Summary

Retrovirale Transductie van beenmerg stamcellen voor het genereren van T-cel Receptor Retrogenic Muizen

Published: July 11, 2016
doi:

Summary

We present a rapid and flexible protocol for a single T cell receptor (TCR) retroviral-based in vivo expression system. Retroviral vectors are used to transduce bone marrow progenitor cells to study T cell development and function of a single TCR in vivo as an alternative to TCR transgenic mice.

Abstract

T cell receptor (TCR) signaling is essential in the development and differentiation of T cells in the thymus and periphery, respectively. The vast array of TCRs proves studying a specific antigenic response difficult. Therefore, TCR transgenic mice were made to study positive and negative selection in the thymus as well as peripheral T cell activation, proliferation and tolerance. However, relatively few TCR transgenic mice have been generated specific to any given antigen. Thus, studies involving TCRs of varying affinities for the same antigenic peptide have been lacking. The generation of a new TCR transgenic line can take six or more months. Additionally, any specific backcrosses can take an additional six months. In order to allow faster generation and screening of multiple TCRs, a protocol for retroviral transduction of bone marrow was established with stoichiometric expression of the TCRα and TCRβ chains and the generation of retrogenic mice. Each retrogenic mouse is essentially a founder, virtually negating a founder effect, while the length of time to generate a TCR retrogenic is cut from six months to approximately six weeks. Here we present a rapid and flexible alternative to TCR transgenic mice that can be expressed on any chosen background with any particular TCR.

Introduction

T-cel receptor (TCR) repertoire van mensen en muizen wordt geschat op 1 x 10 8 en 2 x 10 6 unieke TCR's respectievelijk 1,2. Deze veelzijdigheid maakt T-cellen om een ​​breed scala aan antigen epitopen afgeleid van zelf-peptiden alsook van pathogenen door de major histocompatibility complex (MHC) op antigeenpresenterende cellen (APC's) herkennen. De subtiele verschillen in de interactie van het TCR's met unieke peptide-MHC complexen bepalen of een T-cel apoptose, anergie, activatie, differentiatie, cytokine productie of cytotoxiciteit zal ondergaan. Vanwege de grote TCR repertoire, analyse hoe een specifieke TCR zal reageren op een bepaald antigeen vereist het gebruik van één TCR systemen.

Verschillende TCR transgene muizen werden gegenereerd om de functie van een TCR bestuderen in een in vivo model 3-9. Er zijn echter restricties transgene muizen oa TCRkosten, de tijdsduur om een transgene muis en de zogenaamde stichterseffect willekeurige transgene insertie in kiemlijn DNA 10 genereren. Daarom hebben relatief weinig TCR transgene muizen gegenereerd voor een bepaald antigeen en de functionele implicaties van hoge en lage affiniteit TCR voor dezelfde epitoop zelden aangepakt. De noodzaak van een snelle aanpak scherm pakken en meerdere TCR bestuderen of een mengsel daarvan, hebben retrogenic ( "retro" uit retrovirus en "gene" uit transgene) muizen werden gebruikt als alternatief voor TcR transgene muizen 11-13.

2A peptide consensus motief binnen enkele virussen bestaan ​​uit een 2A-Asp-Val / Ile-Glut-X-Asn-Pro-Gly-2B-Pro, waarbij klieving optreedt tussen de glycine van de 2A en de proline van de 2B van cis-werkende hydrolase activiteit, wat resulteert in ribosomaal overslaan tijdens de vertaling 10,14-16. Voor een gedetailleerd diagram dat de cleavage van de verschillende peptiden 2A (F2A, E2A, T2A en P2A) zie referenties 10 – 12. Op deze wijze 2 cistrons (TCR TCR alfa en bèta) kunnen worden gekoppeld waardoor stoichiometrische kopie in een enkele vector. Met behulp van deze aanpak zijn we in staat om uit te drukken en meerdere antigeenspecifieke TCRs direct vergelijken in vivo.

