Summary

Positronemissietomografie Beeldvorming van celhandel: een methode voor celradiolabeling

Published: October 27, 2023
doi:

Summary

Hier wordt een protocol gepresenteerd voor het radioactief labelen van cellen met een positronemissietomografie (PET) radio-isotoop, 89 Zr (t1/2 78,4 uur), met behulp van een kant-en-klaar radioactief labelend synthon, [89 Zr]Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine ([89Zr]Zr-DBN). Radiolabeling van cellen met [89Zr]Zr-DBN maakt niet-invasieve tracking en beeldvorming mogelijk van toegediende radioactief gelabelde cellen in het lichaam met PET tot 7 dagen na toediening.

Abstract

Stamcel- en chimere antigeenreceptor (CAR) T-celtherapieën zijn in opkomst als veelbelovende therapieën voor orgaanregeneratie en als immunotherapie voor verschillende vormen van kanker. Ondanks dat er op deze gebieden aanzienlijke vooruitgang is geboekt, moet er nog meer worden geleerd om de farmacokinetiek en farmacodynamiek van de toegediende therapeutische cellen in het levende systeem beter te begrijpen. Voor niet-invasieve, in vivo tracking van cellen met positronemissietomografie (PET) is een nieuwe [89 Zr]Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine ([89 Zr]Zr-DBN)-gemedieerde celradiolabelingmethode ontwikkeld met behulp van 89Zr (t1/2 78,4 uur). Het huidige protocol beschrijft een [89Zr]Zr-DBN-gemedieerde, kant-en-klare, radiolabelende synthon voor directe radiolabeling van verschillende cellen, waaronder mesenchymale stamcellen, afstammingsgeleide cardiopoëtische stamcellen, leverregenererende hepatocyten, witte bloedcellen, melanoomcellen en dendritische cellen. De ontwikkelde methodologie maakt niet-invasieve PET-beeldvorming van celhandel mogelijk tot 7 dagen na toediening zonder de aard of de functie van de radioactief gelabelde cellen aan te tasten. Daarnaast beschrijft dit protocol een stapsgewijze methode voor de radiosynthese van [89 Zr]Zr-DBN, biocompatibele formulering van [89 Zr]Zr-DBN, voorbereiding van cellen voor radiolabeling en ten slotte de radiolabeling van cellen met [89Zr]Zr-DBN, inclusief alle ingewikkelde details die nodig zijn voor de succesvolle radiolabeling van cellen.

Introduction

Stamcel- en chimere antigeenreceptor (CAR) T-celtherapieën winnen aan populariteit en worden actief onderzocht voor de behandeling van verschillende ziekten, zoals myocardiale insufficiëntie1,2, retinale degeneratie 2, maculadegeneratie 2, diabetes 2, myocardinfarct3,4,5 en kankers 6,7,8,9,10. Van de twee plausibele benaderingen van stamceltherapieën kunnen stamcellen ofwel rechtstreeks op de plaats van de ziekte worden geënt om een therapeutische respons te veroorzaken, ofwel veranderingen in de micro-omgeving van de ziekteplaats veroorzaken zonder zich aan de ziekteplaats te hechten om een indirecte therapeutische respons op gang te brengen. Een indirecte therapeutische respons kan veranderingen in de micro-omgeving van de plaats van de ziekte veroorzaken door factoren vrij te geven die de ziekte zouden herstellen of behandelen. Deze benaderingen van stamceltherapieën kunnen worden geëvalueerd door niet-invasieve beeldvorming van radioactief gelabelde stamcellen. Niet-invasieve beeldvorming zou de opname van de radioactief gelabelde cellen op de plaats van de ziekte kunnen correleren met een therapeutische respons om de directe versus indirecte therapeutische respons te ontcijferen.

