Summary

טכניקת microfluidic Genipin הפקדת לתרבות מורחבת של כלי דם micropatterned השרירים Thin Films

Published: June 26, 2015
doi:

Summary

We present a method for microfluidic deposition of patterned genipin and fibronectin on PDMS substrates, allowing extended viability of vascular smooth muscle cell-dense tissues. This tissue fabrication method is combined with previous vascular muscular thin film technology to measure vascular contractility over disease-relevant time courses.

Abstract

The chronic nature of vascular disease progression requires the development of experimental techniques that simulate physiologic and pathologic vascular behaviors on disease-relevant time scales. Previously, microcontact printing has been used to fabricate two-dimensional functional arterial mimics through patterning of extracellular matrix protein as guidance cues for tissue organization. Vascular muscular thin films utilized these mimics to assess functional contractility. However, the microcontact printing fabrication technique used typically incorporates hydrophobic PDMS substrates. As the tissue turns over the underlying extracellular matrix, new proteins must undergo a conformational change or denaturing in order to expose hydrophobic amino acid residues to the hydrophobic PDMS surfaces for attachment, resulting in altered matrix protein bioactivity, delamination, and death of the tissues.

Here, we present a microfluidic deposition technique for patterning of the crosslinker compound genipin. Genipin serves as an intermediary between patterned tissues and PDMS substrates, allowing cells to deposit newly-synthesized extracellular matrix protein onto a more hydrophilic surface and remain attached to the PDMS substrates. We also show that extracellular matrix proteins can be patterned directly onto deposited genipin, allowing dictation of engineered tissue structure. Tissues fabricated with this technique show high fidelity in both structural alignment and contractile function of vascular smooth muscle tissue in a vascular muscular thin film model. This technique can be extended using other cell types and provides the framework for future study of chronic tissue- and organ-level functionality.

Introduction

מחלות כלי דם, כגון vasospasm המוחית 1,2, יתר לחץ דם 3, וטרשת עורקת 4, לפתח לאט, הן בדרך כלל כרוניים בטבע, וכרוכים בכוח-דור מתפקד על ידי תאי שריר חלק של כלי דם (VSMCs). אנו שואפים ללמוד בתפקוד אלה איטיים מתקדמים של כלי הדם באמצעות בשיטות מבחנה עם שליטה עדינה יותר של תנאי ניסוי מאשר בin vivo מודלים. סרטים שפותחנו בעבר בכלי דם שרירי דק (vMTFs) למדידת התכווצות פונקציונלית של רקמות מהונדסות במבחנה לב וכלי דם 5, אך שיטה זו הוגבלה למחקרים יחסית לטווח קצר. כאן, אנו מציגים טכניקת שינוי מצע שמתרחבת טכניקת vMTF הקודמת שלנו למדידות לטווח ארוך.

בעוד האנדותל הוא גם קריטי בתפקוד כלי דם כללי, lamellae עורקים מהונדסים לספק מערכת מודל שימושית להערכת שינויים בכלי דםהתכווצות במהלך התקדמות מחלה. להנדס מודל פונקציונלי של כלי דם ברקמת מחלה, גם את המבנה ותפקוד של lamella העורקים, יחידת ההתכווצות הבסיסית של כלי השיט, יש סכמה עם איכות גבוהה. lamellae עורקים הם גיליונות קונצנטריים, circumferentially מיושר של VSMCs ההתכווצות מופרדת על ידי גיליונות של אלסטין 6. הדפסת microcontact של חלבוני מטריצה ​​תאית (ECM) על גבי מצעי polydimethylsiloxane (PDMS) כבר השתמשה בעבר כדי לספק רמזי הדרכה לארגון רקמה לחקות מיושרים רקמת לב וכלי דם 5,7-10. עם זאת, רקמות דוגמת באמצעות הדפסת microcontact יכול לאבד יושרה לאחר 3-4 ימים בתרבות, הגבלת תחולתם בלימודים כרוניים. פרוטוקול זה מספק פתרון לבעיה זו על ידי החלפת טכניקות הדפסת microcontact קודמות עם טכניקה בתצהיר microfluidic חדשה.

