Summary

Büyük ve küçük hayvanlarda kuduz Necropsy teknikleri

Published: July 30, 2019
doi:

Summary

Bu protokolün amacı, kuduz testi için tatmin edici doku örnekleri elde etmek için küçük ve büyük hayvanlarda güvenli Otopsi teknikleri göstermektir.

Abstract

New York Devlet Sağlık Bakanlığı (NYSDOH) kuduz Laboratuvarı her yıl 9.000 numuneleri 6.000 arasında alır ve New York dışında tüm devlet için kuduz testi gerçekleştirir. Kuduz Laboratuvarı, yarasalardan boporn ‘a kadar olan çeşitli hayvanları otopsi. Bu numunelerin çoğu hayvan nörolojik işaretler sergileme, ancak, az 10% aslında kuduz için test pozitif; Bu semptomların nedeni olarak travma, lezyonlar veya diğer bulaşıcı ajanlar ima. Tanısı konulmamış bulaşıcı ajanlar aerosolizasyon riski nedeniyle, kuduz Laboratuvarı elektrik aleti veya testereleri kullanmaz. Kafatasları makas ile girilmez hayvanlar için üç Otopsi teknikleri sunulacak. Laboratuar, enfeksiyöz ajanlar için potansiyel maruz kalma azaltmak, numunenin gereksiz manipülasyon ortadan kaldırmak ve işlem süresini azaltmak için bu teknikleri uyguladı. Tercih edilen bir tekniğin diğerine karşı avantajları, numunenin eğitilmiş bireyin işlenmesine tabidir.

Introduction

Kuduz laboratuarının otopsi katında çalışmak doğal olarak tehlikelidir. Zaman zaman, numuneler gömülü kirpi quills, oklar/mermi/granül veya koruyucu nakliye Wrap nüfuz olabilir maruz kemik parçaları dahil yabancı nesneler ile gelir. Yanlış paketleme, numuneleri açmak isteyen bireyleri tehlikeye atarak sızıntıya neden olabilir. Fiziksel yaralanmalara ek olarak, otopsi teknisyenler CNS ve numunelerin vücut sıvılarından bilinmeyen zoonotik bulaşıcı ajanlar maruz risk. Ayrıca, numune tarafından taşınan Ektoparazitleri diğer zoonotik hastalıkları iletebilir, Pire ve keneler yaygın olarak sunulan hayvanların görülür. Coğrafi konuma ve türlere bağlı olarak maruz kalan hastalıklar farklılık gösterir. Doğu Equine Ensefalit virüsü (eeev) veya Batı Nil virüsü (WNV) gibi arbovirüsler, Lyme hastalığı veya Tularemi de dahil olmak üzere kene kaynaklı hastalıklar, Q ateşi veya tüberküloz neden bakteri, ve bulaşıcı prionlar olası tehlikeleri az sayıda isim1 , 2 , 3‘ ü yapın.

Bu yöntemlerin amacı, elektrikli aletlerin veya testere4,5‘ in aksine aerosolizasyon potansiyelini en aza indiren enstrümanları kullanarak güvenli ve verimli nekropsy teknikleri göstermektir. Genellikle, kuduz laboratuarında küçük hayvanların Nekropsi kranial kaslar uzağa kesme ve bir çekiç kullanarak ve kalvarium6kaudal dorsal kısmını açmak için kesmeli gerektirir. Kalvarium bu alanın çıkarılması arka beyin ortaya çıkarır, tüm beyinli ve kranial beyin kökü de dahil olmak üzere. Değiştirilmiş Otopsi teknikleri kafatası ventral kısmında yapılabilir, büyük kranial kaslar ve kafatası kalın bölgelerden kaçınarak. Ancak, bu değiştirilmiş Otopsi teknikleri sadece numune servikal vertebra olmadan mümkündür.

