Summary

Muis foetale lever Cultuur System Doel Gene functies ontleden in de vroege en late stadia van Terminal Erytropoëse

Published: September 09, 2014
doi:

Summary

We geven een in vitro muizen foetale lever erytroblast kweeksysteem dat de vroege en late stadia van terminal erytropoëse ontleedt. Dit systeem vergemakkelijkt de functionele analyse van specifieke genen in verschillende ontwikkelingsstadia.

Abstract

Erytropoëse omvat een dynamisch proces dat begint met erytroïde burst vormende eenheden (BFU-E), gevolgd door snel delende erytroïde kolonievormende eenheden (CFU-E). Na CFU-Es, cellen zijn morfologisch herkenbare en algemeen genoemd terminal erytroblasten. Een van de uitdagingen voor de studie van terminal erytropoëse is het ontbreken van experimentele benaderingen genfuncties ontleden chronologisch wijze. In dit protocol beschrijven we een unieke strategie genfuncties bepalen de vroege en late stadia van terminal erythropoiese. In dit systeem, muis foetale lever TER119 (volwassen erytroïde-cel marker) negatief erytroblasten werden gezuiverd en getransduceerd met exogene expressie van cDNA's of kleine hairpin RNAs (shRNAs) voor de genen van belang. De cellen werden vervolgens gekweekt in medium dat dan erythropoietine (Epo) hun voorlopercellen stadium behouden gedurende 12 uur terwijl het exogene cDNA's of shRNAs groeifactorente drukken. De cellen werden veranderd naar Epo medium na 12 uur tot celdifferentiatie en proliferatie induceren terwijl het exogene genetische materiaal al werden uitgedrukt. Dit protocol maakt analyse van genfuncties in het beginstadium van terminal erythropoiese. Te laat stadium terminal erytropoëse te bestuderen, werden de cellen onmiddellijk gekweekt in Epo medium na transductie. Zo werden de cellen reeds gedifferentieerd dat late stadium van terminal erytropoëse wanneer de getransduceerde genetisch materiaal werden uitgedrukt. Wij raden een algemene toepassing van deze strategie die zou helpen gedetailleerde gen functies in de verschillende stadia van de terminal erytropoëse begrijpen.

Introduction

Erytropoëse is het proces van differentiatie van multipotente hematopoëtische stamcellen erytrocyten rijpen. Deze stapsgewijze werkwijze omvat de vorming van erytroïde burst vormende eenheden (BFU-E), de snel delende erytroïde kolonievormende eenheden (CFU-E) en morfologisch herkenbare erytroblasten 1,2. Terminal erythropoiesis van CFU-E stamcellen betreft sequentiële erytropoëtine-afhankelijke en onafhankelijke fasen 2,3. In het vroege stadium van terminal erytropoëse, Erytropoëtine (Epo) bindt aan zijn receptor op het celoppervlak en induceert een reeks stroomafwaartse signalering pathways die cel apoptose te voorkomen en snelle celdelingen en genexpressie 1,4. In de late fase van de terminal erytropoëse, erytroblasten ondergaan terminal celcyclus exit, chromatine en nucleus condensatie, en extrusie van de sterk gecondenseerde kernen 5.

Ons begrip van de terminalerytropoëse is sterk verbeterd in de afgelopen decennia, dat is grotendeels te danken aan het succesvolle gebruik van verschillende in vitro en in vivo muismodellen 6-9. Van deze modellen in vitro kweek van muizen foetale lever erythroblasten biedt vele voordelen, waaronder het gemak van cel zuivering, snelle proliferatie en differentiatie, en een dichter imiteren menselijke erytropoëse 10,11. In dit systeem kunnen grote aantallen erythroïde progenitorcellen uit muizen foetale levers gemakkelijk worden geïsoleerd door het enkele stap zuivering van TER119 (marker voor het rijpe erytroïde cellen) negatief erytroblasten. Tijdens de tweedaagse kweek van de erytroblasten, kan de differentiatie van deze cellen worden door een flowcytometrische analyse op basis van oppervlakte-expressie van de transferrine receptor (CD71) en TER119 antigen 12. Bovendien kan enucleatie van terminaal differentiatie erytroblasten worden gedetecteerd door een DNA maker (Hoechst 33342) 13. Ook het gezuiverde voorlopercellen kunnen genetisch gemodificeerd door exogene expressie van cDNA's of kleine hairpin RNAs (shRNAs) voor de genen van belang, waarvan de mechanistische studies van de functies van genexpressie op erytropoëse 11,13,14 vergemakkelijkt.

