Rotular o domínio extracelular de uma proteína de membrana com um fluoróforo sensível ao pH, superecliptic pHluorin (SEP), permite a localização subcelular, expressão, e o tráfico de ser determinado. proteínas imagiologia SEP-rotulado com microscopia de fluorescência de reflexão total interna (TIRFM) permite a quantificação dos níveis da proteína na membrana do RE e periférico plasma.
Entendimento tráfico de membrana proteína, reunião e expressão requer uma abordagem que diferencia entre aqueles que residem em organelas intracelulares e as localizadas na membrana plasmática. medidas tradicionais baseados em fluorescência não têm a capacidade de distinguir as proteínas da membrana que residem em diferentes organelos. metodologias de ponta transcender os métodos tradicionais por acoplamento fluoróforos sensíveis ao pH com microscopia de fluorescência de reflexão interna total (TIRFM). TIRF iluminação excita a amostra até cerca de 150 nm a partir da interface de amostra de vidro, diminuindo, assim, o fundo, aumentando a relação sinal-ruído, e aumentando resolução. O volume de excitação em TIRFM abrange a membrana plasmática e organelas nas proximidades, tal como o ER periférica. Superecliptic pHluorin (SEP) é uma versão sensível ao pH da GFP. Geneticamente que codifica setembro para o domínio extracelular de uma proteína de membrana de interesse posiciona o fluoróforo sobreo lado luminal do RE e na região extracelular da célula. Setembro é fluorescente quando o pH é maior do que 6, mas permanece num estado desligado a valores de pH mais baixos. Portanto, os receptores marcados com fluorescência quando setembro residente no retículo endoplasmático (ER) ou após a inserção na membrana do plasma (PM), mas não quando confinado a uma vesícula de tráfico ou outros organelos tais como Golgi. O pH extracelular pode ser ajustado para ditar a fluorescência de receptores na membrana plasmática. A diferença na fluorescência entre as imagens TIRF a pH extracelular neutros e ácidos para a mesma célula corresponde a um número relativo de receptores na membrana plasmática. Isto permite a medição simultânea de receptores residentes intracelulares e de membrana de plasma. eventos de inserção de vesículas standard também pode ser medida quando o pH extracelular é neutra, correspondendo a uma vesícula de baixo pH o tráfico de fusão com a membrana plasmática e a transição para um estado fluorescente. este versatile técnica pode ser explorada para estudar a localização, a expressão, e o tráfico de proteínas de membrana.
As alterações na expressão do receptor, distribuição e montagem ter sido ligado a uma grande variedade de doenças, incluindo a doença de Alzheimer, doença de Parkinson, fibrose cística, e dependência de drogas 1, 2, 3, 4, 5. Por exemplo, a nicotina e outros ligandos nicotínicos influenciar o tráfico de receptores de acetilcolina nicotínicos (nAChR) que conduzem a mudanças no tráfico, expressão, e regulação positiva 1, 2, 5, 6, 7, 8, 9, 10. A nicotina aumenta o número total de nAChRs montados dentro de uma célula, aumenta tráfico para a membrana plasmática, umad altera a montagem de subunidades para favorecer uma versão de alta sensibilidade de alguns subtipos. Resolvendo alterações distintas no tráfico, montagem e expressão de receptores em um modelo de doença fornece detalhes mecanicistas cruciais que são essenciais para definir alvos de drogas. Uma abordagem ideal seria rapidamente diferenciar entre receptores intracelulares e as localizadas na membrana plasmática. Isto é particularmente difícil nos casos em que uma maior parte de uma proteína particular reside intracelularmente, tais como com os nAChRs. Uma vez que a maioria dos nAChRs são localizados no retículo endoplasmático, as medidas tradicionais não têm a resolução espaço-temporal necessário para identificar alterações de localização e de tráfico ao longo da via secretora. Tráfico receptor e estudos de expressão de nAChRs foram essencialmente realizados utilizando radioligandos de ligação 11, 12 Os ensaios de biotinilação, Western blotting 13, ou imunoprecipitação Techniq ues 12. Estes dependem da especificidade de ligação de uma molécula repórter ou a fixação das células e não têm a capacidade de distinguir entre simultaneamente membrana plasmática residente e receptores intracelulares. Portanto, estudos de montagem canal iônico e vesículas dinâmica em grande parte contou com baixo rendimento técnicas eletrofisiológicas 14.