Daarnaast worden op immuuncellen gebaseerde therapieën ontwikkeld om verschillende vormen van kanker te behandelen met behulp van CAR T-cel 6,7,8,9,10 en dendritische celimmunotherapie 11,12. Mechanistisch gezien worden T-cellen in CAR T-celimmunotherapie 6,7,8,9,10 gemanipuleerd om een epitoop tot expressie te brengen dat zich bindt aan een specifiek antigeen op tumoren die moeten worden behandeld. Deze gemanipuleerde CAR-T-cellen binden zich bij toediening aan het specifieke antigeen dat aanwezig is op de tumorcellen via een epitoop-antigeeninteractie. Na binding ondergaan de gebonden CAR-T-cellen activering en prolifereren ze vervolgens en geven ze cytokines af, die het immuunsysteem van de gastheer signaleren om de tumor aan te vallen die het specifieke antigeen tot expressie brengt. In het geval van dendritische celtherapieën11,12 daarentegen worden dendritische cellen gemanipuleerd om een specifiek kankerantigeen op hun oppervlak te presenteren. Deze gemanipuleerde dendritische cellen herbergen bij toediening de lymfeklieren en binden zich aan de T-cellen in de lymfeklieren. De T-cellen ondergaan, na binding aan de specifieke kankerantigenen op de toegediende dendritische cellen, activering/proliferatie en initiëren een immuunrespons van de gastheer tegen de tumor die dat specifieke antigeen tot expressie brengt. Daarom is de beoordeling van het transport van toegediende CAR-T-cellen naar een tumorplaats 9,10 en homing van dendritische cellen naar de lymfeklieren11,12 mogelijk door radioactief gelabelde CAR-T-cellen en dendritische cellen in beeld te brengen om de werkzaamheid van immunotherapie te bepalen. Bovendien kan niet-invasieve celhandel helpen om het therapeutisch potentieel beter te begrijpen, de directe versus indirecte therapeutische respons te verduidelijken en de therapeutische respons van zowel stamcel- als immuuncelgebaseerde therapieën te voorspellen en te monitoren.

Er zijn verschillende beeldvormingsmodaliteiten voor celhandel onderzocht 3,4,9,10,12, waaronder optische beeldvorming, magnetische resonantiebeeldvorming (MRI), computertomografie met enkelvoudige fotonemissie (SPECT) en positronemissietomografie (PET). Elk van deze technieken heeft zijn eigen voor- en nadelen. Hiervan is PET de meest veelbelovende modaliteit vanwege het kwantitatieve karakter en de hoge gevoeligheid, die essentieel zijn voor de betrouwbare kwantificering van cellen in op beeldvorming gebaseerde celhandel 3,4,9,10.

De positron-emitterende radio-isotoop 89Zr, met een halfwaardetijd van 78,4 uur, is geschikt voor cellabeling. Het maakt PET-beeldvorming van celhandel gedurende meer dan 1 week mogelijk en wordt gemakkelijk geproduceerd door algemeen verkrijgbare, energiezuinige medische cyclotrons 13,14,15,16,17. Bovendien is een op de juiste manier gefunctionaliseerde, p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine (DFO-Bn-NCS) chelator in de handel verkrijgbaar voor de synthese van een 89 Zr-gelabelde, kant-en-klare cellabelsynthon, [89 Zr]Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine, ook bekend als [89Zr]Zr-DBN 18,19,20,21,22,23,24,25. Het principe van [89 Zr]Zr-DBN-gemedieerde cellabeling is gebaseerd op een reactie tussen primaire aminen van celmembraaneiwitten en het isothiocyanaat (NCS)-deel van [89Zr]Zr-DBN om een stabiele covalente thioureumbinding te produceren.

