Summary

大人のゼブラフィッシュのドキソルビシン誘発心筋症モデル

Published: June 07, 2018
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Summary

アダルト ゼブラフィッシュ (動脈分布) のドキソルビシン誘発心筋症モデルを生成する方法を次に紹介します。腹腔内投与の 2 つの方法を提示し、さまざまな実験グループのばらつきを減らすための条件について説明。

Abstract

遺伝的にアクセスできるアダルト ゼブラフィッシュ (動脈分布) は、心筋症などの疾患を理解するため脊椎動物モデルとしてますます使用されています。利便性、こうしてハイスループット遺伝子操作のため取得した心筋症モデルの生成アダルト ゼブラフィッシュのドキソルビシン誘発心筋症 (DIC) モデルなどは扉を開いて、新しい研究手段に前方遺伝学的スクリーニングを介して心筋症修飾子の発見を含みます。ゼブラフィッシュ胚の DIC モデルとは異なり、急性初期と後で慢性期心筋症決定できますアダルト ゼブラフィッシュ DIC モデルでは、ステージ依存性シグナル伝達機構と治療戦略の研究を有効にします。ただし、現在のモデルでは、経験豊富な研究者の手にも変数の結果を取得できます。DIC モデルの将来の実装を容易にするには、大人のゼブラフィッシュのこの DIC モデルを生成および腹腔内 (IP) 投与の 2 つの代替方法について説明する方法で詳細なプロトコルを紹介します。我々 はさらに信頼性の高い結果を取得し、結果を適切に解釈する方法に関する提案を提供する変化を少なくための方法について説明します。

Introduction

1960 年代1,2以来抗腫瘍薬として開発されたドキソルビシン (DOX)、アドリアマイシンとも呼ばれます。それが今はまだ腫瘍の広範なスペクトルの重要な化学療法薬として積極的に使用します。しかし、DOX の臨床応用は、その用量毒性によって妨げられた、心毒性特に無症候性の心電図変化から心膜炎に至るまで可変の症状によって特徴づけられる、心筋症の時1,2活性酸素種 (ROS)1,3,45、トポイソメラーゼ II β (の抑制を含む DIC を説明するまでに、少なくとも 3 つの主要な仮説を提起されている。TOP2β)67、および細胞内カルシウムの変調は、1,8,9をリリースします。また DIC1011,12,13の極めて重要なリスク因子として遺伝的素因を示唆証拠の蓄積します。しかしこれらの DIC の素因に関連する遺伝子のアイデンティティ、主不明のまま。Dexrazoxane は追加を識別する必要性を強調、唯一のアジュバント エージェント、DIC の治療に米国食品医薬品局 (FDA) が限定的に実施14,15,16, 承認治療戦略。DIC の動物モデルはこれらの目的のため検討されます。そのアクセシビリティとシンプルさに、DIC モデルの解明いる可能性のある広範な影響心筋症の他の種類の: 一般的な病因共有可能性があります別の病因による心筋症の中で特に後病理学的ステージ17,18,19,20

DIC の齧歯動物モデルに加えてより高いスループットのゼブラフィッシュ DIC モデルは新しい遺伝的要因と治療法の探索を容易にするために発達しました。21治療化合物をスクリーニングするための透明の zebrafish の胚の胚の DIC モデルを設置します。心筋症には、進歩的な病因と成人発症疾患がされますが、モデルがされている大人のゼブラフィッシュ心筋症は22,23,24,25,26を開発しました。我々 は、心筋症による慢性貧血24、続いて DIC アダルト ゼブラフィッシュ232 番目の取得した心筋症モデルとしての最初の獲得モデルを生成されます。アダルト ゼブラフィッシュに DOX の単一ボーラス注入が続いて心筋症の慢性期 6 ヶ月投与後に投与後 1 週間 (wpi) 内ほぼ急性期から成る心毒性を誘導することがわかった。ラパマイシンの機構のターゲットのハプロ不全により中(mtor) 心筋症の改善も慢性の段階でそれは誇張魚死亡率急性期でステージ依存を識別する大人の DIC モデルの値を強調します。機構23。我々 はさらに大人の DIC モデルを挿入変異のトランスポゾン ベース アプローチ27経由で生成されているゼブラフィッシュ挿入の心臓 (ジック) 変異のコレクションを強調する使用ことができることを実証しました。パイロット画面識別 DnaJ (Hsp40) の相同物、亜科 B、およびメンバーの 6 b と同様に、3 の知られている心筋症遺伝子 (dnajb6b) として新しい DIC 感受性遺伝子28。したがって、ゼブラフィッシュの大人の DIC モデルの生成は、体系的に DIC は、既存のゲノム広い連合の調査 (GWAS) と量的形質遺伝子座 (QTL を補完の遺伝的修飾因子の同定を可能にする新しい方法論につながった) 分析。