Anderzijds kan de snelle celgroei tempo een tweesnijdend zwaard zijn, aangezien het moeilijk is om genfuncties karakteriseren in verschillende stadia van terminal erythropoiese. In de meeste gevallen is het moeilijk te bepalen of een specifieke genfuncties in het vroege stadium van terminal erytropoëse sinds de tijd dat de cDNA's of shRNAs tot expressie, de cellen reeds vroeg stadium gepasseerd. Om dit probleem op te lossen, ontwikkelden we een uniek systeem voor de vroege en late stadia van de terminal erytropoëse ontleden. Bij de vroege fase van terminal erytropoëse genetisch gemodificeerde TER119 negatieve erythroblasten werden gekweekt in Epo-medium maar bevat stamcel factor (SCF), IL-6 en FLT3ligand hun progenitor status te behouden en laat de getransduceerde cDNAs of shRNA expressie 13. De cellen werden veranderd naar Epo bevattende medium na 12 uur tot celproliferatie en differentiatie induceren. Op deze manier, wanneer de cellen beginnen te differentiëren, de getransduceerde cDNA's of shRNAs reeds expressie. Voor het late stadium van terminal erytropoëse, TER119 negatieve erythroblasten werden in Epo bevattend medium onmiddellijk na transductie. Daarom kan men analyseren de functies van de genen van belang in het late stadium van terminal erythropoiese. Samengevat zou een brede toepassing van deze regeling te ontleden genfuncties in verschillende stadia van terminal erythropoiese.

Protocol

De in dit protocol beschreven experimenten werden uitgevoerd in overeenstemming met het bepaalde bij Northwestern University Institutional Animal Care en gebruik Comite richtlijnen en voorschriften. 1 Bereiding van kweekmedium Bereid fibronectine oplossing. Voeg 1 ml water toe aan een injectieflacon van menselijke fibronectine (1 mg). Laat de oplossing in weefselkweek kap voor 30 minuten zonder schudden. Breng de totale vloeistof 50 ml PBS tot een eindconcentratie van 20 ug / ml t…

Representative Results

Figuur 1 schetst de experimentele strategieën. Het protocol bestaat uit twee onafhankelijke voorwaarden voor targeting naar de functies van de signaalmoleculen in de vroege en late stadia van terminal erythropoiese. TER119 negatieve foetale lever erythroblasten werden gezuiverd uit E13.5 muis foetus. Flow cytometrische analyse van foetale lever erythroïde cellen voor en na zuivering aangetoond dat de zuivering werd efficiënt (Figuren 2A en 2B). Bij de vroege fase van…

Discussion

Hier presenteren we een uniek systeem om chronologisch te analyseren muis foetale lever terminal erytropoëse. Door de toepassing van verschillende kweekomstandigheden, we met succes ontleed terminal erytropoëse in de vroege en late stadia. Dit is bijzonder belangrijk om de mechanismen van genen met meerdere functies bepalen. Bijvoorbeeld, Rac GTPases spelen een belangrijke rol in verschillende stadia van terminal erythropoiese. Remming van Rac GTPases in het beginstadium van terminal erytropoëse invloeden celdifferen…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Deze studie werd ondersteund door NIH R00HL102154, en een American Society of Hematology geleerde award naar P Ji.

Materials

Iscove's Modified Dulbecco's MediumIMDM (IMDM) Gibco 12440-053
Fetal bovine serum (FBS) GEMINI Bio-product 700-102P
b-mecaptoethanol Sigma M6250 0.1 M in IMDM,  4℃stock
Penicillin-Streptomycin solution Hyclone SV30010 100 X
L-Glutamine Hyclone SH30034.01 200 mM
Stem cell factor (SCF) STEMCELL TECH 2630 100 ng/ul, -20℃ stock
Mouse FIT3 Ligand (Flt-3L) BD Biosciences  14-8001-80
Mouse Recombinant Interleukin-6 (IL-6)  GEMINI Bio-product 300-327P
fibronectin BD Biosciences  354008
Bovine Serum Albumin (BSA) STEMCELL TECH 9300 10% stock in IMDM
Insulin solution, human Sigma I9278 4℃ stock
holo-transferrin human Sigma T0665 50 mg/ml in Water -20℃ stock
Erythropoietin(Epo) PROCRIT NOC 59676-303-00 3,000 U/ml stock
Streptavidin particles Plus BD Pharmingen 557812
EasySep Magnet STEMCELL TECH 18000
Polypropylene Round-Bottom Tube, 5 ml FALCON 352063