[89Zr] Zr-DBN-gebaseerde cellabeling en beeldvorming zijn gepubliceerd om een verscheidenheid aan verschillende cellen te volgen, waaronder stamcellen 18,23,25, dendritische cellen18, cardiopoëtische stamcellen19, deciduale stromale cellen 20, beenmerg-afgeleide macrofagen 20, perifere bloed mononucleaire cellen 20, Jurkat/CAR T-cellen21, hepatocyten 22,24 en witte bloedcellen 25. Het volgende protocol biedt stapsgewijze methoden voor bereiding en radioactieve labeling van cellen met [89Zr]Zr-DBN en beschrijft wijzigingen die nodig kunnen zijn in het radiolabelingsprotocol voor een specifiek celtype. Voor meer duidelijkheid is de hier gepresenteerde methode van celradiolabeling verdeeld in vier secties. Het eerste deel behandelt de bereiding van [89 Zr]Zr-DBN door 89Zr te cheleren met DFO-Bn-NCS. Het tweede deel beschrijft de bereiding van een biocompatibele formulering van [89Zr]Zr-DBN die gemakkelijk kan worden gebruikt voor radioactieve labeling van cellen. Het derde deel behandelt de stappen die nodig zijn voor de preconditionering van cellen voor radiolabeling. De preconditionering van cellen omvat het wassen van de cellen met eiwitvrije fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS) en HEPES-gebufferde Hanks gebalanceerde zoutoplossing (H-HBSS) om externe eiwitten te verwijderen, die de reactie van [89Zr]Zr-DBN met primaire aminen die aanwezig zijn op de eiwitten van het celoppervlak tijdens radiolabeling kunnen verstoren of concurreren. Het laatste deel bevat de stappen die betrokken zijn bij de daadwerkelijke radiolabeling van de cellen en de analyse van de kwaliteitscontrole.

Protocol

Dendritische cellen en melanoomcellen werden commercieel verkregen18. Hepatocyten werden geïsoleerd uit de lever van varkens na laparoscopische partiële hepatectomie22,24. Stamcellen werden geïsoleerd uit beenmergaspiraten18,19,26. De van vetweefsel afgeleide stamcellen werden verkregen van het Human Cellular Therapy Laboratory, Mayo Clinic Roc…

Representative Results

De representatieve resultaten die in dit manuscript worden gepresenteerd, zijn samengesteld uit de eerdere [89Zr]Zr-DBN-synthese- en celradiolabelingstudies 18,19,22,23,24,25. Kortom, 89Zr kan met succes worden gecomplexeerd met DFO-Bn-NCS in ~30-60 min bij 25-37 °C met behulp van 7,5-15 μg DFO-Bn-NCS …

Discussion

Hieronder volgen kritieke stappen in het protocol die moeten worden geoptimaliseerd voor effectieve radiolabeling van cellen. In protocolstappen 1.2 en 1.3 moet, afhankelijk van het gebruikte volume van [89 Zr]Zr(HPO 4)2 of [89Zr]ZrCl4, een geschikt volume (microliter) base worden gebruikt; 1,0 M K 2 CO 3 oplossing moet worden gebruikt voor de neutralisatie van [89 Zr]Zr(HPO 4)2 en 1,0 M Na 2 CO3 oplossing voor de neutralis…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door NIH 5R21HL127389-02, NIH 4T32HL007111-39, NIH R01HL134664 en DOE DE-SC0008947 subsidies, International Atomic Energy Agency, Wenen, Mayo Clinic Division of Nuclear Medicine, Department of Radiology, en Mayo Clinic Center for Regenerative Medicine, Rochester, MN. Alle figuren zijn gemaakt met behulp van BioRender.com.

Materials

Acetonitrile Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA A996-4
Alpha Minimum Essential Medium Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 12571063
Anion exchange column Macherey-Nagel, Inc., Düren, Germany 731876 Chromafix 30-PS-HCO3 SPE 45 mg cartridge
Conical centrifuge tubes (15 mL) Corning Inc., Glendale, AZ, USA 352096 Falcon 15 mL high-clarity polypropylene (PP) conical centrifuge tubes
Dendritic cells The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA CRL-11904
DFO-Bn-NCS Macrocyclics, Inc., Plano, TX, USA B-705 p-SCN-Bn-Deferoxamine
DMSO Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO 276855
Dose calibrator Mirion Technologies (Capintec), Inc., Florham Park, NJ, USA 5130-3234 CRC -55tR Dose Calibrator 
Dulbecco’s modified Eagle’s medium  The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA 30-2002
Fetal Bovine Serum (FBS) The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA 30-2020
Hanks Balanced Salt solution (HBSS) Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 14025092 For preparation of H-HBSS
Hydrochloric Acid (trace metal basis grade) Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA A508P212
Melanoma cells The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA CRL-6475
Methanol Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO 34860
Microcentrifuge tube Eppendorf, Hamburg, Germany 30108442 Protein LoBind microcentrifuge tube
Murine GM-CSF R&D Systems, Inc., Minneapolis, MN USA 415-ML-010
Penicillin/Streptomycin Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 15140-122
Phosphate Buffered Saline without Ca2+ and Mg2+ Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 10010023 For washing cells
Saline Covidien LLC, Mansfield, MA, USA 1020 0.9% Sterile Saline Solution
Shaker  Eppendorf, Hamburg, Germany T1317 Thermomixer
Silica gel-rad-TLC paper sheet  Agilent Technologies Inc., Santa Clara, CA, USA SGI0001 iTLC-SG

