Summary

Ортотопическая трансплантация левого легкого на ювенильной модели свиньи для ESLP

Published: February 14, 2022
doi:

Summary

В этом протоколе описывается модель ортотопической аллотрансплантации левого легкого у молодых свиней, предназначенная для использования в исследованиях ESLP. Основное внимание уделяется анестезиологическим и хирургическим методам, а также критическим шагам и устранению неполадок.

Abstract

Трансплантация легких является золотым стандартом лечения терминальной стадии заболевания легких, ежегодно во всем мире проводится более 4600 трансплантаций легких. Однако трансплантация легких ограничена нехваткой доступных донорских органов. Таким образом, существует высокая смертность в листе ожидания. Перфузия легких ex situ (ESLP) увеличила показатели использования донорских легких в некоторых центрах на 15-20%. ESLP была применена в качестве метода для оценки и восстановления маргинальных донорских легких и продемонстрировала приемлемые краткосрочные и долгосрочные результаты после трансплантации донорских легких с расширенными критериями (ECD). Модели трансплантации крупных животных (in vivo) необходимы для подтверждения результатов текущих исследований in vitro . Анатомические и физиологические различия между людьми и свиньями создают значительные технические и анестезиологические проблемы. Легко воспроизводимая модель трансплантации позволит in vivo валидировать существующие стратегии ESLP и проводить доклиническую оценку различных вмешательств, направленных на улучшение функции донорских легких. Данный протокол описывает модель ортотопической аллотрансплантации левого легкого у свиньи. Это включает в себя анестезиологические и хирургические методы, индивидуальный хирургический контрольный список, устранение неполадок, модификации, а также преимущества и ограничения подхода.

Introduction

Трансплантация легких является основным долгосрочным методом лечения терминальной стадии заболевания легких. Ежегодно во всем мире проводится более 4 600 трансплантаций легких1. Однако трансплантация легких в настоящее время имеет существенные ограничения. Во-первых, потребность в органах продолжает затмевать доступных доноров. Несмотря на то, что с 2012 г. показатели трансплантации легких ежегодно увеличиваются из-за комбинированного эффекта, связанного с увеличением числа кандидатов на трансплантацию, увеличением числа доноров и улучшением использования восстановленных органов, смертность в листе ожидания трансплантации существенно неснизилась2. Проблемы с качеством органов представляют собой еще одно серьезное ограничение, при этом уровень использования органов составляет всего 20%-30%3,4,5. Наконец, тенденции в отношении послеоперационных исходов трансплантации легких неудовлетворительны, при этом отдаленные исходы трансплантации трансплантатов и пациентов по-прежнему отстают от других трансплантаций солидных органов2.

Новая технология, перфузия легких ex situ (ESLP), может смягчить эти ограничения. ESLP все чаще применяется в качестве метода оценки и восстановления маргинальных донорских легких и продемонстрировал приемлемые краткосрочные и долгосрочные результаты после трансплантации донорских легких с расширенными критериями (ECD) 6,7,8,9,10. Следовательно, ESLP увеличила коэффициент использования в некоторых центрах на 15%-20%6,7,8,9,10,11.

Надлежащее исследование ESLP требует валидации in vivo результатов in vitro; тем не менее, существует ограниченная литература о моделях трансплантации легких свиней для ESLP12,13,14,15. Кроме того, в имеющейся литературе содержится недостаточная информация об анестезиологическом лечении йоркширских свиней при трансплантации легких, которые могут быть крайне нестабильными гемодинамически12,13,14,15. Создание легко воспроизводимой модели позволит in vivo валидировать текущие стратегии ESLP и проводить доклиническую оценку различных вмешательств для уменьшения ишемически-реперфузионного повреждения легких. Целью настоящего исследования является описание модели ортотопической аллотрансплантации левого легкого у свиней для использования с ESLP. Протокол включает в себя описание анестезиологических и хирургических методов, индивидуальный хирургический контрольный список, а также подробную информацию об опыте устранения неполадок и изменениях протокола. В данной работе также обсуждаются ограничения и преимущества модели трансплантации левого легкого свиньи. В этой рукописи не описывается процесс извлечения легких свиней йоркширской породы весом 35-50 кг, а также не рассматривается создание и прекращение ESLP. Этот протокол касается исключительно операции трансплантации реципиента.

