Summary

<em> In Vitro</em> Покой Модель Эстроген-чувствительной рака молочной железы в костном мозге: Инструмент для молекулярный механизм исследований и гипотез поколения

Published: June 30, 2015
doi:

Summary

We developed an in vitro model of dormancy in the bone marrow for estrogen-sensitive breast cancer cells. The goal of this protocol is to demonstrate use of the model for the study of the molecular and cellular biology of dormancy and for generation of hypotheses for subsequent testing in vivo.

Abstract

The study of breast cancer dormancy in the bone marrow is an exceptionally difficult undertaking due to the complexity of the interactions of dormant cells with their microenvironment, their rarity and the overwhelming excess of hematopoietic cells. Towards this end, we developed an in vitro 2D clonogenic model of dormancy of estrogen-sensitive breast cancer cells in the bone marrow. The model consists of a few key elements necessary for dormancy. These include 1) the use of estrogen sensitive breast cancer cells, which are the type likely to remain dormant for extended periods, 2) incubation of cells at clonogenic density, where the structural interaction of each cell is primarily with the substratum, 3) fibronectin, a key structural element of the marrow and 4) FGF-2, a growth factor abundantly synthesized by bone marrow stromal cells and heavily deposited in the extracellular matrix. Cells incubated with FGF-2 form dormant clones after 6 days, which consist of 12 or less cells that have a distinct flat appearance, are significantly larger and more spread out than growing cells and have large cytoplasm to nucleus ratios. In contrast, cells incubated without FGF-2 form primarily growing colonies consisting of >30 relatively small cells. Perturbations of the system with antibodies, inhibitors, peptides or nucleic acids on day 3 after incubation can significantly affect various phenotypic and molecular aspects of the dormant cells at 6 days and can be used to assess the roles of membrane-localized or intracellular molecules, factors or signaling pathways on the dormant state or survival of dormant cells. While recognizing the in vitro nature of the assay, it can function as a highly useful tool to glean significant information about the molecular mechanisms necessary for establishment and survival of dormant cells. This data can be used to generate hypotheses to be tested in vivo models.

Introduction

Клетки рака груди метастазы в костном мозге до того, как болезнь обнаруживается 1, как только небольшие опухоли развиваются кровеносные сосуды 2,3. Метастатического процесса является быстрое, но неэффективно. Клетки ввести новые кровеносные сосуды быстро, в миллионы за 4 дня, но немногие выживают поездку в отдаленные органы 5. Тем не менее, некоторые микрометастазы выжить в кости и могут быть найдены в виде отдельных клеток или небольших комков клеток в клетках костного мозга от вновь диагностированных пациентов 1. Эти клетки сопротивляться адъювантной химиотерапии, который находится в ведении именно для устранения их 6. Это сопротивление наделен, по существу, путем выживания сигнализации по инициативе взаимодействия с микросреды костного мозга 7,8. Микрометастазы можно найти примерно в одной трети женщин с локализованным раком молочной железы и представляют собой самостоятельную показатель выживания при анализе одномерного анализа 9. Некоторые micrometastases являются рост инициативе, но узоры рецидивов зависит от типа клеток. Пациенты с тройным негативным раком молочной железы, как правило, повторяются от 1 до 4 лет, предполагая, плохой контроль над неактивном состоянии. Другие типы клеток, в том числе ER / PR + клеток, могут оставаться в состоянии покоя до 20 лет, с постоянным, непрерывным скорости рецидива 10. В то время как различия в неактивности подписей экспрессии генов между ER + и ER-клеточных линий и опухолей молочной железы отражают различные потенциалы покоя 11, взаимодействия с стромы костного мозга, вероятно, представляют собой значительный вклад в покое.

Изучение покоя в естественных условиях исключительно трудно, потому что микрометастазы редки и превосходили гемопоэтических клеток более чем на 10-кратно 6. Следовательно, соответствующие модели должны быть созданы, которые обеспечивают в пробирке данных, которые могут предложить механизмы и генерировать проверяемые гипотезы в естественных условиях. Ряд моделей неактивности, в том числе Matheматическое модели 12,13, в пробирке моделей 7,8,14,15, в естественных условиях модели ксенотрансплантатов 16, комбинации в пробирке и модели ксенотрансплантата 17,18 и спонтанные опухоли и метастазирование модели 19, дали некоторое представление раковых клеток покоя 20 , Каждая из этих моделей имеет свои ограничения и сами по себе, прежде всего, полезен для генерации гипотез относительно молекулярной сигнализации и взаимодействий, которые регулируют покоя, чтобы быть проверены в более биологически соответствующих моделей.

