Summary

小鼠原代胰腺腺泡细胞的分离和培养

Published: August 13, 2013
doi:

Summary

在本出版物中,我们描述了一个快速,便捷的程序,用于隔离和培养主要从小鼠胰腺腺泡细胞。这种方法构成一个有价值的方法,以新鲜的正常/未转化的胰腺外分泌细胞的生理研究。

Abstract

此协议允许快速分离小鼠胰腺腺泡(少于1小时),使得有可能保持它们在培养一周以上。可以从一个单一的小鼠胰腺获得超过20×10 6个腺泡细胞。此协议可提供在独立处理多达10个并行胰腺。因为它保留腺泡结构,这种模式非常适合从胰腺肿瘤,这显示许多基因的改变,造成部分或者全部丧失腺泡分化的细胞系的建立在体外胰腺外分泌的生理研究。

Introduction

一个经常遇到的问题为研究实验室工作外分泌胰腺组织腺泡细胞在体外培养一段时间足够长,以允许长期实验的难度。

的一个因素阻碍这种培养系统的发展是由于在糖酵解,蛋白水解和脂解酶,字面消化的胰腺组织胰腺细胞的分离过程中,当它们被释放到高含量的实验操作胰腺组织所固有的灵敏度。

第二个因素是显着的体外可塑性腺泡细胞,这往往会失去它们的分泌特性和转分化其他成熟细胞,如胰腺导管细胞或肝细胞样细胞1。 在体外 ,这种细胞的可塑性变化与实验条件(如培养基成分)2 </燮>和适当的培养条件下,胰腺外分泌细胞的1到设计中引入了一定程度的复杂性。

已经开发了几种方法的腺泡细胞的分离和培养,从豚鼠胰腺3-5的第一。最初,这些协议涉及消化胰腺组织胶原酶糜蛋白酶和蛋白酶鸡尾酒的,剧烈的机械分离与最终的隔离。以这种方式分离的胰腺细胞显示异常的结构和功能特征,特别是根尖的结构和显着损害其膜受体的损失。分离出的细胞仍然是可行的只有1或2天。

制备分散,腺泡维护其内和细胞间的建筑,保护细胞膜,限制损坏表面受体,从而改善外分泌泌6-8。作为一个RESU,LT,这种方法提供延长7-10 天的体外腺泡细胞活力的主要优点。此外,这种方法目前优选的腺泡细胞分离9-12,因为维持细胞间的接触,包括通过间隙连接的细胞耦合,是一个重要的决定因素外分泌胰腺腺泡细胞表型的13。

由于去分化,腺泡细胞和导管上皮细胞转分化的起源积极的胰腺外分泌癌14建议的机制之一,分散腺泡模式也是足够的系统来研究胰腺癌的可塑性和其随后的分子机制。此外,在结合使用转基因动物的15,16和转基因技术的发展(2腺病毒或慢病毒转导,使用的纳米颗粒等),这可以在体外原腺泡细胞模型在确定各种遗传功能障碍如何影响腺泡细胞分化或去分化和调控,应该提供更好的了解胰腺炎的发作,癌前病变,细胞的可塑性变化的分子事件负责是非常有用的。

隔离分散腺泡是我们使用的方法,在我们的实验室中培养胰腺腺泡细胞。在这里,我们描述和讨论所采用的方法。它涉及酶解耦合无腺泡细胞的分离机械破碎胰腺组织(细菌胶原酶)。虽然大多数协议涉及培养腺泡,暂停或经过特殊处理的塑料基板,我们的成长他们只是简单地悬浮(24小时),播种之后如果需要长时间的细胞培养基质支架上。

此协议允许快速分离(少于1小时)分散胰交流INI,持续一个多星期的文化。它允许超过20×10 6每小鼠胰腺腺泡细胞的隔离。它的简单性使得能够处理多达10个独立的胰腺平行。保持腺泡内和细胞间的架构,从而腺泡分离的原代细胞的表型,这种模式构成了系统的首选转分化机制的研究,胰腺外分泌功能的机型,目前市面上的所有其他来自显示许多遗传性胰腺肿瘤改变导致细胞转化。

