Summary

Forberedelse af Mgm101 Recombination Protein af MBP-baserede tagging strategi

Published: June 25, 2013
doi:

Summary

Gæren mitokondrie nucleoid protein, Mgm101, er en RAD52-typen rekombination protein, som danner store oligomere ringe. En protokol er beskrevet til fremstilling af opløselig rekombinant Mgm101 hjælp maltosebindingsproteinet (MBP)-tagging strategi kombineret med kationbytning og gelpermeationskromatografi.

Abstract

Den MGM101 genet blev identificeret 20 år siden for sin rolle i opretholdelsen af mitokondrie-DNA. Undersøgelser fra flere grupper har foreslået, at Mgm101 protein er involveret i rekombinationelle reparation af mitokondrie-DNA. Nylige undersøgelser har indikeret, at Mgm101 er relateret til RAD52-typen rekombination protein familie. Disse proteiner danner store oligomere ringe og fremme annealing af homologe enkeltstrengede DNA-molekyler. Imidlertid har karakteriseringen af ​​Mgm101 blevet hæmmet af vanskeligheden i at producere det rekombinante protein. Her er en pålidelig fremgangsmåde til fremstilling af rekombinant Mgm101 beskrevet. Maltosebindingsprotein (MBP)-tagget Mgm101 først udtrykkes i Escherichia coli. Fusionsproteinet indledningsvis oprenset ved amylose-affinitetskromatografi. Efter at være blevet frigivet ved proteolytisk spaltning, er Mgm101 adskilt fra MBP ved kationbytningskromatografi. Monodispergeret Mgm101 fås derpåved gelpermeationskromatografi. Et udbytte på ~ 0,87 mg Mgm101 per liter bakteriekultur kan være rutinemæssigt opnået. Det rekombinante Mgm101 har minimal kontaminering af DNA. De forberedte prøver med held brugt til biokemiske, strukturelle og enkelt partikel billedet analyser af Mgm101. Denne protokol kan også anvendes til fremstilling af andre store oligomere DNA-bindende proteiner, der kan fejlfoldede og giftige for bakterieceller.

Introduction

Homolog rekombination er vigtig for reparation af dobbelt-strenget pauser (DSBs) og interstreng tværbindinger, og for genoptagelse af DNA-replikation fra kollapsede replikationsgafler 1.. Ved konventionel homolog rekombination, er det centrale reaktion katalyseret af de ATP-afhængige rekombinaser herunder RecA i prokaryoter, og RAD51 og Dmc1 i eukaryoter 1-3. Disse rekombinaser danner nukleoproteinpartikler filamenter på ssDNA, som er afgørende for at indlede homologi søgning og strand invasion inden duplex DNA skabeloner (Figur 1, venstre panel) 4-7. Ud over den konventionelle ordning, kan homolog rekombination også foregå i et RecA/Rad51-independent måde (figur 1, højre panel). For eksempel kan gær RAD52 og Rad59 proteiner direkte katalyserer annealing af komplementære ssDNA strenge, som er udsat ved resektion af dsDNA pauser. Denne rekombination proces, kendt som syngele strand annealing, er generelt ikke involverer homolog parring med dsDNA skabeloner. Efter annealing, er heterologe haler fjernet ved exonukleaser og nicks ligeres at genoprette genom kontinuitet 8-10. Reparation af enkeltstrengen annealing mekanisme er ofte ledsaget af sletninger af genomiske sekvenser mellem direkte gentagne regioner.

RAD52 tilhører en forskelligartet gruppe af rekombinationsproteiner, der er udbredt blandt bakteriofager 11. Disse proteiner er også kendt som enkelt streng Udglødning Proteiner (SSAPs), baseret på deres aktivitet for at fremme udglødning af homologe enkeltstrengede DNA-molekyler. De bedst karakteriserede bakteriofagvektorer SSAPs er Redp og Erf fra bakteriofager λ og P22, RecT fra profag rac og Sak proteinet fra lactococcus fag ul36. De SSAPs er strukturelt karakteriseret ved en typisk β-β-β-α fold, selvom lighed næsten er undetectstand i deres primære sekvenser. Tilsammen danner store homo-oligomere ringe af 10-14 fold symmetri in vitro 12-14. De funktionelle konsekvenser af denne egenskab højere orden organisatoriske struktur er ikke godt forstået.

