Этот протокол свидетельствует о методах, используемых для создания 2D и 3D окружение в специально разработанных камер electrotactic, которые могут отслеживать клетки<em> В естественных условиях / экс естественных условиях</em> С помощью замедленной записи на одном уровне клетки, для того, чтобы исследовать гальванотаксиса / анодной и других клеточных ответов на постоянном токе (DC) электрического поля (EFS).
Эндогенные электрического поля (EFS) встречаются в природе в естественных условиях и играют важную роль в ткани / органа развитие и возрождение, в том числе и центральной нервной системы 1,2. Эти эндогенные КВ генерируются клеточной регуляции ионного транспорта в сочетании с электрическим сопротивлением клеток и тканей. Было сообщено, что прикладная EF лечение может способствовать функциональной ремонта повреждений спинного мозга у животных и человека 3,4. В частности, EF-направленной миграции клеток было продемонстрировано в разнообразные типы клеток 5,6, в том числе нервных клеток предшественников (НПС) 7,8. Применение постоянного тока (DC) КВ не является общедоступным техника в большинстве лабораторий. Мы описали подробные протоколы для применения КВ постоянного тока для культур клеток и тканей ранее 5,11. Здесь мы представляем видео демонстрации стандартных методов, основанных на рассчитываются поля создать 2Dг 3D-среды для NPC, и исследовать клеточный ответ на стимуляцию EF как в одной ячейке условий роста в 2D, так и органотипической спинной кусок шнура в 3D. Спинной cordslice является идеальным ткани получателя для изучения NPC бывших естественных поведения, после трансплантации, потому что цитоархитектоники организации ткани хорошо сохранились в этих культурах 9,10. Кроме того, это бывшие модели естественных также позволяет процедуры, которые технически невозможно отследить клеток в живом использование покадровой записи на одном уровне клетки. Крайне важно оценить поведение клетки не только в 2D-среде, но и в 3D органотипической условие, которое mimicks в естественных условиях окружающей среды. Эта система позволит изображений с высоким разрешением использования покровного стекла на основе блюд в ткани или органе культуры с 3D-слежения одного миграции клеток в пробирке и бывших естественных условиях и может быть промежуточный этап перед переходом на в VIВ.О. парадигм.
Протоколов, которые мы используем, на основе предыдущих исследований 5,11. Используя эти методы, стабильной культуры и электрический ток условиях может быть обеспечена при применении EF через агар мостов, решение Steinberg, и Ag / AgCl электродов, в клетки или кусочки культивировали в специ?…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа выполнена при финансовой поддержке Королевского общества СПС грант UF051616, Великобритания и Европейский исследовательский совет StG грант на 243 261 BS. Работа в лаборатории МЗ также поддерживается Калифорнийского института регенеративной медицины грант RB1-01417.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments |
FGF-basic Recombinant Human | Invitrogen | PHG0026 | 20 ng/mL |
EGF Recombinant Human | Invitrogen | PHG0311 | 20 ng/mL |
N2-Supplement (100X) liquid | Invitrogen | 02048 | |
DMEM/F12 medium (high glucose) | Invitrogen | 31330-095 | |
Poly-D-Lysine | Millipore | A-003-E | |
Natural mouse Laminin | Invitrogen | 23017-015 | |
Growth factor reduced Basement Membrane Matrix (Matrigel) | B.D. Biosciences | 354230 | |
HEPES buffer | Gibco | 15630 | |
McIlwain tissue chopper | The Mickle Laboratory Engineering Co Ltd | TC752-PD | |
Dow Corning high-vacuum silicone grease | Sigma-Aldrich | Z273554 |