С общей цели определения молекулярных механизмов покоя, взаимодействия с микросреды, что приводит к цикла ареста, повторной дифференцировки и терапевтического сопротивления и механизмов, которые приводят к рецидиву в ER + клеток, мы разработали модель в пробирке, что обеспечивает выбранный соответствующие элементы стромальных микросреда 7. Эта модель, в то время как относительно редкие в его компоненты, достаточно прочный, чтобы разрешить следователям, чтобы получить конкретные молекулярные механизмы, которые влияют на важные функции покоя. Эти эксперименты генерации гипотез, которые могут быть проверены непосредственно в живом организме. Модель опирается на несколько ключевых элементов, которые мы продемонстрировали, что отношение в покое. Они включают в себя использование эстроген-зависимых клеток рака молочной железы, культуры клеток на более клоногенном плотности, где их взаимодействие в первую очередь с субстратом и растворимыми компонентами среды, фибронектином субстрат и при наличии основного фактора роста фибробластов (FGF-2) в среде.

Мы охарактеризовали механизмы, которые регулируют систему в пробирке, в том числе индукции ареста клеточного цикла по FGF-2 21, опосредованного TGF-beta 22, выживание сигналов через PI3 киназы 7,8 и 8 Эрк и морфогенного дифференциации в эпителиальной фенотипа, который зависит от RhoA инактивации, интегрину45; 5β1 регуляция и перевязка стромы фибронектина за выживание 7,15 (Рисунок 1). Эффекты в пробирке клеточного цикла FGF-2 на MCF-7 клетки начинают при концентрации, по меньшей мере одно бревно ниже 10 нг / мл 21,23. Обоснованием была основана на временной контроль FGF-2, регулирующего экспрессию молочной протоков морфогенез, циклический расширение и спад в ряде систем млекопитающих 24-27. Мы показали, что FGF-2, индуцирует дифференциацию, в том числе протоковой морфогенеза в 3D культуры 28, и что FGF-2 экспрессии, как правило, теряется со злокачественной трансформации человеческих опухолей 29. Выражение FGR1 остались нетронутыми в раке груди опрошенных 29 и MCF-7 клетки продолжают выражать все 4 FGF рецепторы 30. В контексте покоя, FGF-2 экспортируется и в значительной степени на хранение на стромы костного мозга 31,32, где она функционирует в сохранении гемопоэтических стволовых клеток 33. Мы демonstrated, что FGF-2 индуцирует состояние покоя в ER + клеток рака молочной железы, культивированных на субстратах, фибронектина и обильной в мозге, где он вызывает морфологическую дифференциацию 7. В модели, клетки рака молочной железы являются рост ингибируется, инактивируют Rho A через RhoGAP Граф, чтобы повторно дифференцировать эпителиального фенотипа, и повторно экспресс интегринов α5β1 lost со злокачественной прогрессии. Они связывают фибронектин через интегринового α5β1 и активировать выживание понять, что делает их устойчивыми к цитотоксической терапии 7,8,15 (рис 1). Ингибирование Rho класса GTPases была продемонстрирована ранее, чтобы побудить покоя фенотипа 34.

Здесь мы будем наметить конкретные процедуры, которые позволят следователям установить модель и изучать конкретные молекулярные и клеточные механизмы, регулирующие дремоту ER + клеток рака молочной железы. В экспериментах, представленных здесь, чтобы проиллюстрировать использование моделиМы ориентировались на PI3K пути (рис 1B) с Akt ингибитора и ингибитора PI3K и всех членов семьи Ро (рис 1B) с ингибитором пан-Ро и (ROCK) ингибитора киназы Rho.

Protocol

1. клоногенности Подготовка одноклеточных суспензий из эстроген-зависимых линий клеток рака молочной железы MCF-7 и T47D клетки, используя шаги, описанные ниже Аспирируйте культуральную среду (DMEM / 10% тепла инактивированной фетальной телячьей сыворотки / глутамин и ручка / стрепт…

Representative Results

Эксперименты проводились резюмировать анализа. Временной ход эксперимента показан на рисунке 2А. Клетки инкубировали при плотности образующих клоны в день -1, FGF-2 в свежей среде добавляют в день 0 и клетки культивируют до 6-й день, когда они окрашивают и колонии подсчитывают. …

Discussion

Наша модель состоит из нескольких ключевых элементов покоя в костном мозге. Он состоит из эстрогена чувствительные клетки, которые являются тип вероятно, будет оставаться в состоянии покоя в мозге в течение длительных периодов 10, она состоит из фибронектина, ключевой структурны?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Materials

