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Bioimpresión directa de esferoides multicelulares de mama 3D en redes endoteliales

DOI:

10.3791/61791

November 2nd, 2020

In This Article

Summary

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El objetivo de este protocolo es bioimprimir directamente las células epiteliales mamarias como esferoides multicelulares en redes endoteliales preformadas para crear rápidamente modelos de co-cultivo endotelial mamario 3D que pueden ser utilizados para estudios de detección de fármacos.

Abstract

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La bioimpresión está emergiendo como una herramienta prometedora para fabricar modelos de cáncer humano 3D que recapitulan mejor las señas de identidad críticas de la arquitectura de tejidos in vivo. En la bioimpresión actual de extrusión capa por capa, las células individuales se extruyen en un bioink junto con señales espaciales y temporales complejas para promover el autoensamblaje del tejido jerárquico. Sin embargo, esta técnica de biofabricación se basa en interacciones complejas entre células, bioinks y señales bioquímicas y biofísicas. Por lo tanto, el autoensamblaje puede tomar días o incluso semanas, puede requerir bioinks específicos, y no siempre puede ocurrir cuando hay más de un tipo de célula involucrado. Por lo tanto, desarrollamos una técnica para bioimprimir directamente esferoides epiteliales de mama 3D preformados en una variedad de bioinks. Los esferoides epiteliales 3D preformados bioimpresos mantuvieron su viabilidad y arquitectura polarizada después de la impresión. Además imprimimos los esferoides 3D en redes celulares endoteliales vasculares para crear un modelo de co-cultivo. Por lo tanto, la novedosa técnica de bioimpresión crea rápidamente un modelo mamario humano 3D más fisiológicamente relevante a menor costo y con mayor flexibilidad que las técnicas tradicionales de bioimpresión. Esta versátil técnica de bioimpresión se puede extrapolar para crear modelos 3D de otros tejidos en bioinks adicionales.

Introduction

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Los modelos tumorales vascularizados in vitro 3D son herramientas esenciales para el estudio mecanicista del crecimiento del cáncer y la metástasis. Para el cáncer de mama en particular, las células epiteliales mamarias cultivadas en Matrigel se organizan en esferoides polarizados que se asemejan más a la arquitectura in vivo mammary acinus1,2,3,4,5,6,7,8. Cultivo celular epitelial mamario 3D también afe....

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Protocol

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1. Crecimiento de células epiteliales mamarias y medios de ensayo

  1. Células epiteliales mamarias MCF10A
    NOTA: La línea celular epitelial mamaria inmortalizada no tumorigénica se deriva de una paciente con enfermedad fibroquística43. Las células no expresan el receptor de estrógeno.
    1. Para preparar 20 μg/mL factor de crecimiento epidérmico (EGF), disolver 100 μg de EGF liofilizado en 500 μL de dH estéril2O para hacer 200 μg/mL EGF. Añadir 500 μL de 200 μg/mL de EGF en 4,5 ml de BSA estéril del 0,1% en dH2O para hacer una solución de stock de EGF de 20 μg/mL. Almacene los alíquesas de EGF preparados de 20 μg....

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Results

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Las células epiteliales mamarias deben autoorganización en esferoides 3D después de 5-8 días de cultivo en solución de matriz y en medio de cultivo con 2% solución de matriz. Los esferoides epiteliales de mama MCF10A no tumorigénicos deben aparecer redondos y tener un centro hueco, con integrina α6 polarizada al borde exterior del esferoide(Figura 1,inset muestra centros huecos). Las células epiteliales de cáncer de mama MDA-MB-231 altamente invasivas forman esferoides irregulares. Los esfer.......

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Discussion

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Este protocolo es el primero de su tipo en bioimprimir esferoides en su arquitectura 3D para co-cultivo con células endoteliales también en su arquitectura 3D. Los pasos críticos del protocolo incluyen la formación inicial de esferoides epiteliales mamales y redes HUVEC. Se debe tener extrema precaución en la alimentación de esferoides epiteliales mamarios, ya que se interrumpen fácilmente de la solución de matriz. Del mismo modo, los esferoides epiteliales mamales deben tratarse con cuidado cuando se pipetizan fuera de .......

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Disclosures

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Los autores no tienen nada que revelar.

