Summary

数字液滴PCR法定量分析小鼠视网膜AAV转导效率

Published: December 25, 2021
doi:

Summary

该协议介绍了如何使用数字液滴PCR(dd-PCR)以及小规模AAV生产,玻璃体内注射,视网膜成像和视网膜基因组DNA分离来量化小鼠视网膜中的AAV转导效率。

Abstract

许多视网膜细胞生物学实验室现在经常使用腺相关病毒(AAV)进行基因编辑和调控应用。AAV转导的效率通常是至关重要的,这会影响整体实验结果。转导效率的主要决定因素之一是AAV载体的血清型或变体。 目前,各种人工AAV血清型和变体可用于宿主细胞表面受体的不同亲和力。对于视网膜基因治疗,这导致不同视网膜细胞类型的转导效率不同。此外,注射路线和AAV生产的质量也可能影响视网膜AAV转导效率。因此,比较不同变体、批次和方法的效率至关重要。数字液滴PCR(dd-PCR)方法以高精度定量核酸,并允许在没有任何标准品或参考的情况下对给定靶标进行绝对定量。使用dd-PCR,通过绝对定量注射视网膜内的AAV基因组拷贝数来评估AAV的转导效率也是可行的。在这里,我们提供了一种使用dd-PCR量化视网膜细胞中AAV转导率的简单方法。通过微小的修改,这种方法也可以成为线粒体DNA拷贝数定量的基础,以及评估碱基编辑的效率,这对于几种视网膜疾病和基因治疗应用至关重要。

Introduction

腺相关病毒(AAV)现在通常用于各种视网膜基因治疗研究。AAV提供了一种安全有效的基因递送方式,免疫原性较低,基因组整合较少。AAV通过内吞作用进入靶细胞,这需要细胞表面受体和共受体结合1,2。因此,AAV对不同细胞类型的转导效率主要取决于衣壳及其与宿主细胞受体的相互作用。AAV具有血清型,每种血清型可以具有不同的细胞/组织向性和转导效率。还有人工AAV血清型和变异,通过化学修饰病毒衣壳,杂交衣壳的产生,肽插入,衣壳洗牌,定向进化和合理诱变产生3。即使氨基酸序列或衣壳结构的微小变化也会对与宿主细胞因子的相互作用产生影响,并导致不同的趋向性4。除了衣壳变异体外,其他因素,如注射途径和AAV生产的批次间变异,都会影响AAV在神经元视网膜中的转导效率。因此,需要可靠的方法来比较不同变体的转导速率。

大多数测定AAV转导效率的方法依赖于报告基因表达。这些包括荧光成像,免疫组织化学,蛋白质印迹或报告基因产物5,6,7的组织化学分析。然而,由于AAV的大小限制,包括报告基因来监测转导效率并不总是可行的。使用强启动子,如杂交CMV增强子/鸡β-肌动蛋白或Woodchuck肝炎转录后调节元件(WPRE)作为mRNA稳定剂序列,进一步使大小问题8复杂化。因此,使用更直接的方法定义注入的AAV的转导率也是有益的。

数字液滴PCR(dd-PCR)是一种从微量样品中定量靶DNA的强大技术。dd-PCR技术依赖于通过油滴封装靶DNA和PCR反应混合物。每个dd-PCR反应都含有数千个液滴。每个液滴作为独立的PCR反应进行处理和分析9。液滴分析只需使用泊松算法即可计算出任何样品中靶DNA分子的绝对拷贝数。由于AAV的转导效率与神经元视网膜中AAV基因组的拷贝数相关,因此我们使用dd-PCR方法量化AAV基因组。

在这里,我们描述了一种dd-PCR方法,用于计算来自视网膜基因组DNA6,10的AAV载体的转导效率。首先,使用小规模方案生成表达tdTomato报告的AAV,并通过dd-PCR方法11滴定。其次,AAV被玻璃体内注射到神经元视网膜中。为了证明转导效率,我们首先使用荧光显微镜和ImageJ软件量化了tdTomato表达。随后使用dd-PCR分离基因组DNA,用于定量注射视网膜中的AAV基因组。tdTomato表达水平与dd-PCR定量转导的AAV基因组的比较表明,dd-PCR方法准确量化了AAV载体的转导效率。我们的实验方案展示了一种基于dd-PCR的量化AAV转导效率的方法的详细说明。在该协议中,我们还显示了玻璃体内注射后转导的AAV基因组的绝对数量,只需使用基因组DNA分离和dd-PCR结果后的稀释因子即可。总体而言,该协议提供了一种强大的方法,该方法将成为报告表达的替代方法,以量化视网膜中AAV载体的转导效率。

