Summary

Экстракорпоральное поджелудочной железы Organogenesis от дисперсных мышиных эмбриональных прародителей

Published: July 19, 2014
doi:

Summary

Трехмерная способ культивирования описано в данном протоколе повторяет развитие поджелудочной железы от дисперсных эмбриональных клеток-предшественников мышь поджелудочной железы, включая их существенного расширения, дифференцировки и морфогенеза в разветвленной органа. Этот метод поддается визуализации, функциональной вмешательства и манипуляции нише.

Abstract

The pancreas is an essential organ that regulates glucose homeostasis and secretes digestive enzymes. Research on pancreas embryogenesis has led to the development of protocols to produce pancreatic cells from stem cells 1. The whole embryonic organ can be cultured at multiple stages of development 2-4. These culture methods have been useful to test drugs and to image developmental processes. However the expansion of the organ is very limited and morphogenesis is not faithfully recapitulated since the organ flattens.

We propose three-dimensional (3D) culture conditions that enable the efficient expansion of dissociated mouse embryonic pancreatic progenitors. By manipulating the composition of the culture medium it is possible to generate either hollow spheres, mainly composed of pancreatic progenitors expanding in their initial state, or, complex organoids which progress to more mature expanding progenitors and differentiate into endocrine, acinar and ductal cells and which spontaneously self-organize to resemble the embryonic pancreas.

We show here that the in vitro process recapitulates many aspects of natural pancreas development. This culture system is suitable to investigate how cells cooperate to form an organ by reducing its initial complexity to few progenitors. It is a model that reproduces the 3D architecture of the pancreas and that is therefore useful to study morphogenesis, including polarization of epithelial structures and branching. It is also appropriate to assess the response to mechanical cues of the niche such as stiffness and the effects on cell´s tensegrity.

Introduction

Органная культура предоставляет полезную модель, мосты разрыв между комплекса, но весьма актуальны в естественных условиях исследований и удобный, но приблизительное моделирование моделей клеточных линий. В случае поджелудочной железы, нет клеточной линии совершенно эквивалентна поджелудочной железы предшественников хотя преобразуются клеточных линий, имитирующих эндокринных и экзокринных клетках. Весь поджелудочной железы взрослых не могут культивироваться; изолированные эндокринные островки может поддерживаться в течение нескольких недель без клеточной пролиферации и Срезы ткани могут быть сохранены в пробирке в течение нескольких часов 5. Эмбриональные поджелудочной железы культура была широко используется не только для изучения ее развитие, но и исследовать эпителиальные-мезенхимальных взаимодействия 4,6,7, чтобы изображение обрабатывает 8 или химически мешать них 9. Два органа способы культивирования в основном используются: первый заключается в культивировании поджелудочной рецепторы на фибронектина покрытием пластин 2, что является удобnient для целей визуализации; Второй вариант заключается в культуре органы на фильтрах на воздух и жидкой фаз 3,4, который наилучшим образом сохраняет морфогенез. Хотя очень полезно, эти методы приводят к определенной степенью выравнивания; расширение предшественников очень ограничено по сравнению с нормальным развитием и исходного население комплекс, включающий все типы клеток поджелудочной железы и клеток мезенхимы.

Возможность культуры и расширить распределенных первичных клеток является ценным для изучения клональные отношения и раскрыть внутренние свойства изолированных типов клеток 10. Сугияма и др. 11. Может поддерживать поджелудочной железы предшественников и эндокринные клетки-предшественники, которые сохранили некоторые функциональные символы в течение 3-5 дней в культуре на фидерных слоях. Pancreatospheres, сродни нейросферы 12 и mammospheres 13, были расширены от взрослых островков и протоков клеток хотя природа прародителей / стволовых клеток, которые генерируют эти сферы не ясно. Кроме того, в отличие от физиологического развития, pancreatospheres содержится некоторые нейроны 14,15. Сферы были также недавно получены из эмбриональных поджелудочной железы предшественников 16,17 и регенерации поджелудочных желез 18 с хорошим расширением предшественников и последующего дифференцирования, но не повторять морфогенез.

3D модели от дисперсных и часто определенных клеток, которые самоорганизуются в миниатюрных органов в последнее время процветала и имитации развития или взрослых оборот нескольких органов, таких как кишечник 19,20, желудка 21, печень 22 простаты 23 и трахеи 24. В некоторых случаях, морфогенез развития и дифференциации были обобщены в 3D от ЭС клеток, как это имеет место в оптических чашек 25, 26 кишечник или головного мозга 27.

