Summary

Pluripotentes células madre derivadas de células cardiacas para la reparación del miocardio

Published: February 03, 2017
doi:

Summary

Presentamos tres protocolos nuevos y más eficientes para la diferenciación de células madre pluripotentes inducidos por el hombre en cardiomiocitos, células endoteliales, y células del músculo liso y un método de entrega que permite mejorar el injerto de las células transplantadas mediante la combinación de la inyección de células con la entrega de citoquinas parche mediada.

Abstract

Las células madre pluripotentes inducidas (hiPSCs) deben estar completamente diferenciadas en tipos específicos de células antes de la administración, pero los protocolos convencionales para diferenciar hiPSCs en cardiomiocitos (hiPSC-CM), células endoteliales (hiPSC-ECS), y células musculares lisas (CML) son a menudo limitado por bajo rendimiento, la pureza, y / o una pobre estabilidad fenotípica. A continuación, presentamos nuevos protocolos para la generación de hiPSC-CM, -ECs y -SMCs que son sustancialmente más eficiente que los métodos convencionales, así como un método para la combinación de la inyección de células con un parche que contiene citoquinas creado sobre el sitio de administración. El parche mejora tanto la retención de las células inyectadas, sellando el trayecto de la aguja para evitar que las células de ser exprimido hacia fuera del miocardio, y la supervivencia celular, mediante la liberación de factor de crecimiento similar a la insulina (IGF) durante un período prolongado. En un modelo porcino de la lesión por isquemia-reperfusión del miocardio, la tasa de injerto era más de dos veces mayor cuando lalas células se administraron con el parche que contiene citoquinas en comparación con las células sin parche, y el tratamiento tanto con las células y el parche, pero no con las células solas, se asoció con una mejora significativa en la función cardíaca y el tamaño del infarto.

Introduction

células madre pluripotentes inducidas (hiPSCs) están entre los agentes más prometedores para la terapia de células regenerativas, ya que pueden ser diferenciadas en una gama potencialmente ilimitado y la cantidad de células que no son rechazadas por el sistema inmune del paciente. Sin embargo, su capacidad de auto-replicación y diferenciación también puede conducir a la formación de tumores y, en consecuencia, hiPSCs necesitar ser totalmente diferenciado en tipos celulares específicos, tales como los cardiomiocitos (CMS), las células endoteliales (EC), y células de músculo liso (SMCs ), antes de la administración. Uno de los métodos más simples y más comunes de administración de las células es la inyección intramiocárdica directa, pero el número de células trasplantadas que se injerta el tejido miocárdico nativa es excepcionalmente bajo. Gran parte de este desgaste se puede atribuir al medio ambiente citotóxica del tejido isquémico; sin embargo, cuando eran células madre embrionarias murinas (CES) inyectados directamente en el miocardio del corazón no lesionados, oólo ~ 40% de los 5 millones de células entregadas fueron retenidas para 3-5 hr 1, lo que sugiere que una proporción sustancial de las células administradas salió del sitio de administración, tal vez porque se exprimen a través del trayecto de la aguja por las altas presiones que se producen durante contracción del miocardio.

A continuación, presentamos los métodos novedosos y sustancialmente más eficientes para la generación de cardiomiocitos derivados de hiPSC (hiPSC-CM) 2, las células endoteliales (hiPSC-ECS) 3, y las células musculares lisas (CML) 4. En particular, este protocolo hiPSC-SMC es la primera para imitar la amplia gama de características morfológicas y funcionales observados en somático SMCs 5 por la dirección de las células hacia un fenotipo predominantemente SMC sintético o contráctil. También proporcionamos un método de suministro de células que mejora la tasa de injerto de las células inyectadas por la creación de una que contiene citoquinas fibrina patch sobre el sitio de inyección. El parche parece mejorar tanto la retención de células, mediante el sellado del trayecto de la aguja para evitar que las células salgan del miocardio, y la supervivencia celular, mediante la liberación de factor de crecimiento similar a la insulina (IGF) durante un período de al menos tres días.

