovocitos. En general, el resultado de la MIV se correlaciona positivamente con el número de ovocitos inmaduros obtenidos durante la recuperación de ovocitos9. Los folículos dominantes pueden inhibir el crecimiento de los folículos más pequeños circundantes y causar atresia10,lo que resulta en un número reducido de ovocitos inmaduros recuperados. Por lo tanto, si la cirugía ginecológica no es urgente, la mejor ventana para OP-IVM es cuando se observa un mayor número de folículos pequeños con pocos folículos dominantes mediante ecografía en modo B. Además, la hormona antimulleriana (AMH) se puede utilizar como parámetro para predecir la reserva ovárica, ya que el número de ovocitos recuperados se correlaciona significativamente positivamente con AMH11,12. En los casos en que se ha priorizado la operación ginecológica, se deben recuperar tantos ovocitos inmaduros como sea posible. En las operaciones de emergencia, la recuperación de ovocitos y la IVM deben evaluarse cuidadosamente en función de la condición y la voluntad del paciente.

IMFA bajo guía de ultrasonido transvaginal es un método utilizado para recuperar ovocitos que pueden reducir el daño a la función ovárica13,14. La punción ovárica laparoscópica para aspirar ovocitos inmaduros también se utiliza en algunos estudios15. Sin embargo, en comparación con la laparoscopia, la IMFA bajo ultrasonido transvaginal ocupa menos tiempo, es menos invasiva, es más fácil de realizar16,17y puede lograr una aspiración folicular más dirigida. Por lo tanto, para minimizar el impacto en la reserva ovárica y aumentar la precisión de la aspiración, se recomienda LA IMFA bajo la guía de ultrasonido transvaginal como un mejor método para la recuperación de ovocitos en OP-IVM. Sin embargo, la ICSI se recomienda para la fertilización. Estudios previos han demostrado que la zona pelúcida se endurecerá después de ser cultivada in vitro durante largos períodos, lo que resulta en una tasa reducida de fertilización exitosa18. Se ha demostrado que la ICSI mejora eficazmente la tasa de fertilización de los ovocitos IVM en ciclosnaturales 19,20. Aunque estudios recientes han demostrado tasas de fertilización similares para ICSI y FIV21,22,ICSI tiene la ventaja de usar ciclos naturales en lugar de estimulación ovárica. Los embriones recolectados se congelan debido al endometrio no preparado, y la transferencia de embriones se puede realizar más tarde de acuerdo con el procedimiento estándar en cada centro.

El propósito del TAR es tratar la infertilidad y dar a luz bebés sanos. Investigaciones anteriores sobre los resultados reproductivos de OP-IVM mostraron que el número de ovocitos recuperados y las tasas de maduración de ovocitos son comparables con los observados para los ciclos convencionales de IVM utilizando FSH y hCG. Sin embargo, OP-IVM tiene una RCP más baja y una LBR más baja que la IVM convencional8,23,24,25. Esto puede explicarse por la maduración restringida de los ovocitos debido al escaso potencial de desarrollo de los ovocitos inmaduros en los ciclos naturales. Sin embargo, la estimulación hormonal no es una opción para algunos pacientes que no pueden o que no tienen tiempo para recibir el tratamiento. Además, la vitrificación puede dañar el potencial de desarrollo de los ovocitos, lo que resulta en bajas RCP y LBR26,27.

Además, las gonadotropinas pueden agrandar los ovarios y aumentar el riesgo de sangrado durante la recuperación de ovocitos, afectando negativamente la exposición de los campos quirúrgicos en la laparoscopia. El LBR del método OP-IVM es relativamente bajo. Se necesitan más estudios para examinar el mejor momento quirúrgico y modificar el sistema de cultivo de MIV para mejorar los resultados de op-MIV. En general, OP-IVM combina IVM con cirugía ginecológica para que los ovocitos inmaduros que habrían sido dañados o descartados puedan guardarse y usarse para art. OP-IVM tiene las ventajas de evitar las complicaciones causadas por los medicamentos estimulantes de los ovarios y reducir el número de operaciones para el tratamiento de la infertilidad. Por lo tanto, OP-IVM debe considerarse como un método de tratamiento potencialmente valioso para ciertos pacientes y estudiarse más en profundidad para comprender mejor sus efectos y resultados.

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Disclosures

Los autores no tienen nada que revelar.