MCF-7 cells ATCC HTB-22
T47D cells  ATCC HTB-123
BD BioCoat Fibronectin 24 Well Clear Flat Bottom TC-Treated Multiwell Plate Corning 354411
BD BioCoat Fibronectin 60 mm Culture Dishes Corning 354403
BD BioCoat Fibronectin 100 mm Culture Dishes Corning 354451
BD BioCoat 22x22mm #1 Glass Coverslip with a uniform application of human fibronectin Corning 354088
6 Well tissue culture plate CellTreat 229106
Dulbecco Modified Eagle Medium High Glucose 10X Powder Corning Life Sciences 50-013-PB
Heat Inactivated, Fetal Bovine Serum Serum Source International FB02-500HI
0.25% Trypsin/2.21 mM EDTA Corning 25-053-CI
Penicillin-Streptomycin Solution, 100X Corning 30-002-CI
L-Glutamine, 100x, Liquid Corning 25-005-CI
Recombinant Human FGF basic R&D Systems 234-FSE-025
Akt Inhibitor (1L6-Hydroxymethyl-chiro-inositol-2-(R)-2-O-methyl-3-O-octadecyl-sn-glycerocarbonate) CalBiochem 124005
LY294002  CalBiochem 19-142 Chenical PI3K inhibitor
C3 transferase  Cytoskeleton CTO3 Inhibits RhoA, RhoB, and RhoC, but not related GTPases such as Cdc42 or Rac1
Y-27632 dihydrochloride  Santa Cruz Biotechnology 129830-28-2
BODIPY FL-Phallacidin (green)  Molecular Probes B607 Fluorochrome for fibrillar actin staining
BODIPY FL-Rhodamine phalloidin (red)  Molecular Probes R415 Fluorochrome for fibrillar actin staining
Alexa Fluor 488 Donkey anti-Mouse IgG Antibody, ReadyProbes Reagent  Molecular Probes R37114
ProLong Gold Antifade Mountant with DAPI  Molecular Probes P-36931

References

  1. Braun, S., et al. Cytokeratin-positive cells in the bone marrow and survival of patients with stage I, II, or III breast cancer. N Engl J Med. 342 (8), 525-533 (2000).
  2. Benoy, I. H., et al. Relative microvessel area of the primary tumour, and not lymph node status, predicts the presence of bone marrow micrometastases detected by reverse transcriptase polymerase chain reaction in patients with clinically non-metastatic breast cancer. Breast Cancer Res. 7 (2), R210-R219 (1186).
  3. Wapnir, I. L., Barnard, N., Wartenberg, D., Greco, R. S. The inverse relationship between microvessel counts and tumor volume in breast cancer. Breast J. 7 (3), 184-188 (2001).
  4. Wyckoff, J. B., et al. A critical step in metastasis: in vivo analysis of intravasation at the primary tumor. Cancer Res. 60 (9), 2504-2511 (2000).
  5. Phadke, P. A., et al. Kinetics of metastatic breast cancer cell trafficking in bone. Clin Cancer Res. 12 (5), 1431-1440 (2006).
  6. Braun, S., et al. Lack of an effect of adjuvant chemotherapy on the elimination of single dormant tumor cells in bone marrow of high risk breast cancer patients. J Clin Onc. 18 (1), 80-86 (2000).
  7. Korah, R., Boots, M., Wieder, R. Integrin α5β1 promotes survival of growth-arrested breast cancer cells: an in vitro paradigm for breast cancer dormancy in bone marrow. Cancer Res. 64 (13), 4514-4522 (2004).
  8. Najmi, S., Korah, R., Chandra, R., Abdellatif, M., Wieder, R. Flavopiridol blocks integrin-mediated survival in dormant breast cancer cells. Clin Cancer Res. 11 (5), 2038-2046 (2005).
  9. Braun, S., et al. A pooled analysis of bone marrow micrometastasis in breast cancer. N England J Med. 353 (8), 793-802 (2005).
  10. Dent, R., et al. Triple-negative breast cancer: clinical features and patterns of recurrence. Clin Cancer Res. 13 (15 Part 1), 4429-4434 (2007).
  11. Kim, R. S., et al. Dormancy signatures and metastasis in estrogen receptor positive and negative breast cancer. PLoS One. 7 (4), e35569 (2012).
  12. Hanin, L. Seeing the invisible: how mathematical models uncover tumor dormancy, reconstruct the natural history of cancer, and assess the effects of treatment. Adv in Exp Med & Biol. 734, 261-282 (2013).
  13. Wilkie, K. P. A review of mathematical models of cancer-immune interactions in the context of tumor dormancy. Adv in Exp Med & Biol. 734, 201-234 (2013).
  14. Barkan, D., Green, J. E. An in vitro system to study tumor dormancy and the switch to metastatic growth. J Vis Exp. (54), e2914 (2011).
  15. Barrios, J., Wieder, R. Dual FGF-2 and intergrin α5β1 signaling mediate GRAF-induced RhoA inactivation in a model of breast cancer dormancy. