Summary

脱细胞猪心逆行灌注的程序

Published: December 06, 2012
doi:

Summary

迅速,彻底清除细胞成分通过一个完整的猪心脏逆行灌注的方法。这种方法产生一个站点特定的心脏细胞外基质支架,它有可能用于在多个临床应用。

Abstract

灌注的整体器官脱细胞最近获得了为手段,以创建特定的细胞外基质支架,组织工程领域的兴趣,同时很大程度上保留了原生架构的支架。至目前为止,这种方法已经被使用在各种不同的器官系统,包括心脏,肺,肝1-5。没有一个方便的血管网组织往前脱细胞方法都依赖于长时间暴露的组织的解决方案的清洁剂,酸或酶处理,作为一个装置,以除去细胞和核的组件,从周围的细胞外环境6-8。然而,这些方法的铰链的有效性的解决方案的能力后,通过扩散渗透到组织。相比之下,通过自然器官灌注血管系统有效地减少了扩散距离,便利的交通decellularizati代理商进入组织和细胞成分的组织。在这里,我们描述一个的方法完全decellularize通过一个完整的猪心脏冠状动脉逆行灌注。该协议得到充分脱细胞的心肌细胞外基质(ECM)的支架的三维结构体的心脏完好无损。我们的方法,使用了一系列的耦合与高渗和低渗漂洗,以帮助在裂解和去除细胞的酶,洗涤剂,和酸。所使用的协议胰蛋白酶溶液分离后跟的Triton X-100和脱氧胆酸钠的解决方案,以帮助除去多孔材料中的基质细胞。所描述的协议也使用大于2升/分钟的长时间的灌注速度。高流速,加上与解决方案的变化允许运输的代理到组织没有细胞碎片污染和确保有效地冲洗该组织。从National Instruments,简称NI所描述的方法删除了所有核材料维生素E猪心脏组织,创建特定于站点的心脏ECM支架,可用于各种各样的应用。

Protocol

1。组织制备及实验设置收获的猪器官后,立即从屠宰场或研究机构的安乐死,并冲洗掉多余的血液。修剪多余的脂肪和组织的心脏,心房和主动脉完整。修剪掉的脂肪分离主动脉肺动脉。如果有任何削减组织,适当地丢弃。 单独把每个心,在冷冻纸和存储所有组织在-80°C冷冻至少24小时,以确保完全冻结。 当您准备使用(通常不超过3个月),解冻一个完整的冷冻猪心脏在?…

Representative Results

自然对整个猪心脱细胞的效果的不同而不同的大小的差异,压力,和船只安排。因此,确切的成分派生的细胞外基质支架是不一样的,从心脏到心脏。所描述的协议的完成将产生一个心脏出现白色或半透明状,表明细胞物质的损失。然而,它已被广泛接受的组织可以被视为“脱细胞”的基础上,结合数更多的量化参数8。一个成功的脱细胞协议会产生一个矩阵,每毫克的组织(图6)<…

Discussion

目前的研究描述的一致和有效的方法去细胞的猪的心脏。该协议是一个修改到先前公布的报告,包括更长的曝光时间,流量和压力增加,提供了更多的可重复的结果。由此产生的脱细胞组织满足所有成功的去细胞组织公布的标准。频繁的解决方案进行了修改,以限制重新引入蜂窝材料的组织,每脱细胞处理剂接触到的持续时间减少到最低限度,以减少对ECM的不利影响。的协议的开始阶段期间,灌?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

作者要感谢布罗根,游客米歇尔·韦弗,和Kristen利珀特。资助这项研究是由美国国立卫生研究院资助R03EB009237,以及美国国立卫生研究院的培训资助T32EB001026-06来自国家生物医学成像和生物工程和T32HL076124-05。

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalogue Number Comments
Trypsin Gibco 15090
EDTA Fisher BP120-500
NaN3 Sigma S2002-500G
Triton X-100 Sigma X100-1L
10X PBS Fisher BP399-20
Sodium Deoxycholate Sigma D6750-500G
Peracetic Acid Pfaltz and Bauer P05020 35% CAS# 79-21-0
Ethanol Pharmco 111000200
Masterflex Pump Drive Cole Parmer SI-07524-50
Masterflex Tubing Cole Parmer 96400-18 Size 18
Barbed Reducer Cole Parmer EW-30612-20
4L Beaker Fisher Scientific 02-540T

Referencias

  1. Ott, H. C., et al. Regeneration and orthotopic transplantation of a bioartificial lung. Nat. Med. 16, 927-933 (2010).
  2. Ott, H. C., et al. Perfusion-decellularized matrix: using nature’s platform to engineer a bioartificial heart. Nat. Med. , (2008).
  3. Petersen, T. H., et al. Tissue-engineered lungs for in vivo implantation. Science. 329, 538-541 (2010).
  4. Uygun, B. E., et al. Organ reengineering through development of a transplantable recellularized liver graft using decellularized liver matrix. Nat. Med. , (2010).
  5. Wainwright, J. M., et al. Preparation of cardiac extracellular matrix from an intact porcine heart. Tissue Eng. Part C Methods. 16, 525-532 (2010).
  6. Crapo, P. M., Gilbert, T. W., Badylak, S. F. An overview of tissue and whole organ decellularization processes. Biomaterials. 32, 3233-3243 (2011).
  7. Gilbert, T. W. Strategies for tissue and organ decellularization. Journal of cellular biochemistry. , (2012).
  8. Gilbert, T. W., Sellaro, T. L., Badylak, S. F. Decellularization of tissues and organs. Biomaterials. 27, 3675-3683 (2006).
  9. Akhyari, P., et al. The quest for an optimized protocol for whole-heart decellularization: a comparison of three popular and a novel decellularization technique and their diverse effects on crucial extracellular matrix qualities. Tissue Eng. Part C Methods. 17, 915-926 (2011).
  10. Weymann, A., et al. Development and evaluation of a perfusion decellularization porcine heart model–generation of 3-dimensional myocardial neoscaffolds. Circulation journal : official journal of the Japanese Circulation Society. 75, 852-860 (2011).
  11. Cortiella, J., et al. Influence of acellular natural lung matrix on murine embryonic stem cell differentiation and tissue formation. Tissue Eng. Part A. 16, 2565-2580 (1089).
  12. Remlinger, N. T. Hydrated xenogeneic decellularized tracheal matrix as a scaffold for tracheal reconstruction. Biomaterials. 31, 3520-3526 (2010).
  13. Sellaro, T. L., Ravindra, A. K., Stolz, D. B., Badylak, S. F. Maintenance of hepatic sinusoidal endothelial cell phenotype in vitro using organ-specific extracellular matrix scaffolds. Tissue Eng. 13, 2301-2310 (2007).
  14. Wainwright, J. M. Right ventricular outflow tract repair with a cardiac biologic scaffold. Cells, tissues, organs. 195, 159-170 (2012).
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Citar este artículo
Remlinger, N. T., Wearden, P. D., Gilbert, T. W. Procedure for Decellularization of Porcine Heart by Retrograde Coronary Perfusion. J. Vis. Exp. (70), e50059, doi:10.3791/50059 (2012).

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