Summary

Indurre lesioni polmonari acute nei topi mediante instillazione diretta del lipopolioaccaride intracheale

Published: July 06, 2019
doi:

Summary

Presentato qui è una procedura passo-passo per indurre lesioni polmonari acute nei topi mediante instillazione lipopolysaccharide intracheale diretta ed eseguire l’analisi FACS di campioni di sangue, liquido di lavaggio bronchoalveolar e tessuto polmonare. La minima invasività, la manipolazione semplice, la buona riproducibilità e la titolazione della gravità della malattia sono vantaggi di questo approccio.

Abstract

La somministrazione di lipopolioaccharide (LPS) è un modo comune per studiare l’infiammazione polmonare e le lesioni polmonari acute (ALI) in piccoli modelli animali. Sono stati descritti vari approcci, come l’inalazione di LPS aerosolizzato e l’instillazione nasale o intratracheale. Il protocollo presentato descrive una procedura dettagliata passo-passo per indurre ALI nei topi mediante instillazione diretta InTRAtracheal LPS ed eseguire l’analisi FACS di campioni di sangue, liquido bal (Bron) e tessuto polmonare. Dopo la sedazione intraperitoneale, la trachea viene esposta e l’LPS viene somministrato tramite un catetere venoso da 22 G. Una reazione infiammatoria robusta e riproducibile con invasione di leucociti, upregulation delle citochine infiammatorie e interruzione della barriera alveolo-capillare viene indotta in poche ore a giorni, a seconda del dosaggio LPS utilizzato. La raccolta di campioni di sangue, fluido BAL e raccolta polmonare, nonché la lavorazione per l’analisi FACS, sono descritti in dettaglio nel protocollo. Anche se l’uso dell’LPS sterile non è adatto a studiare gli interventi farmacologici nelle malattie infettive, l’approccio descritto offre una minima invasività, una manipolazione semplice e una buona riproducibilità per rispondere a domande immunologiche meccanicistiche. Inoltre, la tezione della dose e l’uso di preparati LPS alternativi o ceppi di topo consentono la modulazione degli effetti clinici, che possono presentare diversi gradi di gravità ALI o in ritardo rispetto all’esordio tardivo dei sintomi della malattia.

Introduction

I modelli animali sperimentali sono indispensabili nella ricerca immunitaria di base. La somministrazione di batteri interi o componenti microbici è stata spesso utilizzata in piccoli modelli animali per indurre l’infiammazione locale o sistemica1. Lipopolysaccharide (LPS, o endotossina batterica) è un componente della parete cellulare e antigene superficiale di batteri gram-negativi (ad esempio, Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp., o Legionella sp.). La molecola termostabile e grande (peso molecolare 1-4 x 106 kDa) è costituita da una moiety lipidica (Lipid A), regione centrale (oligosaccharide) e un polisaccharide O (o antigene O). Il lipido A, con le sue catene di acidi grassi idrofobici, ancora la molecola in una membrana batterica e media (sulla degradazione dei batteri) l’attività immunologica e la tossicità degli LPS. Dopo il legame con la proteina legante LPS (LBP), i complessi LPS:LBP si legano il complesso del recettore CD14/TLR4/MD2 situato sulla superficie di molti tipi di cellule, inducendo una forte reazione infiammatoria con traslocazione nucleare NF-B e successiva upregulation dell’espressione citochina2.

Lesione polmonare acuta (ALI) è definita come insufficienza respiratoria iposemica acuta con edema polmonare bilaterale in assenza di insufficienza cardiaca3. La somministrazione di LPS è un modo comune per indurre infiammazione polmonare e ALI4,5,6,7. Anche se la sostanza sterile non è adatta a studiare gli interventi farmacologici nelle malattie infettive, le domande immunologiche meccanicistiche possono essere risolte con adeguata precisione. L’instillazione di LPS nella trachea induce una reazione infiammatoria robusta con invasione di leucociti, upregulation delle citochine infiammatorie e interruzione della barriera alveolo-capillare entro poche ore o giorni, a seconda del dosaggio di LPS3, 6,7.

Il protocollo presentato descrive una procedura dettagliata passo-passo per indurre ALI nei topi per instillazione Intratracheale LPS. Il modello è stato convalidato valutando l’espressione della citochina, l’invasione dei granulociti dei neutrofili e la perdita di albumina intra-alveolare come descritto in precedenza8.