世代と成人ゼブラフィッシュ DIC モデルの実装は、我々 は別の研究者の間でおよび/または同じ調査官によって実行される別の注射の中でも大きな変化に気づいた。モデルの縦の性質は、別の捜査官からの結果を登録して、連続するトラブルシューティング プロセスに課題を課しています。この単純な心筋症を誘発するストレスによる研究コミュニティの使用を容易にするには、我々 のプロトコルの詳細、IP 注入の存在の 2 つのタイプと異なる研究者のばらつきを減らすための考慮事項について説明.

Protocol

ここで説明したすべての手順を行ったガイドに従ってケアおよび実験動物の使用 (国立アカデミー プレス 2011), とメイヨー クリニック機関動物ケアおよび使用委員会によって承認されました。 1. 大人のゼブラフィッシュの準備 DOX の注入に必要な総魚の 2 倍多くを少なくとも取得するタンクを横切る際に十分な繁殖ペアを設定します。異なる遺伝的背景を持つ魚?…

Representative Results

ここでは、大人のゼブラフィッシュ モデル DIC への IP の注入を実行する 2 つの方法が掲載されています。古典的な確立された IP 注入法29を使用している間注入 DOX ソリューション (赤い色) が針が浸透した場所から時々 にじみでていることが指摘されました。代替の IP 注入は腹膜から 3-4 mm、DOX のリリース、針の浸透のため別の場所で使用 (<strong clas…

Discussion

進歩的な DIC をモデルに DOX の 20 の mg/kg の線量だった魚の死の 1 の wpi がまだ結果の間に重要な魚の死と 4 wpi (図 3および後心機能の低下が発生しない最高の線量として実験的に決定図 4)。この線量はこれらの齧歯動物の DIC モデル (15 〜 25 mg/kg) で頻繁に使用して人間 (550 mg/m2、15 mg/kg に相当) の限界累積投与量に匹敵する4

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、アメリカの中心連合からの科学者の開発補助金による部分で支えられました (YD に 14SDG18160021)、米国 NIH R01 付与 HL 81753 と HL 107304 xx、XX にメイヨー財団。

Materials

Crossing tank Aquaneering ZHCT100 Fish breeding
Incubator ThermoFisher Maintaining embryo
3 L medium tank Aquaneering ZT280 Maintaining fish
Paramecia Carolina 131560 Food for juvenile fish
Live hatched brine shrimp in house Food for adult fish
Doxorubicin hydrochloride Sigma D1515-10MG
1.5 ml safe-lock tube Eppendorf No. 022363204 For drug storage
Aluminum foil paper Fisher 1213104 For preventing light exposure
Proteinase K Roche No. 03115887001 For dechorionating embryo
Hank's balanced salt solution (HBBS) ThermoFisher 14025076 Vehicle for DOX
100 mm petri dish Falcon 431741
10 μL NanoFil micro-syringe WPI NANOFIL For injection
34 gauge needle  WPI NF34BV-2 For injection
Tricaine Argent MS-222 Anesthetizing fish
96 well plate Costar 3539 For embryo drug treatment
Transfer pipette Bel-art product F37898 For transfering embryo