Vi er interesseret i at forstå den mekanisme af homolog rekombination i mitokondrie-genomet. Vi har tidligere identificeret det MGM101 gen, der er afgørende for opretholdelsen af mtDNA i Saccharomyces cerevisiae 15.. MGM101 blev efterfølgende fundet at være forbundet med mitokondrie nucleoids og er nødvendig for tolerance over mtDNA til DNA-skadende agenter 16. Imidlertid har studiet af Mgm101 været holdt tilbage i det sidste årti, som det er vanskeligt at producere rekombinant Mgm101. Vi har for nylig formået at producere opløselige Mgm101 på store mængder fra E. coli ved anvendelse af MBP-fusion strategi. Dette har gjort det muligt for os at vise, at Mgm101 aktierbiokemiske og strukturelle ligheder med RAD52-familien af proteiner 17,18. I denne rapport er en tre-trins rensning beskrevet, der producerer homogene Mgm101for biokemiske og strukturelle analyser (Figur 2).

Protocol

Tidligere undersøgelser har vist, at de første aminoterminale 22 rester af Mgm101 spaltes efter indførsel i mitokondrier 19.. Til ekspression i Escherichia coli, er MGM101 åbne læseramme mangler de første 22 kodoner amplificeret ved PCR og placeret nedstrøms for malE sekvens der koder for maltosebindingsprotein (MBP) i en modificeret version af ekspressionsvektoren pMAL-C2E. Dette genererer MBP-Mgm101 fusion med en linker indeholdende et spaltningssted for PreScission proteas…

Representative Results

Mgm101 er en RAD52-relateret rekombination protein i mitokondrier. RAD52 er blevet grundigt undersøgt for sin rolle i mitokondrie-DNA-rekombination (figur 1). Rekombinant Mgm101 kan fremstilles ved en tre-trins procedure (Figur 2). Dette lettes ved anvendelse af MBP-tagging strategi, der tillader Mgm101 at blive udtrykt i en opløselig form og efterfølgende frigives fra tag ved proteolytisk spaltning (figur 3). I et typisk præparat kan ca…

Discussion

Det har været en udfordring at producere en stabil, indfødte rekombinant Mgm101 protein fra E. coli muligvis på grund af stoffet ikke er opløseligt i bakterieceller. I denne rapport, viser vi, at MBP-fusion strategi giver protein, der skal udtrykkes på et rimeligt højt niveau. Ved hjælp negativ farvning transmissionselektronmikroskopi og gelpermeationskromatografi, har vi tidligere vist, at MBP-fusionsproteinet danner ensartede oligomerer in vitro 18. Det er muligt, at foldning og oli…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Stephan Wilkens om hjælp til transmission elektronmikroskopi. Dette arbejde blev støttet af National Institutes of Health Grant R01AG023731.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Expression vector pMAL-c2E New England Biolabs #N8066S  
PreScission Protease GE Healthcare Life Sciences #27-0843-01  
BL21-CodonPlus(DE3)-RIL cells Strategene #230245  
Leupeptin Roche Applied Science #11034626001  
Pepstatin Roche Applied Science #11359053001  
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) Roche Applied Science #10837091001  
DNAse I Sigma #DN25-1G  
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) Roche Applied Science #11411446001  
Amylose resin New England Biolabs #E8021L  
Econo-Column chromatography column BIO-RAD #7372512  
Bio-Scale Mini Macro-Prep High S cartridge (1 ml) BIO-RAD #732-4130  
VIVASPIN 15R Ultrafiltration spin column (10,000 MWCO) Sartorius Stedium #VS15RH02  
Superose 6 prep grade column Amersham Bioscirnces #17-0489-01  
VIVASPIN 6 Ultrafiltration spin column (5,000 MWCO) Sartorius Stedium #VS0611  