Protocol

Questo protocollo sugli animali è stato approvato dal comitato locale per la cura degli animali (LANUV, Recklinghausen, Germania; protocollo n. 84-02.04.2015) ed è stato eseguito in conformità con le linee guida del National Institutes of Health per l’uso di animali vivi (pubblicazione NIH N. 85-23, rivisto 1996). 1. Induzione ALI Utilizzare topi adulti C57BL/6 di età di circa 10-12 settimane. Alloggiare gli animali in gabbie ventilate individualmente con libero accesso all’acqua…

Representative Results

L’approccio descritto per indurre l’ALI nei topi è stato convalidato valutando l’espressione della citochina, l’infiltrazione dei granulociti dei neutrofili e l’interruzione della barriera alveolo-capillare 24 h e 72 h dopo l’instillazione di LPS. Gli animali iniettati da PBS fungevano da controllo. La somministrazione di LPS intratracheali ha indotto una robusta risposta infiammatoria polmonare. L’espressione del TNF-z nel tessuto polmonare è stata significativamente upregola, raggiungendo un aumento sostenuto e super…

Discussion

La minima invasività, la manipolazione semplice e la buona riproducibilità sono caratteristiche chiave dell’approccio presentato per indurre ALI in un piccolo modello di roditore. L’uso di LPS invece di batteri interi nei modelli animali ha dei vantaggi. È un composto stabile e puro e può essere conservato in forma liofilizzata fino all’uso. È un potente stimolante per le risposte immunitarie innate attraverso il percorso TLR4, e la sua attività biologica può essere facilmente quantificata, facilitando la titolazi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori desiderano ringraziare Jan Kleiner e Susanne Schulz per aver fornito supporto tecnico. Gli autori riconoscono l’eccellente supporto della struttura centrale di citometria di flusso presso la facoltà di medicina dell’Università di Bonn. Gli autori non hanno ricevuto alcun finanziamento da alcuna organizzazione esterna.  Parte dei dati forniti nella sezione dei risultati e illustrati nella figura 3 è già stata mostrata in una precedente pubblicazione8.

Materials

1 ml syringes BD, Franklin Lakes, NJ, USA 300013
10 ml syringes BD, Franklin Lakes, NJ, USA 309110
Anti-CD115 (c-fms) APC Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 17-1152-80
Anti-CD11b (M1/70) – FITC Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 11-0112-81
Anti-CD45 (30-F11) – eF450 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 48-0451-82
Anti-F4/80 (BM-8) – PE Cy7 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 25-4801-82
Anti-Gr1 (RB6-8C5) BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 552093
Anti-Ly6C (HK1.4) PerCP-Cy5.5 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 45-5932-82
Anti-Ly6G (1A8) APC/Cy7 Bio Legend, San Diego, CA 127623
Buprenorphine hydrochloride Indivior UK Limited, Berkshire, UK
C57BL/6 mice, female, 10 – 12 weeks old Charles River, Wilmongton, MA, USA
CaliBRITE APC-beads (6µm) BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 340487
Canula 23 gauge 1'' BD, Franklin Lakes, NJ, USA 300800
Canula 26 gauge 1/2'' BD, Franklin Lakes, NJ, USA 303800
Cell strainer 70 µm BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 352350
Collagenase Type I Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA 1148089
Deoxyribonuclease II Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8764 
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS), sterile Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8662
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (PBS), without calcium chloride and magnesium chloride, sterile Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8537
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) solution Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA E7889
FACS tubes, 5 ml Sarstedt, Nümbrecht, Germany 551579
Fetal calf serum (FCS) Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA F2442
Forceps Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 11049-10
Isoflurane Baxter, Unterschleißheim, Germany
Ketamine hydrochloride Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany
Lipopolysaccharides (LPS) from Escherichia coli O111:B4 Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA L2630
LIVE/DEAD Fixable Dead Cell Green Kit Thermo Fisher, Waltham, MA, USA L23101
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 (Mouse BD Fc Block™), Clone 2.4G2 BD, Franklin Lakes, NJ, USA 553141
Red blood cell lysis buffer Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 00-4333-57
RPMI-1640, with L-glutamine and sodium bicarbonate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA R8758
Scissors Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 14060-09
Sodium azide (NaN3) Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA S2002
Spring scissors Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 15018-10
Tissue forceps Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 11021-12
Tubes Eppendorf, Hamburg, Germany 30125150
Venous catheter, 22 gauge B.Braun, Melsungen, Germany 4268091B
Xylazine hydrochloride Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany

References

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Cite This Article
Ehrentraut, H., Weisheit, C. K., Frede, S., Hilbert, T. Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation. J. Vis. Exp. (149), e59999, doi:10.3791/59999 (2019).

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