Referenzen

  1. Octavia, Y., et al. Doxorubicin-induced cardiomyopathy: from molecular mechanisms to therapeutic strategies. J Mol Cell Cardiol. 52 (6), 1213-1225 (2012).
  2. Singal, P. K., Iliskovic, N. Doxorubicin-induced cardiomyopathy. N Engl J Med. 339 (13), 900-905 (1998).
  3. Angsutararux, P., Luanpitpong, S., Issaragrisil, S. Chemotherapy-Induced Cardiotoxicity: Overview of the Roles of Oxidative Stress. Oxid Med Cell Longev. , 795602 (2015).
  4. Ichikawa, Y., et al. Cardiotoxicity of doxorubicin is mediated through mitochondrial iron accumulation. J Clin Invest. 124 (2), 617-630 (2014).
  5. Zhang, Y. W., Shi, J., Li, Y. J., Wei, L. Cardiomyocyte death in doxorubicin-induced cardiotoxicity. Arch Immunol Ther Exp (Warsz). 57 (6), 435-445 (2009).
  6. Sawyer, D. B. Anthracyclines and heart failure. N Engl J Med. 368 (12), 1154-1156 (2013).
  7. Zhang, S., et al. Identification of the molecular basis of doxorubicin-induced cardiotoxicity. Nat Med. 18 (11), 1639-1642 (2012).
  8. Dodd, D. A., et al. Doxorubicin cardiomyopathy is associated with a decrease in calcium release channel of the sarcoplasmic reticulum in a chronic rabbit model. J Clin Invest. 91 (4), 1697-1705 (1993).
  9. Mitry, M. A., Edwards, J. G. Doxorubicin induced heart failure: Phenotype and molecular mechanisms. Int J Cardiol Heart Vasc. 10, 17-24 (2016).
  10. Aminkeng, F., et al. A coding variant in RARG confers susceptibility to anthracycline-induced cardiotoxicity in childhood cancer. Nat Genet. 47 (9), 1079-1084 (2015).
  11. Deng, S., et al. Dystrophin-deficiency increases the susceptibility to doxorubicin-induced cardiotoxicity. Eur J Heart Fail. 9 (10), 986-994 (2007).
  12. Leong, S. L., Chaiyakunapruk, N., Lee, S. W. Candidate Gene Association Studies of Anthracycline-induced Cardiotoxicity: A Systematic Review and Meta-analysis. Sci Rep. 7 (1), 39 (2017).
  13. Wasielewski, M., et al. Potential genetic predisposition for anthracycline-associated cardiomyopathy in families with dilated cardiomyopathy. Open Heart. 1 (1), e000116 (2014).
  14. Lebrecht, D., et al. Dexrazoxane prevents doxorubicin-induced long-term cardiotoxicity and protects myocardial mitochondria from genetic and functional lesions in rats. Br J Pharmacol. 151 (6), 771-778 (2007).
  15. QuanJun, Y., et al. Protective Effects of Dexrazoxane against Doxorubicin-Induced Cardiotoxicity: A Metabolomic Study. PLoS One. 12 (1), e0169567 (2017).
  16. Seifert, C. F., Nesser, M. E., Thompson, D. F. Dexrazoxane in the prevention of doxorubicin-induced cardiotoxicity. Ann Pharmacother. 28 (9), 1063-1072 (1994).
  17. Adams, J. W., et al. Enhanced Galphaq signaling: a common pathway mediates cardiac hypertrophy and apoptotic heart failure. Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (17), 10140-10145 (1998).
  18. Bowles, N. E., Bowles, K. R., Towbin, J. A. The "final common pathway" hypothesis and inherited cardiovascular disease. The role of cytoskeletal proteins in dilated cardiomyopathy. Herz. 25 (3), 168-175 (2000).
  19. Kroumpouzou, E., et al. Common pathways for primary hypertrophic and dilated cardiomyopathy. Hybrid Hybridomics. 22 (1), 41-45 (2003).
  20. Towbin, J. A., Bowles, K. R., Bowles, N. E. Etiologies of cardiomyopathy and heart failure. Nat Med. 5 (3), 266-267 (1999).
  21. Liu, Y., et al. Visnagin protects against doxorubicin-induced cardiomyopathy through modulation of mitochondrial malate dehydrogenase. Sci Transl Med. 6 (266), 266ra170 (2014).