Protocol

所有实验方案均被萨班哲大学伦理委员会接受,实验按照”视觉和眼科研究协会”的声明进行,用于研究动物 1. 小规模AAV生产12 使用15cm板在完整的10 mL DMEM / 10S中培养HEK293T细胞,直到70-80%汇合。 用20μg辅助质粒(pHGT1-Adeno1),7μg衣壳质粒和7μgAAV2-CBA-tdTomato-WPRE载体和136μLPEI溶液(1mg / mL)在5mL DMEM中制备转染混合物。 将5mL?…

Representative Results

小规模AAV生产是一种快速有效的方法,可为玻璃体内注射提供载体(图1)。小规模AAV生产通常使滴度在1 x 1012 GC / ml的范围内,足以检测视网膜中的报告表达(图2)。使用滴定聚合酶链反应对 AAV 进行滴定可提供一致的结果。常规使用ITR2和WPRE特异性引物,并使用dd-PCR软件通过建模为泊松分布来计算每个靶分子的起始浓度。通过增殖稀释因子并?…

Discussion

在该协议中,我们生成了两个具有不同衣壳蛋白的AAV载体,然后相应地滴定它们。该协议最关键的步骤之一是产生足够量的AAV,这将在转导12,13之后产生可检测的报告者表达。

AAV的滴度也是调整玻璃体内注射AAV剂量的重要因素。一旦达到这些重要标准,就可以通过dd-PCR方法量化AAV的转导效率。

许多实验室正在…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们要感谢Oezkan Keles,Josephine Jüttner和巴塞尔分子与临床眼科研究所的Botond Roska教授,复杂病毒平台对AAV生产的帮助和支持。我们还要感谢宾夕法尼亚大学佩雷尔曼医学院的Jean Bennett教授的AAV8 / BP2菌株。动物工作在盖布泽技术大学动物设施进行。为此,我们感谢Leyla Dikmetas和Uygar Halis Tazebay教授对畜牧业的技术援助和支持。我们还要感谢Fatma Ozdemir博士对手稿的评论。这项工作得到了TUBITAK,授权号118C226和121N275以及Sabanci University Integration grant的支持。

Materials

96-Well Semi-Skirted ddPCR plates BioRad 12001925 ddPCR
Amicon Filter Millipore UFC910096 AAV
C1000 TOUCH 96 DEEP WELLS BioRad 1851197 ddPCR
C57BL/6JRj mice strain Janvier C57BL/6JRj Mice
DG8 gaskets BioRad 1863009 ddPCR
DG8 Cartridges BioRad 1864008 ddPCR
DMEM Lonza BE12-604Q AAV
DPBS PAN BIOTECH L 1825 AAV
Droplet generation oil eva green BioRad 1864006 ddPCR
Droplet reader oil BioRad 1863004 ddPCR
FBS PAN BIOTECH p30-3306 AAV
Foil seals for PX1 PCR Plate sealer BioRad 1814040 ddPCR
Insulin Syringes BD Medical 320933 Intravitreal injection
Isoflurane ADEKA Equation 2LAÇ SANAYEquation 2 VE TEquation 2CARET A.Equation 1. N01AB06 anesthetic
Microinjector MM33 World Precision Instruments 82-42-101-0000 Intravitreal injection
Micron IV Phoenix Research Labs Micron IV Microscopy system based on 3-CCD color camera, frame grabber, and off-the-shelf software enables researchers to image mouse retinas.
Mydfrin (%2.5 phenylephrine hydrochloride) Alcon S01FB01 pupil dilation
Nanofil Syringe 10 μl World Precision Instruments NANOFIL Intravitreal injection
Needle RN G36, 25 mm, PST 2 World Precision Instruments NF36BL-2 Intravitreal injection
PEI-MAX Polyscience 24765-1 AAV
Penicillin-Streptomycin PAN BIOTECH P06-07100 AAV
Plasmid pHGT1-Adeno1 PlasmidFactory PF1236 AAV
Pluronic F-68 Gibco 24040032 AAV
PX1 PCR Plate Sealer system BioRad 1814000 ddPCR
QX200 ddPCR EvaGreen Supermix BioRad 1864034 ddPCR
QX200 Droplet Reader/QX200 Droplet Generator BioRad 1864001 ddPCR
SPLITTER FORCEP WATCHER
MAKER – LENGTH = 13.5 CM
endostall medical EJN-160-0155 Retina isolation
Steril Syringe Filter AISIMO ASF33PS22S AAV
Tissue Genomic DNA Kit EcoSpin E1070 gDNA isolation
Tobradex (0.3% tobramycin / 0.1% dexamethasone) Alcon S01CA01 anti-inflammatory / antibiotic
Tropamid (% 0.5 tropicamide) Bilim Equation 2laç Sanayi ve Ticaret A.Equation 1. S01FA06 pupil dilation
Turbonuclease Accelagen N0103L AAV
Viscotears (carbomer 2 mg/g) Bausch+Lomb S01XA20 lubricant eye drop