Benzer şekilde, büyük hayvanlarda beyin dokusu kafatası kasları ayırarak ve kafatasının kaudal dorsal kısmını açarak kaldırılabilir7. Büyük hayvanların kafatasları genellikle kalın olarak beyinli ve beyin kökü açığa çıkarmak için önemli çaba gereklidir. Kafatasının nüfuz edilmesini önlemek için, büyük bir hayvanın kafası, kafatasının Ventro-caudal kısmı teknisyene bakacak şekilde konumlandırılır. Modifiye enstrümanları kullanarak, serebellum ve beyin kökü foramen magnum üzerinden kaldırılır. Bu, TSE Avrupa Birliği referans laboratuvarı tarafından önerilen, Trans, Spongiform ensefalopati (TSE) araştırmaları için tavsiye edilen örnek edinme yöntemine benzerdir8. Cranial vertebra önceden foramen magnum erişim sağlamak için kaldırılmalıdır.

Bu tekniklerin uygulanması, kuduz laboratuvarlarında uygun şekilde eğitimli teknisyenler için faydalıdır. Kuduz laboratuvarı çeşitli boyutlarda örnekler aldığında, juvenil yarasalar yetişkin taslak atlar9, teknisyen bireysel koşula göre seçim için çeşitli yöntemler vardır. Büyük bir hayvan için gösterilen yöntem, alanda otopsi gerçekleştiren veterinerler için de uygundur, çünkü kuduz testi için tüm büyük bir hayvan kafası nakliye hantal ve pahalıdır. Bu tekniklerden herhangi birini uygulamak, aerosol üretiminin potansiyelini azaltarak, numunenin işlenmesini azaltarak ve işlem süresini tasarruf ederek güvenliği artıracaktır. Ancak, alanda kuduz testi için özel olarak ayarlanan bir laboratuar ile aynı avantajlara sahip olmadığı için, bu prosedürlerde yapılan değişikliklerin özellikle kişisel koruyucu ekipmanların (PPE) kullanımı güvenlik üzerine odaklanmasını gereklidir.

Protocol

Açıklanan tüm yöntemler Wadsworth Center kurumsal hayvan bakımı ve kullanım Komitesi (ıAYUC) tarafından onaylanmıştır. 1. hazırlık Don PPE, minimum göz koruması (gözlük veya yüz kalkanı), cerrahi veya N-95 maske ve lateks içermeyen eldivenler. Tek kullanımlık çalışma yüzeyi (örn. Kraft kağıt veya emici pedler) ve temiz Otopsi aletleri (Şekil 1) ile, ideal olarak bir bio-güvenlik dolabı (BSc), çalışma alanı h…

Representative Results

31 Ocak 2019 ve 28 Şubat 2019 tarihleri arasında kafatası ile gönderilen tüm karasal numuneler, bir boyun varlığı ve toplanan otopsi yöntemi ile ilgili bilgiler vardı. Bu süre zarfında 170 kafaları temsil edilen 18 tür ile necropsied edildi. 52% (89/170) düzgün bir şekilde çökmemiş. Kalan üç tüm vücut örnekleri dahil olmak üzere en az bir vertebra bağlı vardı. % 75 (128/170) kullanılan ventral Yöntem, o zaman, bu boynları, 49 tarihinde mevcuttu. Bir boyun i…

Discussion

Kuduz otopsi için gönderilen numuneler genellikle nörolojik bir hastalıktır ile uyumlu klinik belirtiler öyküsü vardır. Klinik hastalığın varlığı, Zoonotik hastalıklar da dahil olmak üzere çeşitli bozukluklar ile ilişkili olabilir, bir laboratuar personeli için risk artan enfeksiyon elde. Bu riskleri azaltmak için, numunelerin işlenmesi ve manipülasyonunu azaltan teknikler uygulanmaktadır.

Gösterilen Yöntemler sadece tek bir hayvandan istenen dokulardan kaldırmak i?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Biz bu projeyi desteklemek için sağlık Wadsworth Center New York Eyalet Bakanlığı minnettar. Biz de Amy Willsey ve Frank Blaisdell bölümü sağlık Wadsworth merkezi ve LL Ranch, Altamont, NY destek kabul etmek istiyorum.

