Tecniche di necropsia della rabbia negli animali grandi e piccoli
Summary
L’obiettivo di questo protocollo è quello di dimostrare tecniche di necroscopia sicure in animali piccoli e grandi per ottenere campioni di tessuto soddisfacenti per i test sulla rabbia.
Abstract
Il New York State Department of Health (NYSDOH) Rabies Laboratory riceve tra 6.000 e 9.000 esemplari all’anno ed esegue test sulla rabbia per l’intero stato, con l’eccezione di New York City. Il laboratorio di rabbia necropsie una varietà di animali di dimensioni che vanno da pipistrelli a bovidi. La maggior parte di questi esemplari sono animali che presentano segni neurologici, tuttavia, meno del 10% effettivamente test positivo per la rabbia; che implica traumi, lesioni o altri agenti infettivi come causa di questi sintomi. A causa del rischio di aerosolizing di agenti infettivi non diagnosticati, il Laboratorio della Rabbia non utilizza strumenti di potere o seghe. Saranno presentate tre tecniche di necroscopia per gli animali i cui teschi sono impenetrabili con le forbici. Il laboratorio ha implementato queste tecniche per ridurre la potenziale esposizione agli agenti infettivi, eliminare inutili manipolazioni del campione e ridurre i tempi di elaborazione. I vantaggi di una tecnica preferita opposta ad un’altra sono soggetti all’individuo addestrato che elabora il campione.
Introduction
Lavorare sul pavimento della necropsia di un laboratorio di rabbia è intrinsecamente pericoloso. A volte, gli esemplari arrivano con aculei di porcospino incorporati, oggetti estranei tra cui frecce / proiettili / pellet o frammenti ossei esposti che possono penetrare l’involucro di spedizione protettivo. Un imballaggio improprio può causare perdite, mettendo in pericolo gli individui che disfare i campioni. Oltre alle lesioni fisiche, i tecnici della necropsia rischiano l’esposizione a agenti infettivi zoonotici sconosciuti provenienti dal SNC e ai fluidi corporei dei campioni. Inoltre, gli ectoparassiti trasportati dall’esemplare possono trasmettere altre malattie zoonotiche, poiché le pulci e le zecche sono comunemente viste sugli animali presentati. A seconda della posizione geografica e delle specie coinvolte, le malattie esposte variano. Arbovirus come il virus dell’encefalite equina orientale (EEEV) o il virus del Nilo occidentale (WNV), le malattie trasmesse dalle zecche tra cui la malattia di Lyme o tularemia, i batteri che causano febbre Q o tubercolosi e i prioni infettivi nominano un piccolo numero dei possibili pericoli1 , 2 Il nome del sistema , 3.
Lo scopo di questi metodi è quello di dimostrare tecniche di necroscopia sicure ed efficienti utilizzando strumenti che minimizzano il potenziale di aerosolizzazione a differenza degli utensili elettrici o delle seghe4,5. Comunemente, la necropsia dei piccoli animali nel laboratorio della rabbia richiede di tagliare i muscoli cranici e di usare un martello e uno scalpello per aprire la parte dorsale caudale del calvario6. La rimozione di quest’area di calvario espone il cervello posteriore, compreso l’intero cervelletto e il tronco cerebrale cranico. Le tecniche di necroscopia modificate possono essere eseguite sulla parte ventrale del cranio, evitando i grandi muscoli cranici e le regioni più spesse del cranio. Tuttavia, queste tecniche di necropsia modificate sono possibili solo quando il campione è senza vertebre cervicali.
Allo stesso modo, il tessuto cerebrale in grandi animali può essere rimosso separando i muscoli cranici e aprendo la parte dorsale caudale del cranio7. È necessario un notevole sforzo per esporre il cervelletto e il tronco encefalico, poiché i teschi di animali più grandi sono generalmente più spessi. Per evitare di penetrare nel cranio, la testa di un grande animale è posizionata in modo che la parte ventro-caudal del cranio sia rivolta verso il tecnico. Utilizzando strumenti modificati, il cervelletto e il tronco cerebrale vengono rimossi attraverso il forame magnum. Questo è simile al metodo di acquisizione del campione raccomandato dal TSE European Union Reference Laboratory for Transmissible Spongiform Encephalopathy (TSE) indagini8. Le vertebre craniche devono essere rimosse in anticipo per fornire l’accesso al forame magnum.
L’applicazione di queste tecniche è vantaggiosa per i tecnici adeguatamente formati nei laboratori di rabbia. Poiché il laboratorio della rabbia riceve campioni di varie dimensioni, dai pipistrelli giovani al girone adulto9, il tecnico ha diversi metodi tra cui scegliere in base alla circostanza individuale. Il metodo dimostrato per un grande animale è adatto anche per i veterinari che eseguono necroscopia sul campo, poiché il trasporto di un intero capo animale di grandi dimensioni per il test della rabbia è ingombrante e costoso. L’implementazione di una di queste tecniche migliorerà la sicurezza diminuendo il potenziale della produzione di aerosol, ridurrà la movimentazione del provino e farà risparmiare tempo di lavorazione. Tuttavia, poiché il campo non presenta gli stessi vantaggi di un laboratorio specifico per la sperimentazione della rabbia, è essenziale che qualsiasi modifica apportata a queste procedure si concentri sulla sicurezza, in particolare sull’uso di dispositivi di protezione personale (PPE).
Protocol
Representative Results
Discussion
Le spettri presentate per la necropsia hanno spesso una storia di segni clinici compatibili con una malattia neurologica. La presenza di malattie cliniche può essere associata a una varietà di disturbi, tra cui malattie zoonotiche, aumentando il rischio per il personale di un’infezione acquisita in laboratorio. Per ridurre questi rischi, sono state implementate tecniche che riducono la manipolazione e la manipolazione dei campioni.
I metodi dimostrati rappresentano un evento di necropsia per…
Offenlegungen
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Siamo grati al Dipartimento di Salute Wadsworth Center dello Stato di New York per aver sostenuto questo progetto. Vorremmo anche riconoscere il sostegno di Amy Willsey e Frank Blaisdell del Department of Health Wadsworth Center, e LL Ranch, Altamont, NY.
Materials
| Chemistry spoon | Any | ||
| Curved, sharp-blunt mayo scissors | Sklar | 14-2055 | Sklar Operating Scissors 5-1/2 Inch Premium OR Grade Stainless Steel Finger Ring Handle Curved Sharp/Blunt |
| Large sharp restaurant-quality carving knife | Dexter | P94848 | 8" Scalloped Utility Knife, white handle |
| Locking tumor-tenacula | Diamond Scientific and Surgicals | N/A | Czerny Tenaculum Forcep |
| Modified stiletto knife (6.5 inch long blade carving knife ground to 0.5 inch wide) | Dexter | P94848 | Modified 8" Scalloped Utility Knife, white handle |
| Orthopedic mallet-hammer | Mortech | N/A | Postmortem hammer with hook |
| Sharp councilman orthopedic bone chisel | Shandon | 60-5 | Councilman's Chisel Blade: 2 in x 2.25 in standard 7 in |
| Sharpened tablespoon or other long handled spoon | Any | ||
| Smooth-tipped tissue dressing forceps without teeth | Shandon | 63-03 | Shandon Broad Point Dressing Thumb Forceps |
| Powder-free non-latex gloves | Any | ||
| Safety glasses, goggles, or faceshield | Any | ||
| Surgery or N-95 mask | Any | ||
| Kraft paper, butcher paper, absorbent pad, etc | Any |
Referenzen
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