Acknowledgments

Este trabajo fue apoyado por subvenciones del Programa Nacional de I + D clave de China (no. 2017YFC1002000, 2018YFC1004001, 2019YFA0801400), la Fundación Nacional de Ciencias de China (no. 81571386, 81730038), el Fondo de Innovación CAMS para Ciencias Médicas (2019-I2M-5-001) y el Proyecto especial de investigación de Desarrollo de Salud de Capital Chino (2018-2-4095).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
19 G single-lumen aspiration needles Cook, Australia K-OPS-7035-REH-ET
4-well plate Corning
70 μm nylon cell strainer Falcon, USA 352350
CO2 Incubator Thermo
Culture oil Vitrolife, Sweden 10029,OVOIL  Step 3.2.
FSH & LH Ferring Reproductive Health, Germany MENOPUR®
Glass Pasteur pipette Hilgenberg GmbH, Germany 3154102-26
G-MOPS medium pH-stable handling medium for washing the needle before puncturing
IVM medium Origio, Denmark ART-1600-B
Laminar Flow Clean Benches ESCO
Petri dish Thermo Fisher Scientific, Denmark 263991
pH stable handing media designed to support the handling and manipulation of oocytes and embryos outside the incubator Vitrolife, Sweden 10130, G-MOPS PLUS Step 7.1.
Rinse solution Cook, Australia K-SIFB-100
Stereoscope Nikon

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References

  1. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  2. Yang, Z. Y., Chian, R. C. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertility and Sterility. 108 (4), 577-584 (2017).
  3. Hatirnaz, S., et al. Oocyte in vitro maturation: A sytematic review. Turkish Journal of Obstetrics and Gynecology. 15 (2), 112-125 (2018).
  4. Gremeau, A. S., et al. In vitro maturation or in vitro fertilization for women with polycystic ovaries? A case-control study of 194 treatment cycles. Fertility and Sterility. 98 (2), 355-360 (2012).
  5. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  6. Sahin, C., et al. Which should be the preferred technique during laparoscopic ovarian cystectomy. Reproductive Sciences. 24 (3), 393-399 (2017).
  7. Xiao, J., et al. Impact of hemostatic methods on ovarian reserve and fertility in laparoscopic ovarian cystectomy. Experimental and Therapeutic. 17 (4), 2689-2693 (2019).
  8. Song, X. -L., et al. Enhancing the scope of in vitro maturation for fertility preservation: transvaginal retrieval of immature oocytes during endoscopic gynaecological procedures. Human Reproduction. 35 (4), 837-846 (2020).
  9. Magnusson, Å, Källen, K., Thurin-Kjellberg, A., Bergh, C. The number of oocytes retrieved during IVF: a balance between efficacy and safety. Human Reproduction. 33 (1), 58-64 (2018).
  10. Larose, H., et al. Gametogenesis: A journey from inception to conception. Current Topics in Developmental Biology. Wellik, D. M., et al. 132, Academic Press. 257-310 (2019).
  11. Broer, S. L., Broekmans, F. J. M., Laven, J. S. E., Fauser, B. C. J. M. Anti-Müllerian hormone: ovarian reserve testing and its potential clinical implications. Human Reproduction Update. 20 (5), 688-701 (2014).
  12. Arce, J. C., La Marca, A., Mirner Klein, B., Nyboe Andersen, A., Fleming, R. Antimüllerian hormone in gonadotropin releasing-hormone antagonist cycles: prediction of ovarian response and cumulative treatment outcome in good-prognosis patients. Fertility and Sterility. 99 (6), 1644-1653 (2013).
  13. Katayama, K. P., et al. Ultrasound-guided transvaginal needle aspiration of follicles for in vitro fertilization. Obstetrics and Gynecology. 72 (2), 271-274 (1988).
  14. Dellenbach, P., et al. Transvaginal sonographically controlled follicle puncture for oocyte retrieval. Fertility and Sterility. 44 (5), 656-662 (1985).
  15. Hirata, T., et al. Concomitant ovarian drilling and oocyte retrieval by laparoendoscopic single-site surgery led to live birth using in vitro maturation of oocyte and transfer of frozen-thawed blastocyst in woman with polycystic ovary syndrome. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 40 (5), 1431-1435 (2014).
  16. Deutinger, J., et al. Follicular aspiration for in vitro fertilization: sonographically guided transvaginal versus laparoscopic approach. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 26 (2), 127-133 (1987).
  17. Tanbo, T., Henriksen, T., Magnus, O., Abyholm, T. Oocyte retrieval in an IVF program. A comparison of laparoscopic and transvaginal ultrasound-guided follicular puncture. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (3), 243-246 (1988).
  18. Nagy, Z. P., et al. Pregnancy and birth after intracytoplasmic sperm injection of in vitro matured germinal-vesicle stage oocytes: case report. Fertility and Sterility. 65 (5), 1047-1050 (1996).
  19. Söderström-Anttila, V., Mäkinen, S., Tuuri, T., Suikkari, A. -M. Favourable pregnancy results with insemination of in vitro matured oocytes from unstimulated patients. Human Reproduction. 20 (6), 1534-1540 (2005).
  20. Hwang, J. L., Lin, Y. H., Tsai, Y. L. In vitro maturation and fertilization of immature oocytes: a comparative study of fertilization techniques. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 17 (1), 39-43 (2000).
  21. Walls, M., Junk, S., Ryan, J. P., Hart, R. IVF versus ICSI for the fertilization of in-vitro matured human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 25 (6), 603-607 (2012).
  22. Park, J. H., Jee, B. C., Kim, S. H. Comparison of normal and abnormal fertilization of in vitro-matured human oocyte according to insemination method. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 42 (4), 417-421 (2016).
  23. Ho, V. N. A., Pham, T. D., Le, A. H., Ho, T. M., Vuong, L. N. Live birth rate after human chorionic gonadotropin priming in vitro maturation in women with polycystic ovary syndrome. Journal of Ovarian Research. 11 (1), 70 (2018).
  24. Zheng, X., et al. Effect of hCG priming on embryonic development of immature oocytes collected from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Reproductive Biology and Endocrinology. 10, 40 (2012).
  25. Tannus, S., et al. Predictive factors for live birth after in vitro maturation of oocytes in women with polycystic ovary syndrome. Archives of Gynecology and Obstetrics. 297 (1), 199-204 (2018).
  26. Cohen, Y., et al. Decreased pregnancy and live birth rates after vitrification of in vitro matured oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 35 (9), 1683-1689 (2018).
  27. Yazdanpanah, F., Khalili, M. A., Eftekhar, M., Karimi, H. The effect of vitrification on maturation and viability capacities of immature human oocytes. Archives of Gynecology and Obstetrics. 288 (2), 439-444 (2013).

