Summary

분산 된 마우스 배아 전구 세포에서 생체 췌장 기관 형성에

Published: July 19, 2014
doi:

Summary

이 프로토콜에 기재된 삼차원 배양법 분지 기관에 자신의 상당한 팽창, 분화 및 형태 발생을 포함한 분산 배아 마우스 췌장 전구 세포로부터 췌장 개발 되풀이되었습니다. 이 방법은 영상, 틈새 시장의 기능 장애 및 조작에 대한 의무입니다.

Abstract

The pancreas is an essential organ that regulates glucose homeostasis and secretes digestive enzymes. Research on pancreas embryogenesis has led to the development of protocols to produce pancreatic cells from stem cells 1. The whole embryonic organ can be cultured at multiple stages of development 2-4. These culture methods have been useful to test drugs and to image developmental processes. However the expansion of the organ is very limited and morphogenesis is not faithfully recapitulated since the organ flattens.

We propose three-dimensional (3D) culture conditions that enable the efficient expansion of dissociated mouse embryonic pancreatic progenitors. By manipulating the composition of the culture medium it is possible to generate either hollow spheres, mainly composed of pancreatic progenitors expanding in their initial state, or, complex organoids which progress to more mature expanding progenitors and differentiate into endocrine, acinar and ductal cells and which spontaneously self-organize to resemble the embryonic pancreas.

We show here that the in vitro process recapitulates many aspects of natural pancreas development. This culture system is suitable to investigate how cells cooperate to form an organ by reducing its initial complexity to few progenitors. It is a model that reproduces the 3D architecture of the pancreas and that is therefore useful to study morphogenesis, including polarization of epithelial structures and branching. It is also appropriate to assess the response to mechanical cues of the niche such as stiffness and the effects on cell´s tensegrity.

Introduction

장기 문화는 생체 내 연구에서 복잡하지만 관련성이 높은 사이의 간격 및 세포 라인 모델의 편리하지만 대략적인 시뮬레이션을 다리에 유용한 모델을 제공합니다. 췌장의 경우, 내분비와 외분비 세포 시뮬레이션 세포주가 변형 되더라도 췌장 전구 세포로 완전히 동등한 어떠한 세포주도 없다. 성인 전체 췌장을 배양 할 수 없습니다; 절연 내분비 아일렛 세포 증식없이 몇 주 동안 유지 될 수 있으며, 조직 조각은 몇 시간에서 5 시험 관내에서 유지 될 수있다. 배아의 췌장 문화가 널리 개발을 연구뿐만 아니라 사용되었습니다뿐만 아니라 8을 처리하는 이미지로, 상피 – 간엽 상호 작용 4,6,7을 조사하기 위해 화학적으로 그 9 방해 할 수 있습니다. 두 기관 배양 방법이 주로 사용된다 : 첫 번째는 conve입니다 피브로넥틴 코팅 플레이트 2에 췌장 꽃 봉오리를 배양에 구성촬상 목적 더욱 편리 할; 두 번째 옵션은 문화에 가장 형태 형성을 유지 공기 – 액체 인터페이스 3,4에서 필터에 대한 기관입니다. 매우 유용하지만, 이러한 방법은 평탄화의 어느 정도 이어질; 정상적인 발달에 비해 시작 인구가 췌장 세포 및 중간 엽 세포의 모든 유형을 포함하는 복잡한 같이 선조의 팽창은 매우 제한된다.

문화 능력과 분산 일차 전지를 확장 계보 관계를 연구하고 고립 된 세포 유형 (10)의 고유 특성을 발견 할 가치가있다. 스기야마 등. 11 췌장 전구 세포 및 피더 레이어에 문화에 3 ~ 5 일 일부 기능 문자를 유지 내분비 전구 세포를 유지할 수 있습니다. 조상의 자연 / 줄기 세포하지만 neurosphere를 12, 13 mammospheres에 가깝다 Pancreatospheres는 성인 독도 및 유관 세포에서 확장되었습니다이러한 분야를 생성하는 것은 명확하지 않다. 또, 생리 현상과는 대조적으로, pancreatospheres 일부 뉴런에게 14,15을 함유 하였다. 분야는 최근 배아 췌장 전구 세포 (16, 17)과 좋은 시조 확장 이후의 분화와 pancreata 18 재생에서 생산하지만, 형태 형성을 요점을 되풀이하는 데 실패했다.

소형 기관에 자체 조직으로 분산 종종 정의 세포에서 3D 모델은 최근 번성하고 소장 (19, 20),(21),(22), 전립선 (23)과 기관 등의 여러 장기의 개발 또는 성인 매출을 시뮬레이션 한 24. 광섬유 컵 25, 26 또는 뇌 부위 (27)의 경우와 같이 몇몇 경우에, 형태 형성 발달과 분화는, ES 세포로부터 3D로 효과적으로 요약되었다.