Protocol

Все процедуры были выполнены в соответствии с рекомендациями Канадского совета по уходу за животными и руководством по уходу и использованию лабораторных животных. Протоколы были одобрены институциональным комитетом по уходу за животными Университета Альберты. Этот протокол был при…

Representative Results

Все результаты относятся к 4 ч реперфузии после 12 ч NPV-ESLP16. Во время эксплантации легкого следует ожидать нескольких клинических исходов (рис. 3). Как правило, свинья остается гемодинамически стабильной после успешной эксплантации левого легкого, но может пот…

Discussion

Этот протокол включает в себя несколько критически важных хирургических этапов, и для обеспечения успешной трансплантации и оценки легких необходимо устранить неполадки. Молодые легкие свиней невероятно нежные по сравнению с легкими взрослого человека, поэтому оперирующий хирург до…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование финансируется от имени Фонда университетской больницы.

Materials

ABL 800 FLEX Blood Gas Analyzer Radiometer 989-963
Adult-Pediatric Electrostatic Filter HME – Small Covidien 352/5877
Allison Lung Retractor Pilling 341679
Arterial Filter SORIN GROUP 01706/03
Backhaus Towel Clamp Pilling 454300
Bovine Serum Albumin MP biomedicals 218057791
Biomedicus Pump Maquet BPX-80
Bronchoscope
Cable Ties – White 12” HUASU International HS4830001
Calcium Chloride Fisher Scientific C69-500G
Cooley Sternal Retractor Pilling 341162
CUSHING Gutschdressing Forceps Pilling 466200
Debakey-Metzenbaum Dissecting Pilling 342202
Scissors Pilling 342202
DeBakey Peripheral Vascular Clamp Pilling 353535
Debakey Straight Vascular Tissue Forceps Pilling 351808
D-glucose Sigma-Aldrich G5767-500G
Drop sucker
Endotracheal Tube 9.0mm CUFD Mallinckrodt 9590E
Flow Transducer BIO-PROBE TX 40
Infusion Pump Baxter AS50
Inspire 7 M Hollow Fiber Membrane Oxygenator SORIN GROUP K190690
Intercept Tubing Connector 3/8" x 1/2" Medtronic 6013
Intercept Tubing 1/4" x 1/16" x 8' Medtronic 3108
Intercept Tubing 3/8" x 3/32" x 6' Medtronic 3506
Laryngoscope N/A N/A Custom-made with 10-inch blade
Metzenbaum Dissecting Scissors Pilling 460420
Medical Carbon Dioxide Tank Praxair 5823115
Medical Oxygen Tank Praxair 2014408
Medical Nitrogen Tank Praxair NI M-K
Mosquito Clamp Pilling 181816
Harken Auricle Clamp
Organ Chamber Tevosol
PlasmaLyte A Baxter TB2544
Poole Suction Tube Pilling 162212
Potassium Phosphate Fischer Scientific P285-500G
PERFADEX Plus XVIVO 19811
Satinsky Clamp Pilling 354002
Scale TANITA KD4063611
Silicon Support Membrane Tevosol
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich 792519-1KG
Sodium Chloride 0.9% Baxter JB1324
Sorin XTRA Cell Saver SORIN GROUP 75221
Sternal Saw Stryker 6207
Surgical Electrocautery Device Kls Martin ME411
TruWave Pressure Transducer Edwards VSYPX272
Two-Lumen Central Venous Catheter 7fr X2 Arrowg+ard CS-12702-E
Vorse Tubing Clamp Pilling 351377
Willauer-Deaver Retractor Pilling 341720
Yankauer Suction Tube Pilling 162300
0 ETHIBOND Green 1X36" Endo Loop 0 ETHICON D8573
0 PDS II CP-1 2×27” ETHICON Z467H
1 VICRYL MO-4 1×18” ETHICON J702D
2-0 SILK Black 12" x 18" Strands ETHICON SA77G
4-0 PROLENE Blue TF 1×24” ETHICON 8204H
6-0 PROLENE Blue BV 2×30” ETHICON M8776
21-Gauge Needle