Здесь мы десывают способ расширить диссоциированные мультипотентные поджелудочной предшественники в эшафот 3D Matrigel, где они могут дифференцироваться и самоорганизовываться.

Protocol

Этот протокол направлен расти поджелудочной органоиды, полученные из мышиных E10.5 диссоциирован эпителиальные клетки поджелудочной железы. Протокол требует этического одобрения экспериментов на животных. 1. Препарирование спинной поджелудочной Bud от E10.5 …

Representative Results

E10.5 спинной поджелудочной предшественники диссоциированные и высевают в 3D Матригель резюмировать развитие поджелудочной железы. Предшественники легче всего следуют с люминесцентными журналистами. В нашем случае мы использовали трансгенных мышей, которая выражает ядерного GFP белка ?…

Discussion

Крупномасштабное производство функциональных бета-клеток в пробирке остается неэффективной 1. В этом сложном контексте, развития биологические исследования могут помочь расшифровать точные сигналы, которые необходимы для дифференциации функциональных бета-клеток. Этот п…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа финансировалась последовательно на НКРС границ в генетике пилотного премии, в отношении несовершеннолетних диабета исследовательский фонд Гранта 41-2009-775 и Грант 12-126875 от Det Фри Forskningsråd / Sundhed ог Sygdom. Авторы благодарят лабораторию Spagnoli за проведение видеосъемки.

Materials

Penicillin-Streptomycin Gibco 15070-063 Stock keept at -20°C
KnockOut Serum replacement (supplement) Gibco 10828-028 Stock keept at -20°C
2-mercaptoethanol Sigma Aldrich 3148-25ML Stock keept at 4°C
Phorbol Myristate Acetate (PMA) Calbiotech 524400-1MG Stock keept at -20°C
Y-27632 (ROCK inhibitor) Sigma Aldrich ab120129 Stock keept at -20°C- Attention! Stability/source is a frequent source of problems
EGF Sigma Aldrich E9644-2MG Stock keept at -80°C
Recombinant Human R-spondin 1 R&D 4645-RS-025/CF Stock keept at -80°C
 - or - 
Recombinant Mouse R-spondin 1 R&D 3474-RS-050 Stock keept at -80°C
Recombinant Human FGF1 (aFGF) R&D 232-FA-025 Stock keept at -80°C- do not include to increase beta cell production
Heparin (Liquemin) Drossapharm Stock keept at 4°C
Recombinant Human FGF10 R&D 345-FG-025 Stock keept at -80°C
DMEM/F-12 Gibco 21331-020
Penicillin-Streptomycin Gibco 15070-063 Stock keept at -20°C
B27 x50 (supplement) Gibco 17504-044 Stock keept at -20°C
Recombinant Human FGF2 (bFGF) R&D 233-FB-025 Stock keept at -80°C
Y-27632 (ROCK inhibitor) Sigma Aldrich ab120129 Stock keept at -20°C- Attention! Stability/source is a frequent source of problems
DMEM/F-12 Gibco 21331-020
Matrigel Corning 356231 Stock keept at -20°C
Trypsin 0.05% Gibco 25300-054 Stock keept at 4°C
RNAlater – RNA stabilizing reagent Qiagen 76104 Store at room temperature
Dispase  Sigma Aldrich D4818-2MG Stock keept at -20°C
BSA for reconstitution Milipore 81-068 For reconstituition of cytokines  – Stock keept at -20°C
Fetal calf serum (FCS) Gibco 16141079 Stock keept at -20°C
60 well MicroWell trays Sigma Aldrich M0815-100EA
4-well plates Thermo Scientific 176740
95-well plates F bottom Greiner Bio 6555180
Glas bottom plates Ibidi 81158
Disposal micropittes Blaubrand 708745

Referenzen

  1. Pagliuca, F. W., Melton, D. A. How to make a functional beta-cell. Development. 140, 2472-2483 (2013).
  2. Percival, A. C., Slack, J. M. Analysis of pancreatic development using a cell lineage label. Exp Cell Res. 247, 123-132 (1999).
  3. Attali, M., et al. Control of beta-cell differentiation by the pancreatic mesenchyme. Diabetes. 56, 1248-1258 (2007).
  4. Johansson, K. A., et al. Temporal control of neurogenin3 activity in pancreas progenitors reveals competence windows for the generation of different endocrine cell types. Dev Cell. 12, 457-465 (2007).
  5. Speier, S., Rupnik, M. A novel approach to in situ characterization of pancreatic beta-cells. Pflugers Arch. 446, 553-558 (2003).
  6. Golosow, N., Grobstein, C. Epitheliomesenchymal interaction in pancreatic morphogenesis. Dev Biol. 4, 242-255 (1962).
  7. Miralles, F., Czernichow, P., Scharfmann, R. Follistatin regulates the relative proportions of endocrine versus exocrine tissue during pancreatic development. Development. 125, 1017-1024 (1998).
  8. Petzold, K. M., Spagnoli, F. M. A system for ex vivo culturing of embryonic pancreas. J. Vis. Exp. , 3979 (2012).
  9. Miralles, F., Battelino, T., Czernichow, P., Scharfmann, R. TGF-beta plays a key role in morphogenesis of the pancreatic islets of Langerhans by controlling the activity of the matrix metalloproteinase MMP-2. J Cell Biol. 143, 827-836 (1998).
  10. Hope, K., Bhatia, M. Clonal interrogation of stem cells. Nat Methods. 8, 36-40 (2011).
  11. Sugiyama, T., Rodriguez, R. T., McLean, G. W., Kim, S. K. Conserved markers of fetal pancreatic epithelium permit prospective isolation of islet progenitor cells by FACS. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 175-180 (2007).
  12. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
  13. Dontu, G., et al. In vitro propagation and transcriptional profiling of human mammary stem/progenitor cells. Genes Dev. 17, 1253-1270 (2003).
  14. Smukler, S. R., et al. The adult mouse and human pancreas contain rare multipotent stem cells that express insulin. Cell Stem Cell. 8, 281-293 (2011).
  15. Seaberg, R. M., et al. Clonal identification of multipotent precursors from adult mouse pancreas that generate neural and pancreatic lineages. Nat Biotechnol. 22, 1115-1124 (2004).
  16. Jin, L., et al. Colony-forming cells in the adult mouse pancreas are expandable in Matrigel and form endocrine/acinar colonies in laminin hydrogel. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 3907-3912 (2013).
  17. Sugiyama, T., et al. Reconstituting pancreas development from purified progenitor cells reveals genes essential for islet differentiation. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 12691-12696 (2013).
  18. Huch, M., et al. Unlimited in vitro expansion of adult bi-potent pancreas progenitors through the Lgr5/R-spondin axis. Embo J. , (2013).
  19. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. , (2009).
  20. Ootani, A., et al. Sustained in vitro intestinal epithelial culture within a Wnt-dependent stem cell niche. Nat Med. 15, 701-706 (2009).
  21. Barker, N., et al. Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro. Cell Stem Cell. 6, 25-36 (2010).
  22. Huch, M., et al. In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature. 494, 247-250 (2013).
  23. Lukacs, R. U., Goldstein, A. S., Lawson, D. A., Cheng, D., Witte, O. N. Isolation, cultivation and characterization of adult murine prostate stem cells. Nat Protoc. 5, 702-713 (2010).
  24. Rock, J. R., et al. Basal cells as stem cells of the mouse trachea and human airway epithelium. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 12771-12775 (2009).
  25. Eiraku, M., et al. Self-organizing optic-cup morphogenesis in three-dimensional culture. Nature. 472, 51-56 (2011).
  26. Spence, J. R., et al. Directed differentiation of human pluripotent stem cells into intestinal tissue in vitro. Nature. 470, 105-109 (2011).
  27. Lancaster, M. A., et al. Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature. 10, (2013).
  28. Greggio, C., et al. Artificial three-dimensional niches deconstruct pancreas development in vitro. Development. 140, 4452-4462 (2013).
  29. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45, 593-605 (2007).
check_url/de/51725?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Greggio, C., De Franceschi, F., Figueiredo-Larsen, M., Grapin-Botton, A. In Vitro Pancreas Organogenesis from Dispersed Mouse Embryonic Progenitors. J. Vis. Exp. (89), e51725, doi:10.3791/51725 (2014).

View Video