Acknowledgements

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Esta investigación fue financiada por NIH 1R01HL140239-01 a AMC. Nos gustaría dar las gracias al Centro de Imágenes Celulares de la Universidad drexel.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
37° Incubadora C, 5% de CO2 y 95% de humedadSanyoMCO-20AICIncubación de células
Impresora biológica 3Da medidaNingunoSe utiliza para la bioimpresión
portaobjetos de cámara de 8 pocillosVWR, Radnor, PA53106-306para la siembra de esferoides
aguja de calibre 25Sigma, St. Louis, MOZ192406-100EAaguja de jeringa de bioimpresión
Etanol absoluto (200 grados)Sigma, St.Louis, MOE7023-500MLreconstitución de componentes de medios
Affinipure F(ab′)2 fragmentos de cabra anti-ratón IgGJackson ImmunoResearch, West Grove, PA115006020bloque secundario - Inmunofluorescencia
Alexa Fluor 488 (1:200)Thermo Fisher, Waltham, MAA-11006Anticuerpo secundario-Inmunofluorescencia
Insulina bovinaSigma, St.Louis, MOI-035-0.5MLMCF10A Aditivo de medios
Albúmina sérica bovina (BSA)Sigma, St.Louis, MOA2153-500GAgente bloqueante -Inmunofluorescencia
Falcon 70 µ m Filtro de célulasCorning, Corning, NY352350Eliminar esferoides grandes o agrupados
CellTracker™ Tinte rojo CMTPX ThermoFisher, Waltham, MAC34552pre-tinción para tubos HUVEC
Centrífuga compactaHermle- Labnet, Edison, NJZ206APara centrifugaciones celulares
Toxina del cóleraSigma, St.Louis, MOC8052-.5MGMCF10A Aditivo para medios
Tubos cónicos 15 mLVWR, Radnor, PA62406-200Recolección y resuspensión de células
Countess II-FL Contador de celdasThermo Fisher, Waltham, MAAMQAF1000células de recuento
Pipetas de vidrio (10 mL)VWR, Radnor, PA76184-746resuspensión celular
DMEM F:12Thermo Fisher, Waltham, MA11320033MCF10A medios basales
DMEM 1XVWR, Radnor, PA10-014-CVMDA-MB-231 medios basales
Medio basal endotelial-2 (EBM-2)Lonza, Durham, NCCC-3156HUVEC medios basales
Medio de crecimiento endotelial-2 (EGM-2)Lonza, Durham, NCCC-3162 Acompañado deun kit de balas (que contiene factores de crecimiento)
Alexa Fluor™ 488 FaloidinaThermo Fisher, Waltham, MAEtiquetado MDA-MB-231 esferoides
Suero fetal bovinoCytiva, Logan, UTSH30071.03HUVEC/MDA-MB-231 aditivo
Suero de cabraThermo Fisher, Waltham, MA16210064Componente de marcado de inmunofluorescencia
GlycineSigma, St.Louis, MOG8898-500Gcomponente tampón de inmunofluorescencia
Hoescht 33342Thermo Fisher, Waltham, MA62249Inmunofluorescencia con tinción de núcleos
Suero de caballoThermo Fisher, Waltham, MA16050130MCF10A Aditivo para medios
HidrocortisonaSigma, St.Louis, MOH0888-5GMCF10A Aditivo de medios
Células endoteliales de la vena umblical humana (HUVEC)Aplicaciones decélulas, San Diego, CA200-05fLíneas celulares endoteliales
Integrina y alfa; 6Millipore, Billerica, MAMAB1378Componente de marcado de esferoide de inmunofluorescencia
Ensayo de muertos vivosThermo Fisher, Waltham, MAL3224Ensayo de tinción de células vivas y muertas para la viabilidad celular
LSM 700 Microscopio confocalZeiss, Thornwood, NYSe utiliza para visualizar células
Matrigel - factor de crecimiento reducido 10 mg/mlVWR, Radnor, PA354230Esferoide formación
Células MCF10AATCCCRL-10317Línea celular de mama
MDA-MB-231 célulasATCCHTB-26Línea celular de mama
ParaformaldehídoSigma, St.Louis, MO158127-500Gfijador de células
Penicilina y estreptomicinaThermo Fisher, Waltham, MA15140122MCF10A / MDA-MB-231/HUVEC Aditivo de medios
Fosfato tamponado Solución salina 1X (PBS)Thermo Fisher, Waltham, MA7001106Tampón de lavado para células antes de la tripsinización
Tampón de fosfato solución salina 10XThermo Fisher, Waltham, MAAM9625componente tampón de inmunofluorescencia
Prolongue el antidecoloración del oroThermo Fisher, Waltham, MAP36934medio de montaje de inmunofluorescencia
factor de crecimiento epidérmico humano recombinante, EGFPeprotech, Rocky Hill, NJAF-100-15MCF10A/ componente de medio
de ensayo Azida de sodioSigma, St.Louis, MOS2002-25Gtampón de inmunofluorescencia
Jeringa estéril (10 mL)VWR, Radnor, PA75846-757proceso de bioimpresión
Placa de cultivo de tejidos (10 cm)VWR, Radnor, PA25382-166cultivo celular monocapa
Triton X-100Sigma, St.Louis, MOT8787-250MLcomponente tampón de inmunofluorescencia
azul tripano 0,4%Thermo Fisher, Waltham, MA15250061aditivo contador
de células Tripsina-EDTA 0,05%Thermo Fisher, Waltham, MADesprendimientocélulas
Tween -20Thermo Fisher, Waltham, MA85113componente tampón de inmunofluorescencia
Factor de crecimiento endotelial vascular (VEGF165)Peprotech, Rocky Hill, NJ100-20HUVEC aditivo
tubos Volocity 6.3 software de imagen celularPerkinElmer, Hopkinton, MACompresor de pila Z
de medios componente de 25300054 para

References

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  1. Barcellos-Hoff, M. H., Aggeler, J., Ram, T. G., Bissell, M. J. Functional differentiation and alveolar morphogenesis of primary mammary cultures on reconstituted basement membrane. Development. 105 (2), 223-235 (1989).
  2. Debnath, J., Muthuswamy, S. K., Brugge, J. S.

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