Genchi et al. מצעי PDMS שונה עם genipin וFound ממושך כדאיות של myocytes עד חודש בתרבות 11. כאן, אנו משתמשים בגישה דומה להארכת תרבות של תאי שריר בדוגמת כלי דם חלקים על PDMS. Genipin, נגזר hydrolytic טבעית של הפירות גרדניה, הוא מועמד רצוי לשינוי מצע בשל רעילותה הנמוכה יחסית בהשוואה לסוכני crosslinking דומים והשימוש הגובר שלה כביולוגי בתחומי תיקון רקמות 12,13 ושינוי ECM 14, 15. בפרוטוקול זה, פיברונקטין הוא מנוצל כרמז הדרכת תא, כמו בשיטות הדפסת microcontact קודמות; עם זאת, genipin מופקד על גבי מצעים לפני דפוסי פיברונקטין PDMS. לפיכך, כתאים לבזות את המטריצה ​​בדוגמת, ECM מסונתז חדש מVSMCs המצורף יכול להיקשר למצע PDMS המצופה genipin.

פרוטוקול זה משתמש בהתקן משלוח microfluidic לgenipin שני שלבים ותצהיר ECM. העיצוב של microco מחקה מכשיר microfluidicדפוסי הדפסת ntact משמשים לlamellae עורקים מהונדסים במחקרים קודמים 16. לפיכך, אנו מצפים פרוטוקול זה להניב מחקה lamellae עורקים שבהצלחה לשחזר מזדהים ביותר במבנה ותפקוד vivo התכווצות של lamellae עורקים. אנו גם מעריכים התכווצות רקמות כדי לאשר genipin שהיא תרכובת שינוי המצע מתאימה לטווח ארוך בדגמי מחלת כלי דם במבחנה.

Protocol

הערה: המטרה של פרוטוקול זה היא לבנות ולנצל סרט של כלי דם שרירי דק (vMTF) עם המבנה מוצג באיור 1 להעריך התכווצות במהלך התרבות המורחבת של תאי שריר חלק של כלי דם (VSMCs) על מצעי PDMS. כדי להאריך את כדאיות VSMC, אנו מנצלים את genipin מתחם crosslinker. מצעים לvMTFs אלה נועדו לנתח התכווצות ר…

Representative Results

המטרה העיקרית של עבודה זו הייתה להאריך את הכדאיות של VSMCs micropatterned על מצעי PDMS הידרופובי. הדבר זה הושג על ידי שילוב מערכת מסירת microfluidic להפקיד genipin בדוגמת ופיברונקטין על PDMS (איור 1). בתצהיר של חלבוני ECM באמצעות משלוח microfluidic הניב העברת נאמנות גבוהה של דפוס הערוץ עם PD…

Discussion

כאן, אנו מציגים פרוטוקול שבונה על טכנולוגיה שפותחה בעבר vMTF, מאפשרים פעמים ניסוי מורחבות טיפוסיות יותר של מסלולי מחלת כלי דם כרוניים 1,23,24. כדי להשיג זאת, אנו micropattern genipin, אשר בעבר הוכח לספק functionalization לטווח הארוך של מצעי PDMS 11, תוך שימוש בטכניקה בתצהיר microfluidic ל?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We acknowledge financial support from the American Heart Association Scientist Development Grant, 13SDG14670062 (PWA) and the University of Minnesota Doctoral Dissertation Fellowship (ESH). We also acknowledge the microfabrication resources of the Minnesota Nano Center (MNC) and the image processing resources of the University Imaging Centers (UIC), both at the University of Minnesota. Parts of this work were carried out in the Characterization Facility, University of Minnesota, which receives partial support from NSF through the MRS program.