Referencias

  1. Bhawnani, N., et al. Effectiveness of stem cell therapies in improving clinical outcomes in patients with heart failure. Cureus. 13 (8), e17236 (2021).
  2. Zakrzewski, W., Dobrzynski, M., Szymonowicz, M., Rybak, Z. Stem cells: past, present, and future. Stem Cell Research & Therapy. 10 (1), 68 (2019).
  3. Bukhari, A. B., Dutta, S., De, A. Image guidance in stem cell therapeutics: unfolding the blindfold. Current Drug Targets. 16 (6), 658-671 (2015).
  4. Momeni, A., Neelamegham, S., Parashurama, N. Current challenges for the targeted delivery and molecular imaging of stem cells in animal models. Bioengineered. 8 (4), 316-324 (2017).
  5. Gnecchi, M., Zhang, Z., Ni, A., Dzau, V. J. Paracrine mechanisms in adult stem cell signaling and therapy. Circulation Research. 103 (11), 1204-1219 (2008).
  6. D’Aloia, M. M., Zizzari, I. G., Sacchetti, B., Pierelli, L., Alimandi, M. CAR-T cells: the long and winding road to solid tumors. Cell Death & Disease. 9 (3), 282 (2018).
  7. Zhang, Q., et al. CAR-T cell therapy in cancer: tribulations and road ahead. Journal of Immunology Research. 2020, 1924379 (2020).
  8. Sterner, R. C., Sterner, R. M. CAR-T cell therapy: current limitations and potential strategies. Blood Cancer Journal. 11 (4), 69 (2021).
  9. Shao, F., et al. Radionuclide-based molecular imaging allows CAR-T cellular visualization and therapeutic monitoring. Theranostics. 11 (14), 6800-6817 (2021).
  10. Sakemura, R., Can, I., Siegler, E. L., Kenderian, S. S. In vivo CART cell imaging: Paving the way for success in CART cell therapy. Molecular Therapy Oncolytics. 20, 625-633 (2021).
  11. Wang, Y., et al. Dendritic cell biology and its role in tumor immunotherapy. Journal of Hematology & Oncology. 13 (1), 107 (2020).
  12. Bulte, J. W. M., Shakeri-Zadeh, A. In vivo MRI tracking of tumor vaccination and antigen presentation by dendritic cells. Molecular Imaging and Biology. 24 (2), 198-207 (2022).
  13. Holland, J. P., Sheh, Y., Lewis, J. S. Standardized methods for the production of high specific-activity zirconium-89. Nuclear Medicine and Biology. 36 (7), 729-739 (2009).
  14. Larenkov, A., et al. Preparation of zirconium-89 solutions for radiopharmaceutical purposes: interrelation between formulation, radiochemical purity, stability and biodistribution. Molecules. 24 (8), 1534 (2019).
  15. Pandey, M. K., et al. A new solid target design for the production of 89Zr and radiosynthesis of high molar activity [89Zr]Zr-DBN. American Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 12 (1), 15-24 (2022).
  16. Pandey, M. K., et al. Improved production and processing of 89Zr using a solution target. Nuclear Medicine and Biology. 43 (1), 97-100 (2016).
  17. Pandey, M. K., Engelbrecht, H. P., Byrne, J. P., Packard, A. B., DeGrado, T. R. Production of 89Zr via the 89Y(p,n)89Zr reaction in aqueous solution: effect of solution composition on in-target chemistry. Nuclear Medicine and Biology. 41 (4), 309-316 (2014).
  18. Bansal, A., et al. Novel 89Zr cell labeling approach for PET-based cell trafficking studies. EJNMMI Research. 5, 19 (2015).
  19. Bansal, A., et al. 89Zr]Zr-DBN labeled cardiopoietic stem cells proficient for heart failure. Nuclear Medicine and Biology. 90-91, 23-30 (2020).
  20. Friberger, I., et al. Optimisation of the synthesis and cell labelling conditions for [89Zr]Zr-oxine and [89Zr]Zr-DFO-NCS: a direct in vitro comparison in cell types with distinct therapeutic applications. Molecular Imaging and Biology. 23 (6), 952-962 (2021).