Referencias

  1. Chambers, D. C., et al. The international thoracic organ transplant registry of the international society for heart and lung transplantation: Thirty-fifth adult lung and heart-lung transplant report-2018; focus theme: Multiorgan transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation: The Official Publication of the International Society for Heart Transplantation. 37 (10), 1169-1183 (2018).
  2. Valapour, M., et al. OPTN/SRTR 2017 annual data report: Lung. American Journal of Transplantation: Official Journal of the American Society of Transplantation and the American Society of Transplant Surgeons. 19, 404-484 (2019).
  3. Klein, A. S., et al. Organ donation and utilization in the united states, 1999-2008. American Journal of Transplantation: Official Journal of the American Society of Transplantation and the American Society of Transplant Surgeons. 10 (4), 973-986 (2010).
  4. Kotecha, S., et al. Continued successful evolution of extended criteria donor lungs for transplantation. The Annals of Thoracic Surgery. 104 (5), 1702-1709 (2017).
  5. Singh, E., et al. Sequence of refusals for donor quality, organ utilization, and survival after lung transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (1), 35-42 (2019).
  6. Cypel, M., et al. Normothermic ex vivo lung perfusion in clinical lung transplantation. The New England Journal of Medicine. 364 (15), 1431-1440 (2011).
  7. Wallinder, A., et al. Early results in transplantation of initially rejected donor lungs after ex vivo lung perfusion: A case-control study. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery: Official Journal of the European Association for Cardio-Thoracic Surgery. 45 (1), 40-44 (2014).
  8. Sage, E., et al. Lung transplantation from initially rejected donors after ex vivo lung reconditioning: The french experience. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery: Official Journal of the European Association for Cardio-Thoracic Surgery. 46 (5), 794-799 (2014).
  9. Valenza, F., et al. Extracorporeal lung perfusion and ventilation to improve donor lung function and increase the number of organs available for transplantation. Transplantation Proceedings. 44 (7), 1826-1829 (2012).
  10. Fildes, J. E., et al. Clinical outcome of patients transplanted with marginal donor lungs via ex vivo lung perfusion compared to standard lung transplantation. Transplantation. 99 (5), 1078-1083 (2015).
  11. Cypel, M., et al. Experience with the first 50 ex vivo lung perfusions in clinical transplantation. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 144 (5), 1200-1206 (2012).
  12. Clark, S. C., et al. A new porcine model of reperfusion injury after lung transplantation. Laboratory Animals. 33, 135-142 (1999).
  13. Karimi, A., et al. Technical pearls for swine lung transplantation. Journal of Surgical Research. 171, 107-111 (2011).
  14. Kruger, M., et al. Porcine pulmonary auto-transplantation for ex vivo therapy as a model for new treatment strategies. Interactive CardioVascular and Thoracic Surgery. 23, 358-366 (2016).
  15. Mariscal, A., et al. Pig lung transplant survival model. Nature Protocols. 13, 1814-1828 (2018).
  16. Aboelnazar, N. S., et al. Negative pressure ventilation decreases inflammation and lung edema during normothermic ex vivo lung perfusion. The Journal of Heart and Lung Transplantation: The Official Publication of the International Society for Heart Transplantation. 37 (4), 520-530 (2018).

Play Video

Citar este artículo
Forgie, K. A., Fialka, N., Khan, M., Buchko, M., Hatami, S., Himmat, S., Qi, X., Wang, X., Buswell, K., Edgar, R., Domahidi, D., Freed, D. H., Nagendran, J. Left Lung Orthotopic Transplantation in a Juvenile Porcine Model for ESLP. J. Vis. Exp. (180), e62979, doi:10.3791/62979 (2022).

View Video