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Methodenartikel

In Vivo dreidimensionale zwei-photonische Mikroskopie zur Untersuchung von durchgeführten Gefäßreaktionen durch lokale ATP-Auswurf mit einer Glas-Mikropipette

6.9K Aufrufe

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DOI:

10.3791/59286

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7. Juni 2019

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir präsentieren ein optimiertes lokales Auswurfverfahren mit einer Glas-Mikropipette und einem schnellen Zwei-Photon-Hyperstack-Bildgebungsverfahren, das eine präzise Messung von Änderungen des Kapillardurchmessers und die Untersuchung seiner Regulierung in drei Dimensionen ermöglicht.

Zusammenfassung

Die Aufrechterhaltung der normalen Gehirnfunktion erfordert eine ausreichende und effiziente Versorgung mit Sauerstoff und Ernährung durch ein komplexes Netzwerk von Gefäßen. Die Regulierung des zerebralen Blutflusses (CBF) ist jedoch unvollständig verstanden, insbesondere auf Kapillarebene. Die Zwei-Photonen-Mikroskopie ist ein leistungsfähiges Werkzeug, das häufig zur Untersuchung von CBF und seiner Regulierung eingesetzt wird. Derzeit ist dieses Feld durch den Mangel an in vivo Zwei-Photonen-Mikroskopie-Studien begrenzt, die (1) CBF-Antworten in drei Dimensionen untersuchen, (2) vaskuläre Reaktionen und (3) lokalisierte Interventionen innerhalb des Gefäßnetzwerks durchführen. Hier beschreiben wir eine 3D-in-vivo-Methode, die die Zwei-Photonen-Mikroskopie verwendet, um durchgeführte Gefäßreaktionen zu untersuchen, die durch den lokalen Auswurf von ATP mit einer Glasmikropipette ausgelöst wurden. Unsere Methode verwendet schnelle und sich wiederholende Hyperstack-Zwei-Photon-Bildgebung, die präzise Durchmessermessungen durch maximale Intensitätsprojektion der erhaltenen Bilder ermöglicht. Darüber hinaus zeigen wir, dass diese Methode auch verwendet werden kann, um 3D-astrozytische Kalzium-Antworten zu untersuchen. Wir besprechen auch die Vorteile und Grenzen des Einsetzens von Mikropipetten aus Glas und der Zwei-Photonen-Hyperstack-Bildgebung.

Einleitung

Das Gehirn hat eine hohe Energieverbrauchsrate. Etwa 20% des Sauerstoffs und 25% der Glukose, die vom menschlichen Körper verbraucht wird, sind der Gehirnfunktion gewidmet, während das Gehirn nur 2% der gesamten Körpermasse einnimmt. Die Aufrechterhaltung der normalen Gehirnfunktion erfordert eine ausreichende und effiziente Versorgung mit Sauerstoff und Ernährung durch Dendurchfluss in einem komplexen Netzwerk von Gefäßen. Lokale Gehirnaktivität und zerebraler Blutfluss (CBF) sind robust gekoppelt, abhängig von den funktionellen Eigenschaften von Neuronen, Astrozyten, Pericyten, glatten Muskelzellen (SMCs) und Endothelzellen (ECs)1. Kürzlich h....

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Protokoll

Alle Verfahren, an denen Tiere beteiligt waren, wurden von der dänischen Nationalen Ethikkommission gemäß den Leitlinien des Übereinkommens des Europäischen Rates zum Schutz von Wirbeltieren, die für experimentelle und andere wissenschaftliche Zwecke verwendet werden, genehmigt. den ARRIVE-Richtlinien entsprachen. Dies ist ein terminales Verfahren, bei dem die Mäuse vor der Anästhesie-Wiederherstellung eingeschläfert werden.

1. Prächirurgische Präparation

  1. Reinigen Sie den OP-Tisch und die umgebung mit 70% Ethanol. Reinigen und trocknen Sie die chirurgischen Werkzeuge vor der Operation gründlich.
  2. ....

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Ergebnisse

Nach Abschluss der Operation wurden die Mäuse zum Zwei-Photonen-Mikroskop transportiert (Abbildung 1A). Eine Glas-Mikropipette mit 1 mM ATP wurde in der Nähe des Zielblutgefäßes am Zielort eingesetzt (Abbildung 1B).