resolução espacial e temporal superior é possível com os avanços na microscopia de fluorescência. Moléculas repórter codificados geneticamente, tais como a proteína fluorescente verde (GFP) e suas variantes, eliminar os problemas de ligação não específicos e aumentar a sensibilidade 15. Uma variante sensível ao pH da GFP, conhecido como pHluorin superecliptic (SEP), pode ser utilizada para explorar as diferenças inerentes entre os compartimentos de pH dentro de uma célula para determinar a localização 5, 7, 8,Ref "> 9, 16, 17, 18. setembro fluoresce quando o pH é maior do que 6, mas permanece num estado desligado, a pH baixo. Assim, os receptores marcados com setembro do seu lado luminal são detectados quando presente no retículo endoplasmático ( ER) ou após a inserção na membrana do plasma (PM), mas não quando confinado a uma vesícula de tráfico. a manipulação do pH extracelular em contacto com receptores na membrana plasmática, por conseguinte, altera a fluorescência e, portanto, a detecção destes receptores. Se a mesma célula é fotografada sequencialmente a ambos um pH extracelular neutra e, em seguida, um pH inferior a 6, a diferença entre as imagens é atribuída a receptores localizados na membrana plasmática. Isto permite a medição simultânea de intracelular (ER periférica) e receptores de membrana residentes de plasma 5, 7, 8 </sup>, 9. eventos de inserção de vesículas standard também pode ser resolvido quando o pH extracelular é neutro. Uma vez que um baixo pH tráfico de vesículas funde com a membrana plasmática, o lado luminal da vesícula é exposto à solução extracelular neutro, fazendo com que uma transição detectado como uma explosão de fluorescência 7, 18, 19, 20. Setembro permite a medição dos receptores localizados na membrana plasmática e do retículo endoplasmático periférica, e proporciona um meio para medir o tráfico de receptores entre estas regiões subcelulares 5, 7, 18.
Para alcançar maior resolução na membrana plasmática, um receptor com a SEP geneticamente codificado é fotografada por microscopia de fluorescência de reflexão interna total (TIRFM). Este método é particularmenteútil se a maioria dos receptores são localizada em regiões intracelulares, uma vez que TIRFM aumenta a visibilidade da membrana do plasma. TIRFM também permite a resolução da dinâmica do tráfico de vesículas simples que transportem receptores SEP-marcados mediante inserção no PM. A reflexão interna total ocorre na interface entre materiais com diferentes índices de refracção, tal como entre uma célula e uma lamela de vidro 21, 22. Setembro fluoresce quando irradiado com 488 nm de excitação, que é orientada para alcançar reflexão interna total na interface da solução de vidro e de células. Isto produz uma onda evanescente que penetra cerca de 150 nm para a amostra, apenas fluoróforos excitantes no interior deste volume. Apenas setembro contendo receptores num ambiente de pH neutro dentro desta gama de excitação são detectados, correspondentes àqueles que residem na membrana plasmática ou retículo endoplasmático periférica. Uma vez que a detecção é limitado tO excitação por onda evanescente, a fluorescência de fundo da região intracelular é reduzida e a relação sinal-ruído é aumentada 21, 22. Além disso, uma vez que a radiação não penetra na massa da célula, fotodano é minimizado o que permite imagens de células vivas ao longo do tempo. Como resultado, acoplado com TIRFM geneticamente codificado setembro fornece a alta resolução e sensibilidade requerida para medir a localização subcelular e tráfico dinâmica de receptores da membrana ao longo da via secretora.
A sensibilidade de setembro pH permite receptores que residem na membrana plasmática de ser distinguido de receptores intracelulares no retículo endoplasmático, e pode ser usado para resolver eventos de inserção de vesículas 5, 7, 8, 9, 18, 19, 20 receptor de transporte . Várias téc…
The authors have nothing to disclose.
This work was supported in part by the National Institute on Drug Abuse T32 DA 016176, National Institute on Drug Abuse DA 038817, and National Institute on Drug Abuse DA 040047.
Reagent/Material | |||
Cell Culture Flasks with Filter Cap, Sterile, Greiner Bio One, 75 cm^2 | VWR | 82050-856 | |
35 mm glass bottom petri dishes, sterile | Cell E&G | GBD00002-200 | |
Poly-D-lysine | vwr | 215017510 | |
Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM), High Glucose | Fisher Scientific | 11-965-084 | |
Opti-MEM I Reduced Serum Medium | Gibco / Fisher Scientific | 31-985-088 | |
Fetal Bovine Serum, Certified, US Origin, Standard (Sterile-Filtered) | Gibco / Fisher Scientific | 16-000-044 | |
TrypLE Express Enzyme (1X), no phenol red | Fisher Scientific | 12604-021 | |
Penicillin-Streptomycin Solution | VWR | 45000-652 | |
Leibovitz's L-15 Medium, no phenol red | Gibco / Fisher Scientific | 21083027 | Optional |
Lipofectamine | Fisher Scientific | 11668030 | Gently mix; Do not vortex |
Sodium chloride | Fisher Scientific | BP358-1 | |
Potassium chloride | Fisher Scientific | P217-10 | |
Magnesium chloride | Fisher Scientific | BP214-500 | |
Calcium chloride | Fisher Scientific | C79-500 | |
HEPES | Fisher Scientific | BP310-500 | |
D-Glucose | Fisher Scientific | D16-1 | |
Objective immersion oil | Olympus | Type F | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Equipment | |||
Microscope | Olympus | IX81 | |
Camera | Andor | iXon Ultra 897 | |
60x, 1.49 NA oil immersion objective | Olympus | APON 60XOTIRF | |
Motorized stage | Prior | IXPROXY | |
Motorized actuator (stepper motor) | Thorlabs | ZST213 | |
MetaMorph (or other imaging program) | Metamorph | ||
488 nm laser | Market Tech | ||
Single mode fiber | Thorlabs | SM450 | |
Mirrors | Thorlabs | BB1-E01 | |
Dichroic 488 nm LP | Semrock | Di02-R488-25×36 | |
Bandpass filter, 488 nm | Semrock | LL01-488-12.5 | |
Bandpass filter, 525/50 | Semrock | FF03-525/50-25 |