  21. Lee, S. H., et al. Feasibility of real-time in vivo 89Zr-DFO-labeled CAR T-cell trafficking using PET imaging. PLoS One. 15 (1), e0223814 (2020).
  22. Nicolas, C. T., et al. Hepatocyte spheroids as an alternative to single cells for transplantation after ex vivo gene therapy in mice and pig models. Surgery. 164 (3), 473-481 (2018).
  23. Yang, B., et al. Tracking and therapeutic value of human adipose tissue-derived mesenchymal stem cell transplantation in reducing venous neointimal hyperplasia associated with arteriovenous fistula. Radiology. 279 (2), 513-522 (2016).
  24. Nicolas, C. T., et al. Ex vivo cell therapy by ectopic hepatocyte transplantation treats the porcine tyrosinemia model of acute liver failure. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 18, 738-750 (2020).
  25. Bansal, A., Sharma, S., Klasen, B., Rosch, F., Pandey, M. K. Evaluation of different 89Zr-labeled synthons for direct labeling and tracking of white blood cells and stem cells in healthy athymic mice. Scientific Reports. 12 (1), 15646 (2022).
  26. Behfar, A., et al. Guided cardiopoiesis enhances therapeutic benefit of bone marrow human mesenchymal stem cells in chronic myocardial infarction. Journal of the American College of Cardiology. 56 (9), 721-734 (2010).
  27. Charoenphun, P., et al. 89Zr]oxinate4 for long-term in vivo cell tracking by positron emission tomography. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 42 (2), 278-287 (2015).
  28. Sato, N., et al. In vivo tracking of adoptively transferred natural killer cells in rhesus macaques using 89zirconium-oxine cell labeling and PET imaging. Clinical Cancer Research. 26 (11), 2573-2581 (2020).
  29. Volpe, A., Pillarsetty, N. V. K., Lewis, J. S., Ponomarev, V. Applications of nuclear-based imaging in gene and cell therapy: probe considerations. Molecular Therapy Oncolytics. 20, 447-458 (2021).
  30. Fogli, L. K., et al. Challenges and next steps in the advancement of immunotherapy: summary of the 2018 and 2020 National Cancer Institute workshops on cell-based immunotherapy for solid tumors. Journal for Immunotherapy of Cancer. 9 (7), e003048 (2021).
  31. Li, X., Hacker, M. Molecular imaging in stem cell-based therapies of cardiac diseases. Advanced Drug Delivery Reviews. 120, 71-88 (2017).
  32. Puges, M., et al. Retrospective study comparing WBC scan and 18F-FDG PET/CT in patients with suspected prosthetic vascular graft infection. European Journal of Vascular and Endovascular Surgery. 57 (6), 876-884 (2019).
  33. Butterfield, L. H. Dendritic cells in cancer immunotherapy clinical trials: are we making progress. Frontiers in Immunology. 4, 454 (2013).
  34. de Vries, I. J. M., et al. Magnetic resonance tracking of dendritic cells in melanoma patients for monitoring of cellular therapy. Nature Biotechnology. 23 (11), 1407-1413 (2005).
  35. Gosmann, D., et al. Promise and challenges of clinical non-invasive T-cell tracking in the era of cancer immunotherapy. EJNMMI Research. 12 (1), 5 (2022).
check_url/es/64117?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Bansal, A., DeGrado, T. R., Pandey, M. K. Positron Emission Tomography Imaging of Cell Trafficking: A Method of Cell Radiolabeling. J. Vis. Exp. (200), e64117, doi:10.3791/64117 (2023).

View Video