여기, 우리 DES그들은 차별화 자체 구성 할 수 있습니다 3D 리겔 비계에서 해리 다 능성 췌장 전구 세포를 확장하는 방법을 cribe.

Protocol

이 프로토콜은 쥐 E10.5에서 파생 된 췌장 organoids 상피 췌장 세포를 해리 성장하는 것을 목표로하고있다. 이 프로토콜은 동물 실험에 대한 윤리적 승인을 필요로합니다. E10.5 마우스 배아에서 지느러미 췌장 버드 1. 해부 가위로 복부를 열고 배아 일 (E) 10.5 초과 임신 쥐를 희생, 두 자궁 뿔을 제거하고 차가운 인산 완충 생리 식염수 (PBS) 또는 둘 베…

Representative Results

3D 리겔에서 해리와 시드 E10.5 지느러미 췌장 전구 세포는 췌장 개발을 요점을 되풀이하다. 조상은 쉽게 형광 기자와 올 수 있습니다. 우리의 경우 우리는 (그림 2) Neurog3 4 활성화하지 않고 타목시펜의 부재에 따라서 Pdx1 프로모터 (Pdx1 – Ngn3-ER TM-nGFP) (동영상 1)에 의해 제어되는 핵 GFP 단백질을 발현하는 형질 전환 마우스를 사용. organoid 매체?…

Discussion

시험 관내에서 기능적인 베타 세포의 대규모 생산은 여전히 하나 비효율적이다. 이 도전적인 상황에서, 발달 생물학 연구 기능의 베타 세포의 분화에 필요한 정확한 신호를 해독하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 프로토콜은 체외에서 배아의 췌장 전구 세포의 유지 보수, 확장과 차별화 할 수 있습니다. 이것은 다른 내분비 호르몬을 공동으로 표현하지 않는 인슐린을 생산?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 Det에 FRIE Forskningsråd / Sundhed OG Sygdom에서 유전학 파일럿 상에 NCCR 프론티어, 청소년 당뇨병 연구 재단의 41-2009-775 그랜트 12-126875 순차적으로 투자되었다. 저자는 비디오 촬영을 호스팅 스파 놀리 실험실 감사합니다.

Materials

Penicillin-Streptomycin Gibco 15070-063 Stock keept at -20°C
KnockOut Serum replacement (supplement) Gibco 10828-028 Stock keept at -20°C
2-mercaptoethanol Sigma Aldrich 3148-25ML Stock keept at 4°C
Phorbol Myristate Acetate (PMA) Calbiotech 524400-1MG Stock keept at -20°C
Y-27632 (ROCK inhibitor) Sigma Aldrich ab120129 Stock keept at -20°C- Attention! Stability/source is a frequent source of problems
EGF Sigma Aldrich E9644-2MG Stock keept at -80°C
Recombinant Human R-spondin 1 R&D 4645-RS-025/CF Stock keept at -80°C
 - or - 
Recombinant Mouse R-spondin 1 R&D 3474-RS-050 Stock keept at -80°C
Recombinant Human FGF1 (aFGF) R&D 232-FA-025 Stock keept at -80°C- do not include to increase beta cell production
Heparin (Liquemin) Drossapharm Stock keept at 4°C
Recombinant Human FGF10 R&D 345-FG-025 Stock keept at -80°C
DMEM/F-12 Gibco 21331-020
Penicillin-Streptomycin Gibco 15070-063 Stock keept at -20°C
B27 x50 (supplement) Gibco 17504-044 Stock keept at -20°C
Recombinant Human FGF2 (bFGF) R&D 233-FB-025 Stock keept at -80°C
Y-27632 (ROCK inhibitor) Sigma Aldrich ab120129 Stock keept at -20°C- Attention! Stability/source is a frequent source of problems
DMEM/F-12 Gibco 21331-020
Matrigel Corning 356231 Stock keept at -20°C
Trypsin 0.05% Gibco 25300-054 Stock keept at 4°C
RNAlater – RNA stabilizing reagent Qiagen 76104 Store at room temperature
Dispase  Sigma Aldrich D4818-2MG Stock keept at -20°C
BSA for reconstitution Milipore 81-068 For reconstituition of cytokines  – Stock keept at -20°C
Fetal calf serum (FCS) Gibco 16141079 Stock keept at -20°C
60 well MicroWell trays Sigma Aldrich M0815-100EA
4-well plates Thermo Scientific 176740
95-well plates F bottom Greiner Bio 6555180
Glas bottom plates Ibidi 81158
Disposal micropittes Blaubrand 708745

