Summary

細菌機能ネットワークとPathwaysでのマッピング<em>大腸菌</em>合成遺伝子配列を用いて

Published: November 12, 2012
doi:

Summary

体系的、大規模合成遺伝子(遺伝子遺伝子またはエピスタシス)対話画面が遺伝的冗長性と経路のクロストークを探索するために使用することができます。ここで、我々は上位性の関係を解明するとの遺伝的相互作用ネットワークを探索するために開発されeSGAと呼ばれるハイスループット定量合成遺伝子配列のスクリーニング技術を記述<em>大腸菌</em>。

Abstract

表現型は、物理(蛋白質-蛋白質など )と機能( 例えば遺伝子遺伝子または遺伝的)相互作用(GI)1一連の複雑によって決定されます。物理的な相互作用が細菌のタンパク質が複合体として関連付けられているかを示すことができますが、それらは必ずしも経路レベルの機能relationships1を明らかにしない。 2削除または不活性化された遺伝子をもつ二重変異株の増殖を測定し、対応する単一の変異体と比較されるGIの画面は、遺伝子座の間の上位性の依存性を照らすそれゆえ小説機能的関係2を照会し、発見するための手段を提供することができる。大規模GIマップは酵母3月7日のような真核生物のために報告したが、GIの情報は、細菌ゲノムの機能アノテーションを妨げる原核8日のための疎のままされています。この目的のために、我々と他の人は、ハイスループット定量的な細菌性胃腸スクリーニング方法(9)(10)を開発ました</>(商標)。

ここでは、定量的なEを実行するために必要な主要な手順を提示全身的に生成し、コロニー配列形式の二重変異体の多数の適合度を測定するために自然な細菌接合と相同組換えを用いて大腸菌ゲノムスケールの9の合成遺伝子アレイ(eSGA)スクリーニング手順は、 簡単に述べると、ロボットを転送するために使用され、共役を介して、クロラムフェニコール(Cm) – 著しいF-レシピエント株 – (組換えの高周波)エンジニアリングHFRから変異アレルをマーク 'ドナー株'カナマイシン(菅)の規則正しい配列にします。一般的に、我々はに機能喪失型の非必須遺伝子欠失をもつ単一突然変異( '慶應義塾'コレクション11 など )と必須遺伝子hypomorphic変異(還元タンパク質の発現、安定性、または活動9、12、13を付与する 、すなわち対立遺伝子)を使用非必須と必須遺伝子の機能アソシエーション、resを問い合わせるpectively。相同組換えによる共役とその後の遺伝子交換を媒介した後、得られた二重変異体は、両方の抗生物質を含有する固体培地上で選択されています。伸長した後、プレートをデジタル画像化されるとコロニーサイズを定量的に社内自動画像処理システム14を用い採点されます。二重変異体の成長率はどちら有意に良好または9予想以上に悪化しているときにGISは明らかにされています。悪化(または負)GISは、多くの場合、同じ基本的なプロセス2に当たる代償経路からの遺伝子のペアにおける機能喪失型変異との間に生じる。ここでは、単一の遺伝子の損失は、単一の変異が生存可能であるように、バッファリングされます。しかし、両経路の損失は有害であると合成致死性または病気( すなわち低成長)が返されます。逆に、緩和(または正)の相互作用と同じ経路またはタンパク質複合体2の遺伝子の間に発生する可能性がありますいずれかの遺伝子の欠失だけでは、多くの場合、追加摂動はさらに、活性を低下させるため、成長しないような経路または複合体の正常な機能を混乱させるのに十分である。全体的に、体系的にGIのネットワークを識別し、分析することは、他の手法では見逃さ経路レベルの情報が9推測することができ、そこから多数の遺伝子間の機能的関係の公平、グローバルマップを提供することができます。

Protocol

1。 15遺伝子改変技術によりHFRカヴァッリドナー変異株を構築し、16 eSGAドナー汚れを構築するための手順を以下に説明します。簡単に言えば、我々は対象とλを使う-赤は非必須遺伝子の欠失変異体(1.1項)またはHUPとして使用されている必須遺伝子hypomorphic変異ドナー株(セクション1.2)を作成し、PCRによって生成された増幅選択可能なDNAマ?…