Wir führten Hyperstack-Bildgebung durch, während wir einen Puff von 1 mM ATP gaben (Abbildung 2A, Ergänzendes Video 1). Jede.......

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Diskussion

Eine Herausforderung für Gefäßstudien ist die präzise Messung der Gefäßdurchmesser. Die Methode, die wir hier beschreiben, verwendete ein motorisiertes Piezoobjektiv, um eine schnelle und sich wiederholende Hyperstack-Bildgebung mittels Zwei-Photonen-Mikroskopie zu machen. Erstens ermöglicht diese Methode wiederholte Untersuchungen der durchdringenden Arteriole,1. Ordnung und 2. Ordnung Kapillaren ohne Fokusverlust und führte zur Entdeckung von langsam durchgeführten Gefäßreaktionen in Kapillaren in vivo........

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Diese Studie wurde von der Lundbeck-Stiftung, der NOVO-Nordisk Foundation, dem Dänischen Rat für unabhängige Forschung | Medical Sciences und die NORDEA Foundation Grant an das Center for Healthy Aging.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
AgaroseSigma– AldrichA6138Zum Schutz auf den freiliegenden Kortex auftragen
Alexa 594Life TechnologiesA-10438Fleckenblähmasse auf rot fluoreszierendes
ATPSigma-AldrichA9187Vasodilatator und Vasokonstriktor, Puffmasse
Cyanacrylatkleber und AktivatorLoctite-Klebstoffeund SF7452Kleber für Metallstück und Deckglas
Auge GleitmittelNeutral Ophtha, Ophtha A/S, DänemarkHalten Sie die Augen der Maus mit Feuchtigkeit
FITC-DextranSigma-AldrichFD500SBlutserumfarbstoff, grün fluoreszierende Farbe
NG2DsRote MäuseJackson Laboratory8241Diese transgenen Mäuse exprimieren eine rot fluoreszierende Proteinvariante (DsRed) unter der Kontrolle des Maus-NG2 (Cspg4)-Promotors
pZac2.1 gfaABC1D-lck-GCaMP6fAddgene52924-AAV5Astrozytenspezifische virale Vektoren, die genetisch kodierte Calciumindikatoren tragen
TRITC-DextranSigma-Aldrich52194Blutserumfarbstoff, rot fluoreszierende Farbe
Liste der Ausrüstungen
LuftpumpeWPIPV830Geben Sie Luftdruck zum Pipettenaufblasen
BlutgasanalysatorRadiometerABL 700Messung des Niveaus von Blutgasen 
BlutdruckmessgerätWorld Precision InstrumentsBP-1Messgerät des ateriellen Blutdrucks
KörpertemperaturreglerCWEModell TC-1000Halten Sie die Körpertemperatur der Maus im physiologischen Bereich
KapnographHarvard GerätTyp 340Überwachen Sie das endexspiratorische CO2 von der Maus
Elektrischer StimulatorA.M.P.I.ISO-flexApply Whisker Pad Stimulation
Mechanisches BeatmungsgerätHarvard GerätD-79232Mechanisches Beatmung der Maus im physiologischen Bereich
MikropipettenzieherSutter InstrumentP-97
Zwei-Photonen-MikroskopFemtonics LtdFemto3D-RC
strong>Liste der chirurgischen Instrumente
Anatomische Pinzette Lawton09-0007
Abgewinkelte und ausbalancierte PinzetteS& T AG00595 FRAS-18 RM-8
IrisschereLawton05-1450
Mikro-GefäßklemmeS& T AG462
Gefäßkatheter für MäuseVerutech100828
versorgt <

Referenzen

  1. Abbott, N. J., Patabendige, A. A., Dolman, D. E., Yusof, S. R., Begley, D. J. Structure and Function of the Blood-Brain Barrier. Neurobiology of Disease. 37 (1), 13-25 (2010).
  2. Hall, C. N., et al. Capillary Pericytes Regulate Cerebral Blood Flow in Health and Disease. Nature

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Nachdrucke und Genehmigungen

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