Summary

직접 경포당증 주입에 의해 마우스에 있는 심각한 폐 상해를 유도하는

Published: July 06, 2019
doi:

Summary

여기에 제시된 단계별 절차는 직접적인 경포대당증 주입에 의해 마우스에서 급성 폐 손상을 유도하고 혈액 샘플, 기관지 정맥 세척액 및 폐 조직의 FACS 분석을 수행하기 위한 것이다. 최소 침습성, 간단한 취급, 좋은 재현성 및 질병 중증도의 적정은 이 접근법의 이점입니다.

Abstract

리포폴리사카라이드(LPS)의 기도 투여는 작은 동물 모델에서 폐 염증 및 급성 폐 손상(ALI)을 연구하는 일반적인 방법이다. 에어로졸화된 LPS의 흡입뿐만 아니라 비강 또는 내외 주입과 같은 다양한 접근법이 기술되었다. 제시된 프로토콜은 직접적인 경질 LPS 주입에 의해 마우스에서 ALI를 유도하고 혈액 샘플, 기관지 정맥세척기(BAL) 유체 및 폐 조직의 FACS 분석을 수행하는 상세한 단계별 절차를 기술한다. 복강 내 침전 후, 기관노출 및 LPS는 22 G 정맥 카테터를 통해 투여된다. 백혈구 침략을 가진 강력하고 재현 가능한 선동적인 반응, 전염증성 사이토카인의 upregulation, 및 alveolo-모세관 방벽의 중단은 사용된 LPS 복용량에 따라서, 일 에서 일 안에 유도됩니다. FACS 분석을 위한 처리뿐만 아니라 혈액 샘플, BAL 유체 및 폐 수확의 수집은 프로토콜에 상세히 기술되어 있다. 멸균 LPS의 사용은 전염병에 있는 약리학적 내정간섭을 공부하기 위하여 적당하지 않더라도, 기술된 접근은 기계론적 면역학 질문에 대답하기 위하여 최소한의 침략, 간단한 취급 및 좋은 재현성을 제안합니다. 더욱이, 용량 적정뿐만 아니라 대체 LPS 제제 또는 마우스 균주의 사용은 임상 적효과의 변조를 허용하며, 이는 다른 정도의 ALI 심각도 또는 질병 증상의 조기 발병을 나타낼 수 있다.

Introduction

실험동물 모델은 기본적인 면역 연구에서 없어서는 안 될 존재입니다. 전체 박테리아 또는 미생물 성분의 투여는 국소 또는 전신 염증을유도하기 위해 작은 동물 모델에서 자주 사용되어 왔다 1. 리포폴리사카라이드(LPS, 또는 세균 내독소)는 그람 음성 박테리아의 세포벽 성분 및 표면 항원(예를 들어, 장내세균, 슈도모나스 종, 또는 레지오넬라 종)이다. 열안정 및 대형 분자(분자량 1-4 x 106 kDa)는 지질 모에티(Lipid A), 코어 영역(올리고사카라이드) 및 O 다당류(또는 O 항원)로 구성된다. 지질 A는 소수성 지방산 사슬을 가진 분자를 세균 막에 고정시키고 LPS의 면역 학적 활성 과 독성을 (박테리아의 분해 시)합니다. LPS 결합 단백질 (LBP)에 결합 한 다음, LPS : LBP 복합체는 많은 세포 유형의 표면에위치한 CD14 / TLR4 / MD2 수용체 복합체를 리게이트하여 NF-θB 핵 전좌 및 후속 업 조절을 통해 강력한 전염증반응을 유도합니다. 사이토 카인 발현2.

급성 폐 손상(ALI)은 심부전이 없는 양측 폐 부종과 함께 급성저산소성 호흡부전으로 정의된다 3. LPS의 기도 투여는 폐 염증 및 ALI 4, 5,6,7을유도하는 일반적인 방법이다. 멸균 물질은 전염병에 있는 약리학적인 내정간섭을 공부하기 위하여 적당하지 않더라도, 기계론적 면역학 질문은 적당한 정밀도로 대답될 수 있습니다. 기관에 LPS를 주입하면 백혈구 침입, 전염증성 사이토카인의 업조절, LPS 투여량에 따라 몇 시간에서 며칠 내에 알베올로 모세혈관 장벽의 중단을 가진 강력한 염증 반응을 유도합니다3. 6,7.