Representative Results

GIs reveal functional relationships between genes. Similarly, since genes in the same pathway display similar GI patterns and the GI profile similarity represents the congruency of phenotypes, we can group functionally related genes into pathways by clustering their GI profiles. Integrating GI and GI correlation networks with physical interaction information or other association data, such as genomic context (GC) relationships can also reveal the organization of higher-order functional modules that define core bio…

Discussion

我々は、GIを問い合わせることによって経路レベルで細菌の遺伝子の機能を調べるためにロボットeSGAスクリーニングを使用するための段階的なプロトコルについて概説しました。このアプローチは、 大腸菌内の個々の遺伝子だけでなく、全体のシステム生物学を研究するために使用することができます大腸菌 。慎重に実験手順を実行すると、すべての適切なコントロールを含?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、ゲノムカナダ、オンタリオ州ゲノミクス研究所、保健研究助成金のカナダの協会からJGとAE社への資金によってサポートされていましたヴァニエ·カナダ大学院奨学金の受賞者です。

Materials

        I. Antibiotics 2 36471
Remove
Chloramphenicol   Bioshop #CLR201   3 36472
Remove
Kanamycin     #KAN201   4 36480
Remove
Ampicillin     # AMP201   5 36473
Remove
        2. Luria-Bertani medium 6 36474
Remove
LB powder   Bioshop #LBL405   7 36478
Remove
Agar   Bioshop #AGR003   8 36481
Remove
        3. Bacterial Strains and Plasmids 9 36475
Remove
Hfr Cavalli strain λred system (JL238)   Babu et al.14.     10 36476
Remove
pKD3   E. coli Genetic Stock Centre, Yale     11 36477
Remove
Keio E. coli F- recipient collection   National BioResource Project (NBRP) of Japan11     12 36479
Remove
Hypomorphic E. coli F- SPA-tag strains   Open biosystems; Babu et al.14     13 36491
Remove
        4. Primers 14 36486
Remove
pKD3-based desalted constant primers       F1: 5′-GGCTGACATGGGAATTAGC-3′
R1: 5′-AGATTGCAGCATTACACGTCTT-3′
15 36482
Remove
Desalted custom primers       Cm-R: 5′-TTATACGCAAGGCGACAAGG-3′
Cm-F: 5′- GATCTTCCGTCACAGGTAGG-3′
16 36483
Remove
Desalted custom primers       F2 and R2: 20 nt constant regions based on pKD3 sequence and 45 nt custom homology regions
F2 constant region:
5′-CATATGAATATCCTCCTTA-3′
R2 constant region:
5′-TGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC-3’S1 and S2: 27 nt constant regions for priming the amplification of the SPA-Cm cassette and 45 nt custom homology regions
S1 constant region:
5’AGCTGGAGGATCCATGGAAAAGAGAAG -3′
S2 constant region:
5′- GGCCCCATATGAATATCCTCCTTAGTT -3′

KOCO-F and KOCO-C: 20 nt primers 200 bp away from the non-essential gene deletion site or the essential
gene SPA-tag insertion site
17 36484
Remove
        5. PCR and Electrophoresis Reagents 18 36485
Remove
Taq DNA polymerase   Fermentas # EP0281   19 36487
Remove
10X PCR buffer   Fermentas # EP0281   20 36488
Remove
10 mM dNTPs   Fermentas # EP0281   21 36489
Remove
25 mM MgCl2   Fermentas # EP0281   22 36490
Remove
Agarose   Bioshop # AGA002   23 36492
Remove
Loading dye   NEB #B7021S   24 36493
Remove
Ethidium bromide   Bioshop # ETB444   25 36497
Remove
10X TBE buffer   Bioshop # ETB444.10   26 36494
Remove
Tris Base   Bioshop # TRS001   27 36495
Remove
Boric acid   Sigma # T1503-1KG   28 36496
Remove
0.5 M EDTA (pH 8.0)   Sigma # B6768-500G   29 36498
Remove
DNA ladder   NEB #N3232L   30 36499
Remove
        6. DNA isolation and Clean-up Kits 31 36500
Remove
Genomic DNA isolation and purification kit   Promega #A1120   32 36501
Remove
Plasmid Midi kit   Qiagen # 12143   33 36502
Remove
QIAquick PCR purification kit   Qiagen #28104   34 36512
Remove
        7. Equipment for PCR, Transformation and Replica-pinning 35 36503
Remove
Thermal cycler   BioRad, iCycler     36 36504
Remove
Agarose gel electrophoresis   BioRad     37 36505
Remove
Electroporator   Bio-Rad GenePulser II     38 36506
Remove
0.2 cm electroporation cuvette   Bio-Rad     39 36507
Remove
42 °C water bath shaker   Innova 3100     40 36508
Remove
Beckman Coulter TJ-25 centrifuge   Beckman Coulter     41 36519
Remove
32 °C shaker   New Brunswick Scientific, USA     42 36509
Remove
32 °C plate incubator   Fisher Scientific     43 36510
Remove
RoToR-HDA benchtop robot   Singer Instruments     44 36511
Remove
96, 384 and 1,536 pin density pads   Singer Instruments     45 36513
Remove
96 or 384 long pins   Singer Instruments     46 36514
Remove
        8. Imaging Equipments 47 36515
Remove
Camera stand   Kaiser     48 36516
Remove
Digital camera, 10 megapixel   Any Vendor     49 36517
Remove
Light boxes, Testrite 16″ x 24″ units   Testrite     50 36527
Remove
        9. Pads or Plates Recycling 51 36518
Remove
10% bleach   Any Vendor     52 36520
Remove
70% ethanol   Any Vendor     53 36521
Remove
Sterile distilled water   Any Vendor     54 36522
Remove
Flow hood   Any Vendor     55 36523
Remove
Ultraviolet lamp   Any Vendor     56 36524
Remove
        10. Labware 57 36525
Remove
50 ml polypropylene tubes   Any Vendor     58 36526
Remove
1.5 ml micro-centrifuge tubes   Any Vendor     59 36528
Remove
250 ml conical flaks   VWR # 29140-045   60 36529
Remove
15 ml sterile culture tubes   Thermo Scientific # 366052   61 36530
Remove
Cryogenic vials   VWR # 479-3221   62 36531
Remove
Rectangular Plates   Singer Instruments     63 36532
Remove
96-well and 384-well microtitre plates   Singer Instruments Nunc   64 36533
Remove
Plate roller for sealing multi-well   Sigma #R1275   65 36535
Remove
plates   ABgene # AB-0580   66 36534
Remove
Adhesive plate seals   Fisher Scientific # 13-990-14   67 36537
Remove
-80 °C freezer   Any Vendor     68 36536
Remove