Protocol

Ethiek Verklaring: Er wordt alles aan gedaan om dieren pijn of stress tot een minimum tijdens de bestraling en staartader injecties te noteren. Muizen worden gebruikt als bron van cellen in deze experimenten; welke er eigenlijk geen procedures of manipulaties behalve euthanasie. Muizen worden gedood door CO 2 inhalatie gevolgd door cervicale dislocatie gedood bevestigen. Deze procedure is in overeenstemming met de aanbevelingen van het panel voor euthanasie van de American Veterinary Medical Association. <p c…

Representative Results

Beenmerg transductie efficiëntie wordt gecontroleerd bij stap 13.3 van het protocol voor het beenmerg in staartader iv wordt geïnjecteerd In de vertegenwoordiger beenmerg transductie figuur (Figuur 1A), ongeveer 10-ul van het geoogste beenmerg werd toegevoegd aan 100-ul PBS en geanalyseerd op expressie ametrine. Algemeen het percentage fluorescentie positieve cellen tussen 25% en 70%, afhankelijk van het construct en retrovirale titer. Na 6 weken beenmerg injectie word…

Discussion

In het protocol, we detail een aantal kritische stappen om te zorgen voor een optimale beenmerg gezondheid, transductie efficiëntie en reconstructie. Eerste belangrijke stap is de productie en het juiste onderhoud van de GP + E86 virus producerende cellen. Gebruik vroege passage producerende cellijnen en handhaven op 80% confluentie of lager voor gebruik. Bij het maken van verse GP + E86 virale productiecellen, zorgen voor de 293T cellen zijn vroege passage en groeien in cultuur voor 24 – 48 uur. Plating teveel GP + E8…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door subsidies van de NIH (5K22A1119151-01 en 1R56DK104903-01) naar MLB, Pilot / Haalbaarheid Programma van het Diabetes Research Center (P30-DK079638) bij BCM, JDRF 1-FAC-2014-243-AN APF, ADA 1-15-JF-07, AAI werk in Immunology Fellowship naar MB, en The Robert en Janice McNair Foundation.

Materials

DMEM, high glucose + glutamine Corning Cellgro 10-013-CV Dulbecco's Modification of Eagle's Medium with 4.5 g/L glucose, L-glutamine & sodium pyruvate
FBS Atlanta Biological S11550
Trypsin-Versene Lonza 17-161F
0.45 um syringe filter Thermo Scientific 194-2545
polybrene Sigma H9268-10G Sterile Filtered in dH2O
Ciprofloxacin  VWR AAJ61970-06
5-fluorouracil (5-FU) VWR AAA13456-06
Sodium Pyruvate Corning Cellgro 25-000-CI
MEM nonessential Amino Acids Corning Cellgro 25-025-CI
HEPES 1M solution Corning Cellgro 25-060-CI
2-Mercaptoethanol Gibco by Life Technologies 21985-023
Pen/Strept Corning Cellgro 30-002-CI
L-glutamine Corning Cellgro 25-005-CI
150 mm tissue culture dishes Greiner Bio-one 639160
Tisue culture-treated 6-well flat plate Greiner Bio-one 657160
70 um nylon cell strainers Falcon 352350
Mouse IL-3 Invitrogen PMC0033
Human IL-6 Invitrogen  PHC0063
Mouse Stem Cell Factor Invitrogen PMC2113L
10x PBS Corning Cellgro 46-D13-CM
HANKS Buffer Corning Cellgro 21020147
BD 10 mL Syringe BD 300912
BD 1 mL Syringe BD 309659
27G x 1/2 BD Precision Glide Needle BD 305109
30G x 1/2 BD Precision Glide Needle BD 305106