Tags

Medicina Número 171 IVM preservación de la fertilidad recuperación transvaginal procedimientos ginecológicos endoscópicos SOP

Erratum

Formal Correction: Erratum: OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery
Posted by JoVE Editors on 06/26/2023. Citeable Link.

An erratum was issued for: OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery. The Protocol and Representative Results sections were updated.

Step 3.2 of the Protocol was updated from:

Add 0.5 mL of IVM medium supplemented with 0.075 IU/mL of follicle-stimulating hormone (FSH) and 0.075 IU/mL of luteinizing hormone (LH) to each well of a 4-well plate. Cover the medium with oil.

to:

Add 0.5 mL of IVM medium supplemented with 0.75 IU/mL of follicle-stimulating hormone (FSH) and 0.75 IU/mL of luteinizing hormone (LH) to each well of a 4-well plate. Cover the medium with oil.

The legend for Figure 2 was updated from:

Figure 2: Morphological characteristics of representative images of oocytes. (A) COCs, (B) MII, (C) MI, (D) GV stage. Abbreviations: COCs = cumulus-oocyte complexes; GV = germinal vesicle; MI = metaphase I; MII = metaphase II.

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Figure 2: Morphological characteristics of representative images of oocytes. (A) COCs, (B) GV, (C) MI, (D) MII stage. Abbreviations: COCs = cumulus-oocyte complexes; GV = germinal vesicle; MI = metaphase I; MII = metaphase II.

OP-IVM: Combinación de la maduración in vitro después de la recuperación de ovocitos con cirugía ginecológica
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Liu, T., Song, X., Zheng, X., Yan,More

Liu, T., Song, X., Zheng, X., Yan, L., Ma, C., Li, R., Yan, J., Qiao, J. OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery. J. Vis. Exp. (171), e61647, doi:10.3791/61647 (2021).

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