Referenzen

  1. Pagliuca, F. W., Melton, D. A. How to make a functional beta-cell. Development. 140, 2472-2483 (2013).
  2. Percival, A. C., Slack, J. M. Analysis of pancreatic development using a cell lineage label. Exp Cell Res. 247, 123-132 (1999).
  3. Attali, M., et al. Control of beta-cell differentiation by the pancreatic mesenchyme. Diabetes. 56, 1248-1258 (2007).
  4. Johansson, K. A., et al. Temporal control of neurogenin3 activity in pancreas progenitors reveals competence windows for the generation of different endocrine cell types. Dev Cell. 12, 457-465 (2007).
  5. Speier, S., Rupnik, M. A novel approach to in situ characterization of pancreatic beta-cells. Pflugers Arch. 446, 553-558 (2003).
  6. Golosow, N., Grobstein, C. Epitheliomesenchymal interaction in pancreatic morphogenesis. Dev Biol. 4, 242-255 (1962).
  7. Miralles, F., Czernichow, P., Scharfmann, R. Follistatin regulates the relative proportions of endocrine versus exocrine tissue during pancreatic development. Development. 125, 1017-1024 (1998).
  8. Petzold, K. M., Spagnoli, F. M. A system for ex vivo culturing of embryonic pancreas. J. Vis. Exp. , 3979 (2012).
  9. Miralles, F., Battelino, T., Czernichow, P., Scharfmann, R. TGF-beta plays a key role in morphogenesis of the pancreatic islets of Langerhans by controlling the activity of the matrix metalloproteinase MMP-2. J Cell Biol. 143, 827-836 (1998).
  10. Hope, K., Bhatia, M. Clonal interrogation of stem cells. Nat Methods. 8, 36-40 (2011).
  11. Sugiyama, T., Rodriguez, R. T., McLean, G. W., Kim, S. K. Conserved markers of fetal pancreatic epithelium permit prospective isolation of islet progenitor cells by FACS. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 175-180 (2007).
  12. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
  13. Dontu, G., et al. In vitro propagation and transcriptional profiling of human mammary stem/progenitor cells. Genes Dev. 17, 1253-1270 (2003).
  14. Smukler, S. R., et al. The adult mouse and human pancreas contain rare multipotent stem cells that express insulin. Cell Stem Cell. 8, 281-293 (2011).
  15. Seaberg, R. M., et al. Clonal identification of multipotent precursors from adult mouse pancreas that generate neural and pancreatic lineages. Nat Biotechnol. 22, 1115-1124 (2004).
  16. Jin, L., et al. Colony-forming cells in the adult mouse pancreas are expandable in Matrigel and form endocrine/acinar colonies in laminin hydrogel. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 3907-3912 (2013).
  17. Sugiyama, T., et al. Reconstituting pancreas development from purified progenitor cells reveals genes essential for islet differentiation. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 12691-12696 (2013).
  18. Huch, M., et al. Unlimited in vitro expansion of adult bi-potent pancreas progenitors through the Lgr5/R-spondin axis. Embo J. , (2013).
  19. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. , (2009).
  20. Ootani, A., et al. Sustained in vitro intestinal epithelial culture within a Wnt-dependent stem cell niche. Nat Med. 15, 701-706 (2009).
  21. Barker, N., et al. Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro. Cell Stem Cell. 6, 25-36 (2010).
  22. Huch, M., et al. In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature. 494, 247-250 (2013).
  23. Lukacs, R. U., Goldstein, A. S., Lawson, D. A., Cheng, D., Witte, O. N. Isolation, cultivation and characterization of adult murine prostate stem cells. Nat Protoc. 5, 702-713 (2010).
  24. Rock, J. R., et al. Basal cells as stem cells of the mouse trachea and human airway epithelium. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 12771-12775 (2009).
  25. Eiraku, M., et al. Self-organizing optic-cup morphogenesis in three-dimensional culture. Nature. 472, 51-56 (2011).
  26. Spence, J. R., et al. Directed differentiation of human pluripotent stem cells into intestinal tissue in vitro. Nature. 470, 105-109 (2011).
  27. Lancaster, M. A., et al. Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature. 10, (2013).
  28. Greggio, C., et al. Artificial three-dimensional niches deconstruct pancreas development in vitro. Development. 140, 4452-4462 (2013).
  29. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45, 593-605 (2007).
check_url/de/51725?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Greggio, C., De Franceschi, F., Figueiredo-Larsen, M., Grapin-Botton, A. In Vitro Pancreas Organogenesis from Dispersed Mouse Embryonic Progenitors. J. Vis. Exp. (89), e51725, doi:10.3791/51725 (2014).

View Video