References

  1. Hattangadi, S. M., Wong, P., Zhang, L., Flygare, J., Lodish, H. F. From stem cell to red cell: regulation of erythropoiesis at multiple levels by multiple proteins, RNAs, and chromatin modifications. Blood. 118 (24), 6258-6268 (2011).
  2. Richmond, T. D., Chohan, M., Barber, D. L. Turning cells red: signal transduction mediated by erythropoietin. Trends in cell biology. 15 (3), 146-155 (2005).
  3. Eshghi, S., Vogelezang, M. G., Hynes, R. O., Griffith, L. G., Lodish, H. F. Alpha4beta1 integrin and erythropoietin mediate temporally distinct steps in erythropoiesis: integrins in red cell development. The Journal of cell biology. 177 (5), 871-880 (2007).
  4. Koury, M. J., Bondurant, M. C. Maintenance by erythropoietin of viability and maturation of murine erythroid precursor cells. Journal of cellular physiology. 137 (1), 65-74 (1988).
  5. Ji, P., Yeh, V., Ramirez, T., Murata-Hori, M., Lodish, H. F. Histone deacetylase 2 is required for chromatin condensation and subsequent enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts. Haematologica. 95 (12), 2013-2021 (2010).
  6. Dumitriu, B., et al. Sox6 cell-autonomously stimulates erythroid cell survival, proliferation, and terminal maturation and is thereby an important enhancer of definitive erythropoiesis during mouse development. Blood. 108 (4), 1198-1207 (2006).
  7. Rector, K., Liu, Y., Van Zant, G. Comprehensive hematopoietic stem cell isolation methods. Methods in molecular biology. 976, 1-15 (2013).
  8. Rossi, L., Challen, G. A., Sirin, O., Lin, K. K., Goodell, M. A. Hematopoietic stem cell characterization and isolation. Methods in molecular biology. 750, 47-59 (2011).
  9. Choi, H. S., Lee, E. M., Kim, H. O., Park, M. I., Baek, E. J. Autonomous control of terminal erythropoiesis via physical interactions among erythroid cells. Stem cell research. 10 (3), 442-453 (2013).
  10. Bhatia, H., et al. Short-chain fatty acid-mediated effects on erythropoiesis in primary definitive erythroid cells. Blood. 113 (25), 6440-6448 (2009).
  11. Zhang, J., Socolovsky, M., Gross, A. W., Lodish, H. F. Role of Ras signaling in erythroid differentiation of mouse fetal liver cells: functional analysis by a flow cytometry-based novel culture system. Blood. 102 (12), 3938-3946 (2003).
  12. Socolovsky, M., et al. Ineffective erythropoiesis in Stat5a(-/-)5b(-/-) mice due to decreased survival of early erythroblasts. Blood. 98 (12), 3261-3273 (2001).
  13. Ji, P., Jayapal, S. R., Lodish, H. F. Enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts requires Rac GTPases and mDia2. Nature cell biology. 10 (3), 314-321 (2008).
  14. Chida, D., Miura, O., Yoshimura, A., Miyajima, A. Role of cytokine signaling molecules in erythroid differentiation of mouse fetal liver hematopoietic cells: functional analysis of signaling molecules by retrovirus-mediated expression. Blood. 93 (5), 1567-1578 (1999).
  15. Patel, V. P., Lodish, H. F. A fibronectin matrix is required for differentiation of murine erythroleukemia cells into reticulocytes. The Journal of cell biology. 105 (6 Pt 2), 3105-3118 (1987).
  16. Udupa, K. B., Lipschitz, D. A. Endotoxin-induced suppression of erythropoiesis: the role of erythropoietin and a heme synthesis stimulating factor. Blood. 59 (6), 1267-1271 (1982).
  17. Koury, M. J., Sawyer, S. T., Brandt, S. J. New insights into erythropoiesis. Current opinion in hematology. 9 (2), 93-100 (2002).
check_url/fr/51894?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zhao, B., Mei, Y., Yang, J., Ji, P. Mouse Fetal Liver Culture System to Dissect Target Gene Functions at the Early and Late Stages of Terminal Erythropoiesis. J. Vis. Exp. (91), e51894, doi:10.3791/51894 (2014).

View Video