Protocol

Todos los procedimientos experimentales se realizaron de acuerdo con las Directrices de Animales de la Universidad de Alabama en Birmingham. 1. Diferenciar hiPSCs en hiPSC-CM Escudo los pocillos de una placa de 6 pocillos con una reducción del factor de crecimiento pre-enfriado mezcla de proteína gelatinosa a 4 ° C durante la noche. Aspirar la mezcla de proteína gelatinosa antes de su uso. Sembrar las hiPSCs sobre las placas pre-recubiertas, y cultivar las células (1 x 10 <su…

Representative Results

Caracterización de Diferenciada hiPSC-CM, -ECs, y -SMCs La capacidad diferencial de hiPSCs se evaluaron 2, 3, 4. Flujo de análisis de citometría de T expresión troponina cardíaca (cTnT) sugieren que la pureza de la población final hiPSC-CM puede exceder de 90% (Figura 1A, 1B, panel de B1). Casi tod…

Discussion

Rendimiento mejorado / pureza de hiPSC-CM

protocolos convencionales para la diferenciación de las células madre humanas en los CM son a menudo limitadas por el bajo rendimiento y la pureza; por ejemplo, solo 35-66% de células madre-CM obtiene a través de la separación de Percoll y la formación de cuerpos cardiaca expresado miosina lenta cadena pesada o cTnT 6. La pureza de las poblaciones hiPSC-CM diferenciadas se puede incrementar sustancialmente mediante la selec…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by US Public Health Service grants NIH RO1s HL67828, HL95077, HL114120, and UO1 HL100407-project 4 (to JZ), an American Heart Association Scientist Development Grant (16SDG30410018) and a Research Voucher Award from University of Alabama at Birmingham Center for Clinical and Translational Science (to WZ).

Materials

Protocol 1
mTeSR1 medium Stem cell technologies 5850
Growth-factor-reduced matrigel Corning lifescience 356231
Y-27632 Stem cell technologies 72304
B27 supplement, serum free Fisher Scientific 17504044
RPMI1640 Fisher Scientific 11875-119
Activin A R&D 338-AC-010
BMP-4 R&D 314-BP-010
bFGF R&D 232-FA-025
Collagenase IV Fisher Scientific NC0217889
Hanks Balanced Salt Solution (Dextrose, KCl, KH2PO4, NaHCO3, NaCl, Na2HPO4 anhydrous) Fisher Scientific 14175079
Fetal Bovine Serum Fisher Scientific 10438018
6-well plate Corning Lifescience 356721
10cm dish Corning Lifescience 354732
Cell incubator Panasonic MCO-18AC
Materials Company Catalog Number Comments
Protocol 2
Versene Fisher Scientific 15040066
Fibrinogen Sigma-Aldrich F8630-5g
Thrombin Sigma-Aldrich T7009-1KU
EMB2 medium Lonza CC-3156
VEGF ProSpec-Tany CYT-241
EPO Life Technologies PHC9431
TGF-ß Peprotech 100-21C
EGM2-MV medium Lonza CC-4147
SB-431542 Selleckchem S1067
CD31 BD Bioscience BDB555445
CD144 BD Bioscience 560411
15 mL centrifuge tube Fisher Scientific 12565269
Eppendorff Centrifuge Eppendorf 5702R
Materials Company Catalog Number Comments
Protocol 3
CHIR99021 Stem cell technologies 720542
PDGF-ß Prospec CYT-501-10ug
Materials Company Catalog Number Comments
Protocol 4
Olive oil Sigma-Aldrich O1514
Gelatin Sigma-Aldrich G9391
Acetone Sigma-Aldrich 179124
Ethanol Fisher Scientific BP2818100
Glutaraldehyde Sigma-Aldrich G5882
Glycine Sigma-Aldrich G8898
IGF R&D 291-G1-01M
Bovine serum albumin Fisher Scientific 15561020
Heating plate Fisher Scientific SP88850200
Water bath Fisher Scientific 15-462-10Q
Materials Company Catalog Number Comments
Protocol 5
CaCl2 Sigma-Aldrich 223506
ezh-aminocaproic acid Sigma-Aldrich A0420000
MEM medium Fisher Scientific 12561-056
Syringe Fisher Scientific 1482748
Anesthesia ventilator Datex-Ohmeda 47810
Anesthesia ventilator Ohio Medical V5A
Defibrillator Physiol Control LIFEPAK 15
1.5T MRI General Electric Signa Horizon LX
7T MRI Siemens 10018532
Gadolinium Contrast Medium (Magnevist) Berlex 50419-188-02
2-0 silk suture Ethilon 685H
3-0 silk suture Ethilon 622H
3-0 monofilament suture Ethilon 627H