References

  1. Bandyopadhyay, S., Kelley, R., Krogan, N. J., Ideker, T. Functional maps of protein complexes from quantitative genetic interaction data. PLoS Comput. Biol. 4, e1000065 (2008).
  2. Costanzo, M., Baryshnikova, A., Myers, C. L., Andrews, B., Boone, C. Charting the genetic interaction map of a cell. Curr. Opin. Biotechnol. 22, 66-74 (2011).
  3. Costanzo, M., et al. The genetic landscape of a cell. Science. 327, 425-4231 (2010).
  4. Fiedler, D., et al. Functional organization of the S. cerevisiae phosphorylation network. Cell. 136, 952-963 (2009).
  5. Roguev, A., et al. Conservation and rewiring of functional modules revealed by an epistasis map in fission yeast. Science. 322, 405-4010 (2008).
  6. Schuldiner, M., et al. Exploration of the function and organization of the yeast early secretory pathway through an epistatic miniarray profile. Cell. 123, 507-519 (2005).
  7. Wilmes, G. M., et al. A genetic interaction map of RNA-processing factors reveals links between Sem1/Dss1-containing complexes and mRNA export and splicing. Mol. Cell. 32, 735-746 (2008).
  8. Babu, M., et al. Systems-level approaches for identifying and analyzing genetic interaction networks in Escherichia coli and extensions to other prokaryotes. Mol. Biosyst. 12, 1439-1455 (2009).
  9. Butland, G., et al. coli synthetic genetic array analysis. Nat. Methods. 5, 789-7895 (2008).
  10. Typas, A., et al. Regulation of peptidoglycan synthesis by outer-membrane proteins. Cell. 143, 1097-10109 (2010).
  11. Baba, T., et al. Construction of Escherichia coli K-12 in-frame, single-gene knockout mutants: the Keio collection. Mol. Syst. Biol. 2, 2006-200008 (2006).
  12. Babu, M., et al. Genetic interaction maps in Escherichia coli reveal functional crosstalk among cell envelope biogenesis pathways. PLoS Genet. 7, e1002377 (2011).
  13. Nichols, R. J., et al. Phenotypic landscape of a bacterial cell. Cell. 144, 143-156 (2011).
  14. Babu, M., Gagarinova, A., Greenblatt, J., Emili, A. Array-based synthetic genetic screens to map bacterial pathways and functional networks in Escherichia coli. Methods Mol Biol. 765, 125-153 (2011).
  15. Datsenko, K. A., Wanner, B. L. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 6640-665 (2000).
  16. Yu, D., et al. An efficient recombination system for chromosome engineering in Escherichia coli. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 5978-5983 (2000).
  17. Typas, A., et al. quantitative analyses of genetic interactions in. E. coli. Nat. Methods. 5, 781-787 (2008).
  18. Zeghouf, M., et al. Sequential Peptide Affinity (SPA) system for the identification of mammalian and bacterial protein complexes. J. Proteome Res. 3, 463-468 (2004).
  19. Davierwala, A. P., et al. . , 1147-1152 (2005).
  20. Breslow, D. K., et al. A comprehensive strategy enabling high-resolution functional analysis of the yeast genome. Nat. Methods. 5, 711-718 (2008).
  21. Babu, M., et al. Sequential peptide affinity purification system for the systematic isolation and identification of protein complexes from Escherichia coli. Methods Mol. Biol. 564, 373-400 (2009).
  22. Butland, G., et al. Interaction network containing conserved and essential protein complexes in Escherichia coli. Nature. 433, 531-537 (2005).
  23. Hu, P., Janga, S. C., Babu, M., Diaz-Mejia, J. J., Butland, G., et al. Global functional atlas of Escherichia coli encompassing previously uncharacterized proteins. PLoS Biol. 7, (2009).
  24. Anderson, R. P., Roth, J. R. Tandem genetic duplications in phage and bacteria. Annu. Rev. Microbiol. 31, 473-505 (1977).
  25. Boone, C., Bussey, H., Andrews, B. J. Exploring genetic interactions and networks with yeast. Nat. Rev. Genet. 8, 437-449 (2007).
  26. Collins, S. R., et al. Functional dissection of protein complexes involved in yeast chromosome biology using a genetic interaction map. Nature. 446, 806-8010 (2007).
  27. Le Meur, N., Gentleman, R. Modeling synthetic lethality. Genome Biol. 9, R135 (2008).
  28. Tong, A. H., et al. Systematic genetic analysis with ordered arrays of yeast deletion mutants. Science. 294, 2364-2368 (2001).
  29. Tong, A. H., et al. Global mapping of the yeast genetic interaction network. Science. 303, 808-813 (2004).
  30. Wong, S. L., et al. Combining biological networks to predict genetic interactions. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 15682-15687 (2004).
  31. van Opijnen, T., Bodi, K. L., Camilli, A. Tn-seq: high-throughput parallel sequencing for fitness and genetic interaction studies in microorganisms. Nat. Methods. 6, 767-772 (2009).
  32. Gagarinova, A., Emili, A. Genome-scale genetic manipulation methods for exploring bacterial molecular biology. Mol. Biosyst. 8, 1626-1638 (2012).
  33. Dewey, C. N., et al. Positional orthology: putting genomic evolutionary relationships into context. Brief Bioinform. 12, 401-412 (2011).
  34. St Onge, R. P., et al. Systematic pathway analysis using high-resolution fitness profiling of combinatorial gene deletions. Nat. Genet. 39, 199-206 (2007).
check_url/fr/4056?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Gagarinova, A., Babu, M., Greenblatt, J., Emili, A. Mapping Bacterial Functional Networks and Pathways in Escherichia Coli using Synthetic Genetic Arrays. J. Vis. Exp. (69), e4056, doi:10.3791/4056 (2012).

View Video