References

  1. San Filippo, J., Sung, P., Klein, H. Mechanism of eukaryotic homologous recombination. Annu. Rev. Biochem. 77, 229-257 (2008).
  2. Bishop, D. K., Park, D., Xu, L., Kleckner, N. DMC1: a meiosis-specific yeast homolog of E. coli recA required for recombination, synaptonemal complex formation, and cell cycle progression. Cell. 69, 439-456 (1992).
  3. Shinohara, A., Ogawa, H., Ogawa, T. Rad51 protein involved in repair and recombination in S. cerevisiae is a RecA-like protein. Cell. 69, 457-470 (1992).
  4. Passy, S. I., et al. Human Dmc1 protein binds DNA as an octameric ring. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 10684-10688 (1999).
  5. Story, R. M., Weber, I. T., Steitz, T. A. The structure of the E. coli recA protein monomer and polymer. Nature. 355, 318-325 (1992).
  6. Yu, X., Jacobs, S. A., West, S. C., Ogawa, T., Egelman, E. H. Domain structure and dynamics in the helical filaments formed by RecA and Rad51 on DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 8419-8424 (2001).
  7. Conway, A. B., et al. Crystal structure of a Rad51 filament. Nat. Struct. Mol. Biol. 11, 791-796 (2004).
  8. Bai, Y., Davis, A. P., Symington, L. S. A novel allele of RAD52 that causes severe DNA repair and recombination deficiencies only in the absence of RAD51 or RAD59. Génétique. 153, 1117-1130 (1999).
  9. Bai, Y., Symington, L. S. A Rad52 homolog is required for RAD51-independent mitotic recombination in Saccharomyces cerevisiae. Genes Dev. 10, 2025-2037 (1996).
  10. Paques, F., Haber, J. E. Multiple pathways of recombination induced by double-strand breaks in Saccharomyces cerevisiae. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 63, 349-404 (1999).
  11. Lopes, A., Amarir-Bouhram, J., Faure, G., Petit, M. A., Guerois, R. Detection of novel recombinases in bacteriophage genomes unveils Rad52, Rad51 and Gp2.5 remote homologs. Nucleic Acids Res. 38, 3952-3962 (2010).
  12. Poteete, A. R., Sauer, R. T., Hendrix, R. W. Domain structure and quaternary organization of the bacteriophage P22 Erf protein. J. Mol. Biol. 171, 401-418 (1983).
  13. Passy, S. I., Yu, X., Li, Z., Radding, C. M., Egelman, E. H. Rings and filaments of beta protein from bacteriophage lambda suggest a superfamily of recombination proteins. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 4279-4284 (1999).
  14. Ploquin, M., et al. Functional and structural basis for a bacteriophage homolog of human RAD52. Curr. Biol. 18, 1142-1146 (2008).
  15. Chen, X. J., Guan, M. X., Clark-Walker, G. D. MGM101, a nuclear gene involved in maintenance of the mitochondrial genome in Saccharomyces cerevisiae. Nucl. Acids Res. 21, 3473-3477 (1993).
  16. Meeusen, S., et al. Mgm101p is a novel component of the mitochondrial nucleoid that binds DNA and is required for the repair of oxidatively damaged mitochondrial DNA. J. Cell Biol. 145, 291-304 (1999).
  17. Mbantenkhu, M., et al. Mgm101 is a Rad52-related protein required for mitochondrial DNA recombination. J. Biol. Chem. 286, 42360-42370 (2011).
  18. Nardozzi, J. D., Wang, X., Mbantenkhu, M., Wilkens, S., Chen, X. J. A properly configured ring structure is critical for the function of the mitochondrial DNA recombination protein. Mgm101. J. Biol. Chem. 287, 37259-37268 (2012).
  19. Zuo, X., Xue, D., Li, N., Clark-Walker, G. D. A functional core of the mitochondrial genome maintenance protein Mgm101p in Saccharomyces cerevisiae determined with a temperature-conditional allele. FEMS Yeast Res. 7, 131-140 (2007).
  20. Itoh, K., et al. DNA packaging proteins Glom and Glom2 coordinately organize the mitochondrial nucleoid of Physarum polycephalum. Mitochondrion. 11, 575-586 (2011).
  21. Janicka, S., et al. A RAD52-like single-stranded DNA binding protein affects mitochondrial DNA repair by recombination. Plant J. 72, 423-435 (2012).
check_url/fr/50448?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Wang, X., Mbantenkhu, M., Wierzbicki, S., Chen, X. J. Preparation of the Mgm101 Recombination Protein by MBP-based Tagging Strategy. J. Vis. Exp. (76), e50448, doi:10.3791/50448 (2013).

View Video