  22. Asimaki, A., et al. Identification of a new modulator of the intercalated disc in a zebrafish model of arrhythmogenic cardiomyopathy. Sci Transl Med. 6 (240), 240ra274 (2014).
  23. Ding, Y., et al. Haploinsufficiency of target of rapamycin attenuates cardiomyopathies in adult zebrafish. Circ Res. 109 (6), 658-669 (2011).
  24. Sun, X., et al. Cardiac hypertrophy involves both myocyte hypertrophy and hyperplasia in anemic zebrafish. PLoS One. 4 (8), e6596 (2009).
  25. Sun, Y., et al. Activation of the Nkx2.5-Calr-p53 signaling pathway by hyperglycemia induces cardiac remodeling and dysfunction in adult zebrafish. Dis Model Mech. 10 (10), 1217-1227 (2017).
  26. Yang, J., Shah, S., Olson, T. M., Xu, X. Modeling GATAD1-Associated Dilated Cardiomyopathy in Adult Zebrafish. J Cardiovasc Dev Dis. 3 (1), (2016).
  27. Ding, Y., et al. Trapping cardiac recessive mutants via expression-based insertional mutagenesis screening. Circ Res. 112 (4), 606-617 (2013).
  28. Ding, Y., et al. A modifier screen identifies DNAJB6 as a cardiomyopathy susceptibility gene. JCI Insight. 2 (8), (2017).
  29. Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E. Intraperitoneal injection into adult zebrafish. J Vis Exp. (42), (2010).
  30. Wang, L. W., et al. Standardized echocardiographic assessment of cardiac function in normal adult zebrafish and heart disease models. Dis Model Mech. 10 (1), 63-76 (2017).
  31. Desai, V. G., et al. Development of doxorubicin-induced chronic cardiotoxicity in the B6C3F1 mouse model. Toxicol Appl Pharmacol. 266 (1), 109-121 (2013).
  32. Zhu, W., Shou, W., Payne, R. M., Caldwell, R., Field, L. J. A mouse model for juvenile doxorubicin-induced cardiac dysfunction. Pediatr Res. 64 (5), 488-494 (2008).
  33. Chatterjee, K., Zhang, J., Honbo, N., Karliner, J. S. Doxorubicin cardiomyopathy. Cardiology. 115 (2), 155-162 (2010).
  34. Bang, C., et al. Cardiac fibroblast-derived microRNA passenger strand-enriched exosomes mediate cardiomyocyte hypertrophy. J Clin Invest. 124 (5), 2136-2146 (2014).
  35. Rassaf, T., Kelm, M. Protection from diabetic cardiomyopathy – putative role of the retinoid receptor-mediated signaling. J Mol Cell Cardiol. 59, 179-180 (2013).
  36. Wahbi, K., et al. Dilated cardiomyopathy in patients with mutations in anoctamin 5. Int J Cardiol. 168 (1), 76-79 (2013).
  37. Zhou, M. D., Sucov, H. M., Evans, R. M., Chien, K. R. Retinoid-dependent pathways suppress myocardial cell hypertrophy. Proc Natl Acad Sci U S A. 92 (16), 7391-7395 (1995).
  38. Hershman, D. L., et al. Doxorubicin, cardiac risk factors, and cardiac toxicity in elderly patients with diffuse B-cell non-Hodgkin’s lymphoma. J Clin Oncol. 26 (19), 3159-3165 (2008).
  39. Silber, J. H., Barber, G. Doxorubicin-induced cardiotoxicity. N Engl J Med. 333 (20), 1359-1360 (1995).
  40. Von Hoff, D. D., et al. Risk factors for doxorubicin-induced congestive heart failure. Ann Intern Med. 91 (5), 710-717 (1979).
  41. Pugach, E. K., Li, P., White, R., Zon, L. Retro-orbital injection in adult zebrafish. J Vis Exp. (34), (2009).
  42. Zang, L., Morikane, D., Shimada, Y., Tanaka, T., Nishimura, N. A novel protocol for the oral administration of test chemicals to adult zebrafish. Zebrafish. 8 (4), 203-210 (2011).
  43. Collymore, C., Rasmussen, S., Tolwani, R. J. Gavaging adult zebrafish. J Vis Exp. (78), (2013).

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Diesen Artikel zitieren
Ma, X., Ding, Y., Wang, Y., Xu, X. A Doxorubicin-induced Cardiomyopathy Model in Adult Zebrafish. J. Vis. Exp. (136), e57567, doi:10.3791/57567 (2018).

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