Summary

Mätning av livslängden i<em> Drosophila melanogaster</em

Published: January 07, 2013
doi:

Summary

Drosophila melanogaster är en kraftfull modell organism för att utforska den molekylära grunden för livslängd reglering. Detta protokoll kommer att diskutera de olika stegen i generering av en reproducerbar, populationsbaserade mätning av livslängden samt potentiella fallgropar och hur man undviker dem.

Abstract

Åldrande är ett fenomen som resulterar i jämn fysiologisk försämring nästan alla organismer som har undersökts, vilket leder till minskad fysisk prestationsförmåga och ökad risk för sjukdom. Individuell åldrande är uppenbar på populationsnivå som en ökning av åldersberoende dödlighet, som ofta mäts i laboratoriet genom att observera livslängd i stora kohorter av åldersmatchade individer. Experiment som syftar till att kvantifiera i vilken utsträckning genetisk eller miljömässig manipulationer påverkar livslängden i enkla modellorganismer har varit anmärkningsvärt framgångsrika för att förstå de aspekter av åldrandet som är konserverade mellan taxa och inspirerande nya strategier för att utöka livslängden och förhindra ålder-associerad sjukdom hos däggdjur .

Ättika flyga, Drosophila melanogaster, är en attraktiv modell organism för att studera mekanismerna för åldrande på grund av dess relativt korta livslängd, bekväm djurhållning, och enkel genetik.Men demografiska mått på åldrande, inklusive åldersspecifik överlevnad och dödlighet, är utomordentligt känsliga för även små variationer i experimentell design och miljö, och upprätthållandet av strikta laboratoriepraxis så länge åldrande experiment krävs. Dessa överväganden tillsammans med behovet att öva noggrann kontroll av genetisk bakgrund, är avgörande för att generera robusta mätningar. Det finns faktiskt många anmärkningsvärda kontroverser kring slutledning från livslängd experiment i jäst, maskar, flugor och möss som har spårats till miljö-eller genetiska artefakter 1-4. I detta protokoll beskriver vi en rad förfaranden som har optimerats under många år för att mäta livslängd i Drosophila med laboratorium flaskor. Vi beskriver också användningen av dLife programvara som har utvecklats av vårt laboratorium och finns för nedladdning ( http://sitemaker.umich.edu/pletcherlab / mjukvara). dLife accelererar genomströmningen och främjar god praxis genom att införliva optimal experimentell design, vilket förenklar flyga hantering och insamling av data, och standardisera dataanalys. Vi kommer också att diskutera de många potentiella fallgropar i utformningen, insamling och tolkning av livslängd data och vi tillhandahåller åtgärder för att undvika dessa faror.

Protocol

Vi rekommenderar att lagra experimentella livsmedel, jäst pasta och druva agarplattor som visas i protokollet vid 4 ° C och använda dem inom 1-2 månader, så länge mögel och torrhet inte har ställt in standard miljöförhållanden för både larver och vuxna steg inbegripa bibehållande av flugor i en inkubator vid 25 ° C med en 12:12 timmars ljus mörkercykel och 60% relativ fuktighet. 1. Beredning av experimentell mat För larver tillväxt använder vi en modifierad Calt…

Representative Results

Ett enklare system av protokollet presenteras i figur 1, där viktiga steg beskrivs. Synkroniseringen del av protokollet kan användas för olika analyser som kräver åldersmatchade vuxna flugor. Typiska survivorship kurvorna för vildtyp flugor visas i figur 2a, med användning av programvaran dLife experimentet hantering (figur 2b, c). Vuxna hanar lever oftast kortare, med båda populationerna uppnå en genomsnittlig och median livslängd…

Discussion

Protokollet som presenteras här beskriver ett förfarande för framställning av reproducerbara mätningar av vuxen livslängd i Drosophila som är anpassningsbart för bedömning av genetiska, farmakologiska och miljömässiga åtgärder. Avgörande aspekterna av protokollet inkluderar noggrant kontrollera larver utvecklingsmiljö, minimera vuxna stress och minimera partiskhet över experimentella grupper och kontroller. Vi presenterar också användningen av dLife livslängd experimentet programvara. Genom a…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av medel från Ellison Medical Foundation (SDP, http://www.ellisonfoundation.org/index.jsp ), NIH K01AG031917 (NJL, http://www.nih.gov/ ), NIH 5T32GM007315-35 (JR) och NIH R01AG030593 (SDP). Detta arbete utnyttjade resurserna i Drosophila Aging Core (DAC) i Nathan Shock Center of Excellence i biologi av åldrandet finansieras av National Institute of Aging P30-AG-013.283 ( http://www.nih.gov/ ). Författarna vill tacka Pletcher Laboratoriet för hjälp diskussioner och särskilt Brian Chung för kritisk läsning av manuskriptet. Vi vill tacka för Nick Asher och Kathryn Borowicz för hjälp med datainsamling.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Active Dry Yeast Fleishmann’s Yeast 2192  
Grape Agar Powder Premix Genesee Scientific 47-102  
Large Embryo Collection Cages Genesee Scientific 59-101  
Large Replacement End Caps Genesee Scientific 59-103  
6 oz Square Bottom Bottles, polypropylene Genesee Scientific 32-130  
Flugs Closures for Stock Bottles Genesee Scientific 49-100  
Drosophila Vials, Wide, Polystrene Genesee Scientific 32-117  
Flugs Closures for Wide Vials Genesee Scientific 49-101  
Wide Orifice Aardvark Pipet Tips, 200 ul Denville Scientific P1105-CP  
Flystuff Flypad, Standard Size Genesee Scientific 59-114  
BD Falcon 15 ml Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-959-70C  
Fisherbrand Petri Dishes with Clear Lids, Raised Ridge; 100 O.D. x 15 mm H; Fisher Scientific 08-757-12  
Kimax* Colorware Flasks 1,000 ml yellow Fisher Scientific 10-200-47  
PBS pH 7.4 10x Invitrogen 70011044  
Gelidium Agar Mooragar n/a  
Brewer’s Yeast MP Biomedicals 0290331280  
Granulated Sugar Kroger n/a  
Tegosept Genesee Scientific 20-266 Fly Food Preservative
Propionic Acid, 99% Acros Organics 149300025 Fly Food Preservative
Kanamycin Sulfate ISC BioExpress 0408-10G  
Tetracycline HCl VWR 80058-724  