Protocol

伦理委员会批准,所有程序监管的政府机关(“委员会评估COMMUN坳中心列昂·贝拉尔,A L'Animalerie中转DE L'ENS,AU PBES等AU LABORATOIRE P4”(CECCAPP))。小鼠保持在无特定病原体动物设施在的“PLATEFORME AniCan中心莱昂BERARD”(法国里昂),并符合机构的指引处理。 图1中所示的程序的示意图。 1。胰腺的解剖和的弯曲齿(0天) <p class="jove_con…

Representative Results

图1图式“分散”腺泡主要腺泡细胞的分离方法。的关键步骤,这在协议过程中都必须严格遵守的讨论部分中描述的。 以方便其剥除,胰腺从腹部与附加的脾脏( 图2)一起被收集。两个机构需要削减分开,仍然可以连接到胰腺残余的脂肪组织必须被删除(步骤1.6)。 宏观和微观图片, 如图3所示,代表每一个步骤的…

Discussion

在这个协议中,我们描述了一个程序隔离胰腺腺泡细胞。在小于1小时,这种方法使得有可能超过20×10 6个腺泡细胞,每只动物隔离。由于其快速和简单的实现(多达10个胰腺可以被独立处理每个实验并行),该协议将出现一个很好的妥协之间的隔离方法3-5,9-12,17。

关键步骤/故障排除

这种方法的效率依赖在几个关键点上采取的预防?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们感谢工作人员AniCan(CRCL,里昂),动物保健技术援助。这项工作是协会倾LA RECHERCHE SUR LE癌症研究所杜国家癌症研究所国家德拉健康等德拉RECHERCHEMédicale(INSERM艾文莉计划),国家法甲抗癌症,支持,并通过奖学金从国家法甲抗癌症(JG),从研究所国家杜癌症(JG),部DE L'ENSEIGNEMENT高等等德拉RECHERCHE法国(RMP和DFV)协会倾LA RECHERCHE SUR LE癌症( DFV)。

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
0.2 μm filter Dutscher 146560
10 ml serological pipettes Beckton Dickinson 357551
100 μm filter Beckton Dickinson 352360
100 mm Petri dish Beckton Dickinson 353003
1000 μl filter tips Starlab S1122-1830
20 μl filter tips Starlab S1120-1810
200 μl filter tips Starlab S1120-8810
25 ml serological pipettes Beckton Dickinson 357535
5 ml serological pipettes Beckton Dickinson 357543
50 ml polypropylene tube Beckton Dickinson 352070
6-well plate Beckton Dickinson 353046
Acetic acid 100% VWR BDH Prolabo 20104.298
Collagenase IA Sigma-Aldrich C2676
Curved forceps, Dumont #7 World Precision Instruments 14188 To sterilize before use
Dissecting scissors, straight World Precision Instruments 14393 To sterilize before use
Epidermal Growth Factor, human Promokine C-60180
Ethanol absolute (AnalaR Normapur) VWR BDH Prolabo 20821.310
Fetal Bovine Serum Lonza 14-801F
Forceps, Dumont #5 World Precision Instruments 14098 To sterilize before use
Hank’s Balanced Salt Solution 1x Gibco 14025050
HEPES 1 M (pH 6.98-7.30) Lonza 17-737F
Incubator O2/CO2 Sanyo MCO-19M
Inverted microscope Nikon Eclipse TS100
Matrigel Beckton Dickinson 356234
Microbiological Safety Cabinet, level II Faster SafeFast Elite 212 S
Noyes scissors, sharp/sharp tips, German World Precision Instruments 500228-G To sterilize before use
Penicillin-Streptomycin mixture Gibco 15140122
Phosphate Buffer Saline 10x Gibco 14200067
Pipet-Aid Drummond Scientific Company Pipet-Aid XP
Pipetman P1000 Gilson F123602
Pipetman P20 Gilson F123600
Pipetman P200 Gilson F123601
Refrigerated centrifuge Eppendorf 5810R
Scalpel Paramount Surgimed Ltd. Disposable Scalpel Size 23
T25 flask, 25 cm2 Sigma-Aldrich Z707481
Trypsin inhibitor, from Glycine Max Sigma-Aldrich T6522
Type I collagen Beckton Dickinson 354236
Waymouth’s medium Gibco 31220-023

References

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Gout, J., Pommier, R. M., Vincent, D. F., Kaniewski, B., Martel, S., Valcourt, U., Bartholin, L. Isolation and Culture of Mouse Primary Pancreatic Acinar Cells. J. Vis. Exp. (78), e50514, doi:10.3791/50514 (2013).

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