Referencias

  1. Qiao, H., et al. Death and proliferation time course of stem cells transplanted in the myocardium. Mol Imaging Biol. 11 (6), 408-414 (2009).
  2. Ye, L., et al. Cardiac repair in a porcine model of acute myocardial infarction with human induced pluripotent stem cell-derived cardiovascular cells. Cell Stem Cell. 15 (6), 750-761 (2014).
  3. Zhang, S., Dutton, J. R., Su, L., Zhang, J., Ye, L. The influence of a spatiotemporal 3D environment on endothelial cell differentiation of human induced pluripotent stem cells. Biomaterials. 35 (12), 3786-3793 (2014).
  4. Yang, L., et al. Differentiation of Human Induced-Pluripotent Stem Cells into Smooth-Muscle Cells: Two Novel Protocols. PLoS One. 11 (1), e0147155 (2016).
  5. Rensen, S. S., Doevendans, P. A., van Eys, G. J. Regulation and characteristics of vascular smooth muscle cell phenotypic diversity. Neth Heart J. 15 (3), 100-108 (2007).
  6. Xu, C., Police, S., Hassanipour, M., Gold, J. D. Cardiac bodies: a novel culture method for enrichment of cardiomyocytes derived from human embryonic stem cells. Stem Cells Dev. 15 (5), 631-639 (2006).
  7. Anderson, D., et al. Transgenic enrichment of cardiomyocytes from human embryonic stem cells. Mol Ther. 15 (11), 2027-2036 (2007).
  8. Huber, I., et al. Identification and selection of cardiomyocytes during human embryonic stem cell differentiation. FASEB J. 21 (10), 2551-2563 (2007).
  9. Kita-Matsuo, H., et al. Lentiviral vectors and protocols for creation of stable hESC lines for fluorescent tracking and drug resistance selection of cardiomyocytes. PLoS One. 4 (4), e5046 (2009).
  10. Choi, K. D., et al. Hematopoietic and endothelial differentiation of human induced pluripotent stem cells. Stem Cells. 27 (3), 559-567 (2009).
  11. Woll, P. S., et al. Wnt signaling promotes hematoendothelial cell development from human embryonic stem cells. Blood. 111 (1), 122-131 (2008).
  12. Li, Z., Hu, S., Ghosh, Z., Han, Z., Wu, J. C. Functional characterization and expression profiling of human induced pluripotent stem cell- and embryonic stem cell-derived endothelial cells. Stem Cells Dev. 20 (10), 1701-1710 (2011).
  13. Rufaihah, A. J., et al. Endothelial cells derived from human iPSCS increase capillary density and improve perfusion in a mouse model of peripheral arterial disease. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 31 (11), e72-e79 (2011).
  14. Beauchamp, J. R., Morgan, J. E., Pagel, C. N., Partridge, T. A. Dynamics of myoblast transplantation reveal a discrete minority of precursors with stem cell-like properties as the myogenic source. J Cell Biol. 144 (6), 1113-1122 (1999).
  15. Qu, Z., et al. Development of approaches to improve cell survival in myoblast transfer therapy. J Cell Biol. 142 (5), 1257-1267 (1998).
  16. Tang, X. L., et al. Intracoronary administration of cardiac progenitor cells alleviates left ventricular dysfunction in rats with a 30-day-old infarction. Circulation. 121 (2), 293-305 (2010).
  17. Zeng, L., et al. Bioenergetic and functional consequences of bone marrow-derived multipotent progenitor cell transplantation in hearts with postinfarction left ventricular remodeling. Circulation. 115 (14), 1866-1875 (2007).
  18. Davis, M. E., et al. Local myocardial insulin-like growth factor 1 (IGF-1) delivery with biotinylated peptide nanofibers improves cell therapy for myocardial infarction. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (21), 8155-8160 (2006).
  19. Li, Q., et al. Overexpression of insulin-like growth factor-1 in mice protects from myocyte death after infarction, attenuating ventricular dilation, wall stress, and cardiac hypertrophy. J Clin Invest. 100 (8), 1991-1999 (1997).
  20. Wang, L., Ma, W., Markovich, R., Chen, J. W., Wang, P. H. Regulation of cardiomyocyte apoptotic signaling by insulin-like growth factor I. Circ Res. 83 (5), 516-522 (1998).
  21. Chong, J. J., et al. Human embryonic-stem-cell-derived cardiomyocytes regenerate non-human primate hearts. Nature. 510 (7504), 273-277 (2014).
check_url/es/55142?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Zhu, W., Gao, L., Zhang, J. Pluripotent Stem Cell Derived Cardiac Cells for Myocardial Repair. J. Vis. Exp. (120), e55142, doi:10.3791/55142 (2017).

View Video