References

  1. Toivonen, J. M., et al. No influence of Indy on lifespan in Drosophila after correction for genetic and cytoplasmic background effects. PLoS Genet. 3, e95 (2007).
  2. Spencer, C. C., Howell, C. E., Wright, A. R., Promislow, D. E. Testing an ‘aging gene’ in long-lived drosophila strains: increased longevity depends on sex and genetic background. Aging Cell. 2, 123-130 (2003).
  3. Burnett, C., et al. Absence of effects of Sir2 overexpression on lifespan in C. elegans and Drosophila. Nature. 477, 482-485 (2011).
  4. Bokov, A. F., et al. Does reduced IGF-1R signaling in Igf1r+/- mice alter aging?. PLoS One. 6, e26891 (2011).
  5. Lewis, E. B. A new standard food medium. Drosophila Information Service. 34, 117-118 (1960).
  6. Skorupa, D. A., Dervisefendic, A., Zwiener, J., Pletcher, S. D. Dietary composition specifies consumption, obesity, and lifespan in Drosophila melanogaster. Aging Cell. 7, 478-490 (2008).
  7. Rera, M., et al. Modulation of longevity and tissue homeostasis by the Drosophila PGC-1 homolog. Cell Metab. 14, 623-634 (2011).
  8. Kaplan, E. L., Meier, P. Nonparametric Estimation from Incomplete Observations. Journal of the American Statistical Association. 53, 457-481 (1958).
  9. Pletcher, S. D. Mitigating the Tithonus Error: Genetic Analysis of Mortality Phenotypes. Sci. Aging Knowl. Environ. 2002, pe14 (2002).
  10. Pletcher, S. D., Khazaeli, A. A., Curtsinger, J. W. Why do life spans differ? Partitioning mean longevity differences in terms of age-specific mortality parameters. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 55, 381-389 (2000).
  11. Promislow, , Tatar, , Pletcher, , Carey, Below-threshold mortality: implications for studies in evolution, ecology and demography. Journal of Evolutionary Biology. 12, 314-328 (1999).
  12. Pletcher, Model fitting and hypothesis testing for age-specific mortality data. Journal of Evolutionary Biology. 12, 430-439 (1999).
  13. Partridge, L., Gems, D. Benchmarks for ageing studies. Nature. 450, 165-167 (2007).
  14. Roman, G., Endo, K., Zong, L., Davis, R. L. P[Switch], a system for spatial and temporal control of gene expression in Drosophila melanogaster. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98, 12602-12607 (2001).
  15. Ford, D., et al. Alteration of Drosophila life span using conditional, tissue-specific expression of transgenes triggered by doxycyline or RU486/Mifepristone. Exp. Gerontol. 42, 483-497 (2007).
  16. Priest, N. K., Mackowiak, B., Promislow, D. E. The role of parental age effects on the evolution of aging. Evolution. 56, 927-935 (2002).
  17. Smith, E. M., et al. Feeding Drosophila a biotin-deficient diet for multiple generations increases stress resistance and lifespan and alters gene expression and histone biotinylation patterns. J. Nutr. 137, 2006-2012 (2007).
  18. Sorensen, J. G., Loeschcke, V. Larval crowding in Drosophila melanogaster induces Hsp70 expression, and leads to increased adult longevity and adult thermal stress resistance. J. Insect Physiol. 47, 1301-1307 (2001).
  19. Bass, T. M., et al. Optimization of dietary restriction protocols in Drosophila. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 62, 1071-1081 (2007).
  20. Miquel, J., Lundgren, P. R., Bensch, K. G., Atlan, H. Effects of temperature on the life span, vitality and fine structure of Drosophila melanogaster. Mechanisms of Ageing and Development. 5, 347-370 (1976).
  21. Pittendrigh, C. S., Minis, D. H. Circadian systems: longevity as a function of circadian resonance in Drosophila melanogaster. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 69, 1537-1539 (1972).
  22. Joshi, A., Mueller, L. D. Adult crowding effects on longevity in Drosophila melanogaster: Increase in age-dependent mortality. Current Science. 72, 255-260 (1997).
  23. Ja, W. W., et al. Prandiology of Drosophila and the CAFE assay. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 8253-8256 (2007).
  24. Lee, K. P., et al. Lifespan and reproduction in Drosophila: New insights from nutritional geometry. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, 2498-2503 (2008).
  25. Gargano, J. W., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. S. Rapid iterative negative geotaxis (RING): a new method for assessing age-related locomotor decline in Drosophila. Experimental gerontology. 40, 386-395 (2005).
check_url/50068?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Linford, N. J., Bilgir, C., Ro, J., Pletcher, S. D. Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (71), e50068, doi:10.3791/50068 (2013).

View Video