Materials

Chemistry spoon Any
Curved, sharp-blunt mayo scissors Sklar 14-2055 Sklar Operating Scissors 5-1/2 Inch Premium OR Grade Stainless Steel Finger Ring Handle Curved Sharp/Blunt
Large sharp restaurant-quality carving knife Dexter P94848 8" Scalloped Utility Knife, white handle
Locking tumor-tenacula Diamond Scientific and Surgicals N/A Czerny Tenaculum Forcep
Modified stiletto knife (6.5 inch long blade carving knife ground to 0.5 inch wide) Dexter P94848 Modified 8" Scalloped Utility Knife, white handle
Orthopedic mallet-hammer Mortech N/A Postmortem hammer with hook
Sharp councilman orthopedic bone chisel Shandon 60-5 Councilman's Chisel Blade: 2 in x 2.25 in standard 7 in
Sharpened tablespoon or other long handled spoon Any
Smooth-tipped tissue dressing forceps without teeth Shandon 63-03 Shandon Broad Point Dressing Thumb Forceps
Powder-free non-latex gloves Any
Safety glasses, goggles, or faceshield Any
Surgery or N-95 mask Any
Kraft paper, butcher paper, absorbent pad, etc Any

Referenzen

  1. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). West Nile virus activity – United States, 2009. MMWR Morbidity and Mortality Weekly Report. 59 (25), 769-772 (2010).
  2. McDaniel, C. J., Cardwell, D. M., Moeller, R. B., Gray, G. C. Humans and cattle: A review of bovine zoonoses. Vector Borne and Zoonotic Diseases. 14 (1), 1-19 (2014).
  3. Zoonotic diseases. Merck Veterinary Manual Available from: https://www.merckvetmanual.com/public-health/zoonoses/zoonotic-diseases (2019)
  4. Wenner, L., Pauli, U., Summermatter, K., Gantenbein, H., Vidondo, B., Posthaus, H. Aerosol generation during bone-sawing procedures in veterinary autopsies. Veterinary Pathology. 54 (3), 425-436 (2017).
  5. Green, F. H. Y., Yoshida, K. Characteristics of aerosols generated during autopsy procedures and their potential role as carriers of infectious agents. Applied Occupational and Environmental Hygiene. 5 (12), 853-858 (1990).
  6. Barrat, J., Meslin, F. X., Kaplan, M. M., Koprowski, H. Simple technique for the collection and shipment of brain specimens for rabies diagnosis. Laboratory techniques in Rabies 4th Edition. , 425-427 (1996).
  7. Ness, S. L., Bain, F. T. How to perform an equine field necropsy. American Association of Equine Practitioners. 55, 313-316 (2009).
  8. . Sample requirements for TSE testing and confirmation – EURL guidance Available from: https://science.vla.gov.uk/tse-lab-net/documents/tse-oie-rl-samp.pdf (2019)
  9. . Rabies reports Available from: https://www.wadsworth.org/programs/id/rabies/reports (2019)
  10. . Protocol for postmortem diagnosis of rabies in animals by direct fluorescent antibody testing: A minimum standard for rabies diagnosis in the United States Available from: https://www.cdc.gov/rabies/pdf/rabiesdfaspv2.pdf (2019)
  11. Miller, L. D., Davis, A. J., Jenny, A. L., Fekadu, M., Whitfield, S. G. Surveillance for lesions of bovine spongiform encephalopathy in U.S. cattle. Developments in Biological Standardizations. 80, 119-121 (1993).
  12. Andrews, C., Gerdin, J., Patterson, J., Buckles, E. L., Fitzgerald, S. D. Eastern equine encephalitis in puppies in Michigan and New York states. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 30 (4), 633-636 (2018).
  13. Appler, K., Brunt, S., Jarvis, J. A., Davis, A. D. Clarifying indeterminate results on the rabies direct fluorescent antibody test using real-time reverse transcriptase polymerase chain reaction. Public Health Reports. 134 (1), 57-62 (2019).
  14. Rupprecht, C. E., Fooks, A. R., Abela-Ridder, B. Chapter 7. Brain removal. Laboratory techniques in Rabies 5th Edition. , 67-72 (2018).
check_url/de/59574?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Jarvis, J. A., Brown, K. T., Appler, K. A., Fitzgerald, D. P., Davis, A. D. Rabies Necropsy Techniques in Large and Small Animals. J. Vis. Exp. (149), e59574, doi:10.3791/59574 (2019).

View Video