Referenzen

  1. Qi, Q., et al. Diversity and clonal selection in the human T-cell repertoire. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111, 13139-13144 (2014).
  2. Zarnitsyna, V. I., Evavold, B. D., Schoettle, L. N., Blattman, J. N., Antia, R. Estimating the diversity, completeness, and cross-reactivity of the T cell repertoire. Frontiers in immunology. 4, 485 (2013).
  3. Kisielow, P., Bluthmann, H., Staerz, U. D., Steinmetz, M., von Boehmer, H. Tolerance in T-cell-receptor transgenic mice involves deletion of nonmature CD4+8+ thymocytes. Nature. 333, 742-746 (1988).
  4. Hogquist, K. A., et al. T cell receptor antagonist peptides induce positive selection. Cell. 76, 17-27 (1994).
  5. Verdaguer, J., et al. Spontaneous autoimmune diabetes in monoclonal T cell nonobese diabetic mice. J Exp Med. 186, 1663-1676 (1997).
  6. Katz, J. D., Wang, B., Haskins, K., Benoist, C., Mathis, D. Following a diabetogenic T cell from genesis through pathogenesis. Cell. 74, 1089-1100 (1993).
  7. Pauza, M. E., et al. T-cell receptor transgenic response to an endogenous polymorphic autoantigen determines susceptibility to diabetes. Diabetes. 53, 978-988 (2004).
  8. Jasinski, J. M., et al. Transgenic insulin (B:9-23) T-cell receptor mice develop autoimmune diabetes dependent upon RAG genotype, H-2g7 homozygosity, and insulin 2 gene knockout. Diabetes. 55, 1978-1984 (2006).
  9. Kersh, G. J., et al. TCR transgenic mice in which usage of transgenic alpha- and beta-chains is highly dependent on the level of selecting ligand. Journal of immunology. 161, 585-593 (1998).
  10. Bettini, M. L., Bettini, M., Vignali, D. A. TCR retrogenic mice: A rapid, flexible alternative to TCR transgenic mice. Immunology. 136 (3), 265-272 (2012).
  11. Holst, J., et al. Generation of T-cell receptor retrogenic mice. Nat Protoc. 1, 406-417 (2006).
  12. Holst, J., Vignali, K. M., Burton, A. R., Vignali, D. A. Rapid analysis of T-cell selection in vivo using T cell-receptor retrogenic mice. Nat Methods. 3, 191-197 (2006).
  13. Bettini, M. L., Bettini, M., Nakayama, M., Guy, C. S., Vignali, D. A. Generation of T cell receptor-retrogenic mice: improved retroviral-mediated stem cell gene transfer. Nat Protoc. 8, 1837-1840 (2013).
  14. Donnelly, M. L., et al. Analysis of the aphthovirus 2A/2B polyprotein ‘cleavage’ mechanism indicates not a proteolytic reaction, but a novel translational effect: a putative ribosomal ‘skip’. J Gen Virol. 82, 1013-1025 (2001).
  15. Atkins, J. F., et al. A case for “StopGo”: reprogramming translation to augment codon meaning of GGN by promoting unconventional termination (Stop) after addition of glycine and then allowing continued translation (Go). RNA. 13, 803-810 (2007).
  16. Doronina, V. A., et al. Site-specific release of nascent chains from ribosomes at a sense codon. Mol Cell Biol. 28, 4227-4239 (2008).
  17. Bettini, M., et al. TCR affinity and tolerance mechanisms converge to shape T cell diabetogenic potential. Journal of immunology. 193, 571-579 (2014).
  18. Brehm, M. A., Wiles, M. V., Greiner, D. L., Shultz, L. D. Generation of improved humanized mouse models for human infectious diseases. J Immunol Methods. 410, 3-17 (2014).
  19. Brehm, M. A., Shultz, L. D., Greiner, D. L. Humanized mouse models to study human diseases. Curr Opin Endocrinol Diabetes Obes. 17, 120-125 (2010).
  20. Chaplin, P. J., et al. Production of interleukin-12 as a self-processing 2A polypeptide. J Interferon Cytokine Res. 19, 235-241 (1999).
  21. Collison, L. W., et al. The inhibitory cytokine IL-35 contributes to regulatory T-cell function. Nature. 450, 566-569 (2007).
  22. Holst, J., et al. Scalable signaling mediated by T cell antigen receptor-CD3 ITAMs ensures effective negative selection and prevents autoimmunity. Nature immunology. 9, 658-666 (2008).
  23. Kalos, M., et al. T cells with chimeric antigen receptors have potent antitumor effects and can establish memory in patients with advanced leukemia. Sci Transl Med. 3, 95ra73 (2011).
  24. VanSeggelen, H., et al. T Cells Engineered With Chimeric Antigen Receptors Targeting NKG2D Ligands Display Lethal Toxicity in Mice. Mol Ther. 23, 1600-1610 (2015).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Lee, T., Shevchenko, I., Sprouse, M. L., Bettini, M., Bettini, M. L. Retroviral Transduction of Bone Marrow Progenitor Cells to Generate T-cell Receptor Retrogenic Mice. J. Vis. Exp. (113), e54196, doi:10.3791/54196 (2016).

View Video