Materials

Coverslip staining rack Electron Microscopy Sciences www.emsdiasum.com/ 72239-04 Alternative coverslip rack may be used
Microscope cover glass – 25 mm Fisher Scientific, Inc. www.fishersci.com 12-545-102 Alternative brand and size may be used; Microscope slides may also be substituted as substrate base
Poly(N-iso-propylacrylamide) (PIPAAm) Polysciences, Inc. www.polysciences.com/ #21458 Sigma-Aldrich makes an alternate compound, but we have not tested it for use with this protocol; Compound gives strong odor, use proper ventilation
1-butanol Sigma-Aldrich www.sigmaaldrich.com 360465 Hazard: flammable (store stock solution in flammable cabinet); flash point is 37 °C, avoid heating; alternative product may be used
Spincoater Specialty Coating Systems, Inc. www.scscoatings.com SCS G3P8 Model; Alternative brand and/or model may be used
Polydimethylsiloxane (PDMS) Ellsworth Adhesives (Dow Corning) www.ellsworth.com 184 SIL ELAST KIT 0.5KG Alternative distributor may be used
Fluorescent microbeads Polysciences, Inc. www.polysciences.com/ 17151 Alternative brand and/or larger size may be used
Silicon wafers Wafer World, Inc. www.waferworld.com 2398 Alternative brand and/or size may be used
Photoresist  MicroChem Corp. www.microchem.com SU-8 3025 allows 20-25-µm feature height
Contact mask aligner Suss MicroTec www.suss.com MA6 contact mask aligner; alternative brand and/or model may be used for wafer exposure
Developer MicroChem Corp. www.microchem.com SU-8 Developer; Hazard: flammable
Tridecafluro-trichlorosilane UCT Specialties, Inc. www.unitedchem.com T2492 Silane for non-stick coating of patterned silicon wafers (CAUTION: Tridecafluro-trichlorosilane is a flammable and corrosive liquid. Proper personal protective equipment and local exhaust is necessary for use. )
Surgical biopsy punch Integra LifeSciences Corp. www.miltex.com 33-31AA-P/25 Alternative brand and/or size may be used
Genipin Cayman Chemical www.caymanchem.com 10010622 Sigma-Aldrich (G4796-25MG) makes an alternate compound, but we have not tested it for use with this protocol
1X phosphate buffered saline Mediatech, Inc. www.cellgro.com 21-031-CV Alternative brand may be used
Fibronectin Corning, Inc. www.corning.com 356008 Sigma-Aldrich (F1056) makes an alternate compound, but we have not tested it for use with this protocol
Penicillin/streptomycin Life Technologies, Inc. www.lifetechnologies.com 15140-122 Alternative brand and/or size may be used, as long as concentration is the same
Umbillical artery smooth muscle cells Lonza www.lonza.com CC-2579 Alternative cell types may be used for alternative applications. Media should be modified accordingly
Tyrode's solution components Sigma-Aldrich www.sigmaaldrich.com various Alternative brand may be used for mixing solution
Stereomicroscope Zeiss www.zeiss.com 4350020000000000 SteREOLumar V12; Alternative brand/type of stereomicroscope may be used
Temperature-controlled platform Warner Instruments www.warneronline.com 641659; 640352; 641922
Endothelin-1 Sigma-Aldrich www.sigmaaldrich.com E7764-50UG Alternative amount may be purchased, as long as treatment concentration is maintained
HA-1077 Sigma-Aldrich www.sigmaaldrich.com H139-10MG Alternative amount may be purchased, as long as treatment concentration is maintained

