Summary

Un modèle murin de In utero Transplantation

Published: January 27, 2011
doi:

Summary

Le modèle murin de<em> In utero</em> La transplantation est un outil polyvalent qui peut être utilisée pour étudier les applications cliniques potentielles de la transplantation de cellules souches et la thérapie génique chez le fœtus. Dans ce protocole, nous présentons une approche générale de l'exécution de cette technique de

Abstract

La transplantation de cellules souches et les virus in utero a un énorme potentiel pour le traitement des affections congénitales chez le fœtus humain. Par exemple, la transplantation in utero (IUT) de cellules souches hématopoïétiques a été utilisé avec succès pour traiter les patients souffrant d'immunodéficience 1,2. Combinés dans plusieurs autres conditions, cependant, l'IUT a été tentée sans succès. 3 Compte tenu de ces résultats mitigés, la disponibilité d'une efficacité non-humain modèle pour étudier les séquelles biologiques de la transplantation de cellules souches et la thérapie génique est essentielle pour faire progresser ce domaine. Nous et d'autres ont utilisé le modèle murin de l'IUT d'étudier les facteurs affectant la prise de greffe réussie d'in utero transplanté des cellules souches hématopoïétiques dans les deux souris de type sauvage 4-7 et ceux avec les maladies génétiques. 8,9 L'environnement fœtal offre également des avantages considérables pour la succès de la thérapie génique in utero. Par exemple, la livraison de 10 adénoviraux, adéno-associés virale 10, 11 rétroviraux et les vecteurs lentiviraux 12,13 dans le foetus a abouti à la transduction de multiples organes à distance du site d'injection avec l'expression des gènes à long terme. In utero la thérapie génique peut donc être considérée comme une stratégie de traitement possible pour des maladies monogéniques comme la dystrophie musculaire ou la fibrose kystique. Un autre avantage potentiel de l'IUT est la capacité à induire une tolérance immunitaire à un antigène spécifique. Comme on le voit chez des souris atteintes d'hémophilie, l'introduction du facteur IX au début de résultats de développement dans la tolérance à cette protéine. 14

En plus de son utilisation dans les enquêtes sur d'éventuelles thérapies humaines, le modèle murin de l'IUT peut être un outil puissant pour étudier des questions fondamentales en biologie cellulaire du développement et de la tige. Par exemple, on peut offrir diverses petites molécules d'induire ou d'inhiber l'expression génique spécifique à définir les étapes de gestation et de manipuler les voies de développement. L'impact de ces modifications peut être évalué à différents points de temps après la transplantation initiale. Par ailleurs, on peut transplanter pluripotentes ou de la lignée des cellules progénitrices spécifiques dans l'environnement du fœtus à l'étude différenciation des cellules souches dans un milieu d'accueil non irradiés et imperturbable.

Le modèle de souris de l'IUT a déjà fourni des indications nombreuses dans les domaines de l'immunologie et la biologie cellulaire du développement et de la tige. Dans ce protocole basé sur la vidéo, nous décrivons une approche étape par étape pour effectuer IUT de fœtus de souris et un aperçu des étapes critiques et les pièges potentiels de cette technique.

Protocol

1. Préparation des pipettes d'injection Calibrer l'extracteur pipette tels que la séparation de la pipette en verre se produit dans les 15 secondes (voir les instructions du fabricant concernant l'étalonnage). La pipette aura un cône où il se sépare. Coupez l'extrémité de la pipette de telle sorte que la distance entre le début du cône à l'extrémité de la pipette est 1.04cm à 1.05cm. La longueur de la pipette est inversement proportionnel au calibre de l'orifice…

Discussion

Plus il ya 50 ans, Billingham, Brent et Medawar utilisé dans la transplantation in utero chez la souris pour induire une tolérance immunitaire aux protéines étrangères. 16 Depuis ce temps, plusieurs variantes de cette technique ont été utilisés pour répondre aux questions en immunologie et en biologie des cellules souches.