제시된 프로토콜은 경내 LPS 주입에 의해 마우스에서 ALI를 유도하는 상세한 단계별 절차를 기술한다. 이 모델은 앞서 설명한바와같이 사이토카인 발현, 호중구 과립구 침입 및 폐포 내 알부민 누설을 평가함으로써 검증되었다.

Protocol

이 동물 프로토콜은 동물 관리 지역 위원회 (LANUV, Recklinghausen, 독일; 프로토콜 번호 84-02.04.2015)에 의해 승인되었으며, 살아있는 동물의 사용을위한 건강 의학회 지침에 따라 수행되었다 (NIH 간행물) No. 85-23, 개정 1996). 1. 알리 유도 약 10-12주의 나이에 성인 C57BL/6 마우스를 사용하십시오. 물과 표준 설치류 차우에 무료로 액세스 할 수있는 개별 환기 케이지에 동물을 수용 …

Representative Results

마우스에서 ALI를 유도하는 기재된 접근법은 LPS 주입 후 사이토카인 발현, 호중구 과립구 침투, 및 알베올로-모세관 장벽 중단 24시간 및 72시간 동안 평가함으로써 검증되었다. PBS-주입 동물은 대조군으로 작용했다. 경내 LPS 투여는 강력한 폐 전염증반응을 유도했다. 폐 조직에서 TNF-α의 발현은 대조군 동물에 비해 50배 이상 지속적이고 50배 이상 증가에 도달하였다[RQ(TNF-α/18s); 24 h: 53.7 (SD=11.6); 72시…

Discussion

최소한의 침습성, 간단한 취급 및 좋은 재현성은 작은 설치류 모델에서 ALI를 유도하는 제시된 접근법의 주요 특징이다. 동물 모델에서 전체 박테리아 대신 LPS를 사용하는 것은 장점이 있습니다. 그것은 안정적이 고 순수한 화합물 이며 사용 될 때까지 동약 형태로 저장할 수 있습니다. 그것은 TLR4 통로를 통해 타고난 면역 반응을 위한 강력한 자극제이고, 그것의 생물학 활동은 좋은 재현성으로 질…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 얀 클라이너와 수잔 슐츠가 기술 지원을 제공한 것에 대해 감사를 표하고자 합니다. 저자는 본 대학의 의학 학부에서 유동 세포 측정 핵심 시설의 우수한 지원을 인정. 저자는 외부 조직으로부터 자금을 받지 못했습니다.  그림 3에 설명된 결과 섹션에 제공된 데이터의 일부는 이미 이전 발행물8에나와 있습니다.

Materials

1 ml syringes BD, Franklin Lakes, NJ, USA 300013
10 ml syringes BD, Franklin Lakes, NJ, USA 309110
Anti-CD115 (c-fms) APC Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 17-1152-80
Anti-CD11b (M1/70) – FITC Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 11-0112-81
Anti-CD45 (30-F11) – eF450 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 48-0451-82
Anti-F4/80 (BM-8) – PE Cy7 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 25-4801-82
Anti-Gr1 (RB6-8C5) BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 552093
Anti-Ly6C (HK1.4) PerCP-Cy5.5 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 45-5932-82
Anti-Ly6G (1A8) APC/Cy7 Bio Legend, San Diego, CA 127623
Buprenorphine hydrochloride Indivior UK Limited, Berkshire, UK
C57BL/6 mice, female, 10 – 12 weeks old Charles River, Wilmongton, MA, USA
CaliBRITE APC-beads (6µm) BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 340487
Canula 23 gauge 1'' BD, Franklin Lakes, NJ, USA 300800
Canula 26 gauge 1/2'' BD, Franklin Lakes, NJ, USA 303800
Cell strainer 70 µm BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 352350
Collagenase Type I Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA 1148089
Deoxyribonuclease II Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8764 
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS), sterile Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8662
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (PBS), without calcium chloride and magnesium chloride, sterile Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8537
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) solution Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA E7889
FACS tubes, 5 ml Sarstedt, Nümbrecht, Germany 551579
Fetal calf serum (FCS) Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA F2442
Forceps Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 11049-10
Isoflurane Baxter, Unterschleißheim, Germany
Ketamine hydrochloride Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany
Lipopolysaccharides (LPS) from Escherichia coli O111:B4 Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA L2630
LIVE/DEAD Fixable Dead Cell Green Kit Thermo Fisher, Waltham, MA, USA L23101
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 (Mouse BD Fc Block™), Clone 2.4G2 BD, Franklin Lakes, NJ, USA 553141
Red blood cell lysis buffer Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 00-4333-57
RPMI-1640, with L-glutamine and sodium bicarbonate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA R8758
Scissors Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 14060-09
Sodium azide (NaN3) Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA S2002
Spring scissors Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 15018-10
Tissue forceps Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 11021-12
Tubes Eppendorf, Hamburg, Germany 30125150
Venous catheter, 22 gauge B.Braun, Melsungen, Germany 4268091B
Xylazine hydrochloride Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany

References

  1. Fink, M. P. Animal models of sepsis. Virulence. 5 (1), 143-153 (2014).
  2. Lu, Y. -. C., Yeh, W. -. C., Ohashi, P. S. LPS/TLR4 signal transduction pathway. Cytokine. 42 (2), 145-151 (2008).
  3. Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. Animal models of acute lung injury. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 295 (3), 379-399 (2008).
  4. Rabelo, M. A. E., et al. Acute Lung Injury in Response to Intratracheal Instillation of Lipopolysaccharide in an Animal Model of Emphysema Induced by Elastase. Inflammation. 41 (1), 174-182 (2018).
  5. Liu, F., Li, W., Pauluhn, J., Trübel, H., Wang, C. Lipopolysaccharide-induced acute lung injury in rats: comparative assessment of intratracheal instillation and aerosol inhalation. Toxicology. 304, 158-166 (2013).
  6. Rittirsch, D., et al. Acute Lung Injury Induced by Lipopolysaccharide Is Independent of Complement Activation. Journal of Immunology. 180 (11), 7664-7672 (2008).
  7. D’Alessio, F. R., et al. CD4+CD25+Foxp3+ Tregs resolve experimental lung injury in mice and are present in humans with acute lung injury. The Journal of Clinical Investigation. 119 (10), 2898-2913 (2009).
  8. Ehrentraut, H., Weisheit, C., Scheck, M., Frede, S., Hilbert, T. Experimental murine acute lung injury induces increase of pulmonary TIE2-expressing macrophages. Journal of Inflammation. 15, 12 (2018).
  9. Szarka, R. J., Wang, N., Gordon, L., Nation, P. N., Smith, R. H. A murine model of pulmonary damage induced by lipopolysaccharide via intranasal instillation. Journal of Immunological Methods. 202 (1), 49-57 (1997).
  10. Reutershan, J., Basit, A., Galkina, E. V., Ley, K. Sequential recruitment of neutrophils into lung and bronchoalveolar lavage fluid in LPS-induced acute lung injury. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 289 (5), 807-815 (2005).
  11. Hoegl, S., et al. Capturing the multifactorial nature of ARDS – approach to model murine acute lung injury. Physiological Reports. 6 (6), (2018).
  12. Weisheit, C., et al. Ly6Clow and Not Ly6Chigh Macrophages Accumulate First in the Heart in a Model of Murine Pressure-Overload. PLoS ONE. 9 (11), (2014).
  13. Grommes, J., Soehnlein, O. Contribution of Neutrophils to Acute Lung Injury. Molecular Medicine. 17 (3-4), 293-307 (2011).
  14. Müller-Redetzky, H. C., Suttorp, N., Witzenrath, M. Dynamics of pulmonary endothelial barrier function in acute inflammation: mechanisms and therapeutic perspectives. Cell and Tissue Research. 355 (3), 657-673 (2014).
  15. Fujita, M., et al. Endothelial cell apoptosis in lipopolysaccharide-induced lung injury in mice. International Archives of Allergy and Immunology. 117 (3), 202-208 (1998).
  16. Doyen, V., et al. Inflammation induced by inhaled lipopolysaccharide depends on particle size in healthy volunteers. British Journal of Clinical Pharmacology. 82 (5), 1371-1381 (2016).
  17. Stephens, R. S., Johnston, L., Servinsky, L., Kim, B. S., Damarla, M. The tyrosine kinase inhibitor imatinib prevents lung injury and death after intravenous LPS in mice. Physiological Reports. 3 (11), (2015).
  18. Yu, Y., Jing, L., Zhang, X., Gao, C. Simvastatin Attenuates Acute Lung Injury via Regulating CDC42-PAK4 and Endothelial Microparticles. Shock. 47 (3), 378-384 (2017).
check_url/cn/59999?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ehrentraut, H., Weisheit, C. K., Frede, S., Hilbert, T. Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation. J. Vis. Exp. (149), e59999, doi:10.3791/59999 (2019).

View Video