Referencias

  1. Humphrey, J. D., Baek, S., Niklason, L. E. Biochemomechanics of cerebral vasospasm and its resolution: I. A new hypothesis and theoretical framework. Ann. Biomed. Eng. 35, 1485-1497 (2007).
  2. Hald, E. S., Alford, P. W. Smooth muscle phenotype switching in blast traumatic brain injury-induced cerebral vasospasm. Transl. Stroke Res. 5, 385-393 (2014).
  3. Olivetti, G., Anversa, P., Melissari, M., Loud, A. V. Morphometry of medial hypertrophy in the rat thoracic aorta. Lab. Invest. 42, 559-565 (1980).
  4. , Atherosclerosis. Nature. 407, 233-241 (2000).
  5. Alford, P. W., Feinberg, A. W., Sheehy, S. P., Parker, K. K. Biohybrid thin films for measuring contractility in engineered cardiovascular muscle. Biomaterials. 31, 3613-3621 (2010).
  6. Rhodin, J. A. G., ed, B. e. r. n. e. ,. R. .. ,. Architecture of the vessel wall. Physiol. Rev. , (1979).
  7. Balachandran, K., et al. Cyclic strain induces dual-mode endothelial-mesenchymal transformation of the cardiac valve. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 108, 19943-19948 (2011).
  8. Grosberg, A., Alford, P. W., McCain, M. L., Parker, K. K. Ensembles of engineered cardiac tissues for physiological and pharmacological study: heart on a chip. 11, 4165-4173 (2011).
  9. Alford, P. W., Nesmith, A. P., Seywerd, J. N., Grosberg, A., Parker, K. K. Vascular smooth muscle contractility depends on cell shape. Integr. Biol. (Camb). 3, 1063-1070 (2011).
  10. Win, Z., et al. Smooth muscle architecture within cell-dense vascular tissues influences functional contractility). Integr. Biol. (Camb). , (2014).
  11. Genchi, G. G., et al. Bio/non-bio interfaces: a straightforward method for obtaining long term PDMS/muscle cell biohybrid constructs). Colloid Surface B. 105, 144-151 (2013).
  12. Fessel, G., Cadby, J., Wunderli, S., van Weeren, R., Snedeker, J. G. Dose- and time-dependent effects of genipin crosslinking on cell viability and tissue mechanics – Toward clinical application for tendon repair. Acta Biomater. , (2013).
  13. Lima, E. G., et al. Genipin enhances the mechanical properties of tissue-engineered cartilage and protects against inflammatory degradation when used as a medium supplement. J. Biomed. Mater. Res. A. 91, 692-700 (2009).
  14. Madhavan, K., Belchenko, D., Tan, W. Roles of genipin crosslinking and biomolecule conditioning in collagen-based biopolymer: Potential for vascular media regeneration. J. Biomed. Mater. Res. A. , (2011).
  15. Satyam, A., Subramanian, G. S., Raghunath, M., Pandit, A., Zeugolis, D. I. In vitro evaluation of Ficoll-enriched and genipin-stabilised collagen scaffolds. J. Tissue Eng. Regen. Med. , (2012).
  16. Alford, P. W., et al. Blast-induced phenotypic switching in cerebral vasospasm. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 108, 12705-12710 (2011).
  17. Song, H., Tice, J. D., Ismagilov, R. F. A microfluidic system for controlling reaction networks in time. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 42, 768-772 (2003).
  18. Whitesides, G. M., Ostuni, E., Takayama, S., Jiang, X., Ingber, D. E. Soft lithography in biology and biochemistry. Annu. Rev. Biomed. Eng. 3, 335-373 (2001).
  19. Hald, E. S., Steucke, K. E., Reeves, J. A., Win, Z., Alford, P. W. Long-term vascular contractility assay using genipin-modified muscular thin films. Biofabrication. 6, 045005 (2014).
  20. Han, M., Wen, J. K., Zheng, B., Cheng, Y., Zhang, C. Serum deprivation results in redifferentiation of human umbilical vascular smooth muscle cells. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 291, C50-C58 (2006).
  21. Feinberg, A. W., et al. Muscular thin films for building actuators and powering devices. Science. 317, 1366-1370 (2007).
  22. Volfson, D., Cookson, S., Hasty, J., Tsimring, L. S. Biomechanical ordering of dense cell populations. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 105, 15346-15351 (2008).
  23. Intengan, H. D., Schiffrin, E. L. Vascular remodeling in hypertension: roles of apoptosis, inflammation, and fibrosis. Hypertension. 38, 581-587 (2001).
  24. Kayembe, K. N., Sasahara, M., Hazama, F. Cerebral aneurysms and variations in the circle of Willis. Stroke. 15, 846-850 (1984).
  25. McCain, M. L., Agarwal, A., Nesmith, H. W., Nesmith, A. P., Parker, K. K. Micromolded gelatin hydrogels for extended culture of engineered cardiac tissues. Biomaterials. 35, 5462-5471 (2014).
  26. Weir, B., Grace, M., Hansen, J., Rothberg, C. Time course of vasospasm in man. 48, 173-178 (1978).
  27. McCain, M. L., Sheehy, S. P., Grosberg, A., Goss, J. A., Parker, K. K. Recapitulating maladaptive, multiscale remodeling of failing myocardium on a chip. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 110, 9770-9775 (2013).
  28. Agarwal, A., Goss, J. A., Cho, A., McCain, M. L., Parker, K. K. Microfluidic heart on a chip for higher throughput pharmacological studies. Lab. Chip. 13, 3599-3608 (2013).
  29. Huh, D., Torisawa, Y. S., Hamilton, G. A., Kim, H. J., Ingber, D. E. Microengineered physiological biomimicry: organs-on-chips. Lab. Chip. 12, 2156-2164 (2012).
  30. Meer, A. D., van den Berg, A. Organs-on-chips: breaking the in vitro impasse. Integr. Biol. (Camb). 4, 461-470 (2012).
check_url/es/52971?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Hald, E. S., Steucke, K. E., Reeves, J. A., Win, Z., Alford, P. W. Microfluidic Genipin Deposition Technique for Extended Culture of Micropatterned Vascular Muscular Thin Films. J. Vis. Exp. (100), e52971, doi:10.3791/52971 (2015).

View Video