Referencias

  1. Herrmann, A. K., Grimm, D. High-throughput dissection of AAV-host interactions: The fast and the curious. Journal of Molecular Biology. 430 (17), 2626-2640 (2018).
  2. Pillay, S., Carette, J. E. Host determinants of adeno-associated viral vector entry. Current Opinion in Virology. 24, 124-131 (2017).
  3. Castle, M. J., Turunen, H. T., Vandenberghe, L. H., Wolfe, J. H. Controlling AAV tropism in the nervous system with natural and engineered capsids. Methods in Molecular Biology. 1382, 133-149 (2016).
  4. Agbandje-McKenna, M., Kleinschmidt, J. AAV capsid structure and cell interactions. Methods in Molecular Biology. 807, 47-92 (2011).
  5. Han, I. C., et al. Retinal tropism and transduction of adeno-associated virus varies by serotype and route of delivery (intravitreal, subretinal, or suprachoroidal) in rats. Human Gene Therapy. 31 (23-24), 1288-1299 (2020).
  6. Muraine, L., et al. Transduction efficiency of adeno-associated virus serotypes after local injection in mouse and human skeletal muscle. Human Gene Therapy. 31 (3-4), 233-240 (2020).
  7. Cronin, T., et al. Efficient transduction and optogenetic stimulation of retinal bipolar cells by a synthetic adeno-associated virus capsid and promoter. EMBO Molecular Medicine. 6 (9), 1175-1190 (2014).
  8. Higashimoto, T., et al. The woodchuck hepatitis virus post-transcriptional regulatory element reduces readthrough transcription from retroviral vectors. Gene Therapy. 14 (17), 1298-1304 (2007).
  9. Pinheiro, L. B., et al. Evaluation of a droplet digital polymerase chain reaction format for DNA copy number quantification. Annals in Chemistry. 84 (2), 1003-1011 (2012).
  10. Albayrak, C., et al. Digital quantification of proteins and mrna in single mammalian cells. Molecular Cell. 61 (6), 914-924 (2016).
  11. Lock, M., Alvira, M. R., Chen, S. J., Wilson, J. M. Absolute determination of single-stranded and self-complementary adeno-associated viral vector genome titers by droplet digital PCR. Hum Gene Therapy Methods. 25 (2), 115-125 (2014).
  12. Juttner, J., et al. Targeting neuronal and glial cell types with synthetic promoter AAVs in mice, non-human primates and humans. Nature Neuroscience. 22 (8), 1345-1356 (2019).
  13. Vandenberghe, L. H., et al. Efficient serotype-dependent release of functional vector into the culture medium during adeno-associated virus manufacturing. Human Gene Therapy. 21 (10), 1251-1257 (2010).
  14. Barben, M., Schori, C., Samardzija, M., Grimm, C. Targeting Hif1a rescues cone degeneration and prevents subretinal neovascularization in a model of chronic hypoxia. Molecular Neurodegeneration. 13 (1), 12 (2018).
  15. Chan, K. Y., et al. Engineered AAVs for efficient noninvasive gene delivery to the central and peripheral nervous systems. Nature Neuroscience. 20 (8), 1172-1179 (2017).
  16. Guiet, R., Burri, O., Seitz, A. Open source tools for biological image analysis. Methods Molecular Biology. 2040, 23-37 (2019).
  17. Parks, M. M., et al. Variant ribosomal RNA alleles are conserved and exhibit tissue-specific expression. Science Advances. 4 (2), (2018).
  18. Aurnhammer, C., et al. Universal real-time PCR for the detection and quantification of adeno-associated virus serotype 2-derived inverted terminal repeat sequences. Human Gene Therapy Methods. 23 (1), 18-28 (2012).
  19. Maclachlan, T. K., et al. Preclinical safety evaluation of AAV2-sFLT01- a gene therapy for age-related macular degeneration. Molecular Therapy. 19 (2), 326-334 (2011).
  20. Stieger, K., et al. Detection of intact rAAV particles up to 6 years after successful gene transfer in the retina of dogs and primates. Molecular Therapy. 17 (3), 516-523 (2009).
  21. Gyorgy, B., et al. Allele-specific gene editing prevents deafness in a model of dominant progressive hearing loss. Nature Medicine. 25 (7), 1123-1130 (2019).
  22. Cox, D. B. T., et al. RNA editing with CRISPR-Cas13. Science. 358 (6366), 1019-1027 (2017).
check_url/es/63038?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Okan, I. C. T., Ahmadian, M., Tutuncu, Y., Altay, H. Y., Agca, C. Digital Droplet PCR Method for the Quantification of AAV Transduction Efficiency in Murine Retina. J. Vis. Exp. (178), e63038, doi:10.3791/63038 (2021).

View Video