Le protocole détaillé ici est l'une des méthodes les plus accessibles pour les IUT. Le foie fœtal offre une cible facile à v…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous tenons à remercier nos sources de financement: Le California Institute for Regenerative Medicine Clinical Fellow Formation Grant (AN), la National Science Foundation (MW), Irène Perstein Award (MTC), l'American College of Surgeons (MTC), l'American Pediatric Association chirurgical ( MTC), et le Mars of Dimes (MTC).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Pipettes   Kimble 71900-100  
Pipette puller   Sutter Instruments Company Model P-30  
Microinjector   Narishige IM-300  
Pipette sharpener   Sutter Instruments Company Model BV-10  

References

  1. Flake, A. W. Treatment of X-linked severe combined immunodeficiency by in utero transplantation of paternal bone marrow. N Engl J Med. 335, 1806-1810 (1996).
  2. Wengler, G. S. In-utero transplantation of parental CD34 haematopoietic progenitor cells in a patient with X-linked severe combined immunodeficiency (SCIDXI). Lancet. 348, 1484-1487 (1996).
  3. Flake, A. W., Zanjani, E. D. in utero hematopoietic stem cell transplantation: ontogenic opportunities and biologic barriers. Blood. 94, 2179-2191 (1999).
  4. Merianos, D. J. Maternal alloantibodies induce a postnatal immune response that limits engraftment following in utero hematopoietic cell transplantation in mice. J Clin Invest. 119, 2590-2600 (2009).
  5. Peranteau, W. H., Endo, M., Adibe, O. O., Flake, A. W. Evidence for an immune barrier after in utero hematopoietic-cell transplantation. Blood. 109, 1331-1333 (2007).
  6. Kim, H. B., Shaaban, A. F., Yang, E. Y., Liechty, K. W., Flake, A. W. Microchimerism and tolerance after in utero bone marrow transplantation in mice. J Surg Res. 77, 1-5 (1998).
  7. Durkin, E. T., Jones, K. A., Rajesh, D., Shaaban, A. F. Early chimerism threshold predicts sustained engraftment and NK-cell tolerance in prenatal allogeneic chimeras. Blood. 112, 5245-5253 (2008).
  8. Mackenzie, T. C., Shaaban, A. F., Radu, A., Flake, A. W. Engraftment of bone marrow and fetal liver cells after in utero transplantation in MDX mice. J Pediatr Surg. 37, 1058-1064 (2002).
  9. Hayashi, S. Mixed chimerism following in utero hematopoietic stem cell transplantation in murine models of hemoglobinopathy. Exp Hematol. 31, 176-184 (2003).
  10. Bouchard, S. Long-term transgene expression in cardiac and skeletal muscle following fetal administration of adenoviral or adeno-associated viral vectors in mice. J Gene Med. 5, 941-950 (2003).
  11. Meza, N. W. Rescue of pyruvate kinase deficiency in mice by gene therapy using the human isoenzyme. Mol Ther. 17, 2000-2009 (2009).
  12. MacKenzie, T. C. Efficient transduction of liver and muscle after in utero injection of lentiviral vectors with different pseudotypes. Mol Ther. 6, 349-358 (2002).
  13. MacKenzie, T. C. Transduction of satellite cells after prenatal intramuscular administration of lentiviral vectors. J Gene Med. 7, 50-58 (2005).
  14. Sabatino, D. E. Persistent expression of hF.IX After tolerance induction by in utero or neonatal administration of AAV-1-F.IX in hemophilia B mice. Mol Ther. 15, 1677-1685 (2007).
  15. Mellor, A. L., Munn, D. H. Immunology at the maternal-fetal interface: lessons for T cell tolerance and suppression. Annu Rev Immunol. 18, 367-391 (2000).
  16. Billingham, R. E., Brent, L., Medawar, P. B. Actively acquired tolerance of foreign cells. Nature. 172, 603-606 (1953).
  17. Endo, M. Gene transfer to ocular stem cells by early gestational intraamniotic injection of lentiviral vector. Mol Ther. 15, 579-587 (2007).
  18. Waddington, S. N. Long-term transgene expression by administration of a lentivirus-based vector to the fetal circulation of immuno-competent mice. Gene Ther. 10, 1234-1240 (2003).
  19. Schachtner, S., Buck, C., Bergelson, J., Baldwin, H. Temporally regulated expression patterns following in utero adenovirus-mediated gene transfer. Gene Ther. 6, 1249-1257 (1999).
check_url/fr/2303?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Nijagal, A., Le, T., Wegorzewska, M., MacKenzie, T. C. A Mouse Model of in Utero Transplantation. J. Vis. Exp. (47), e2303, doi:10.3791/2303 (2011).

View Video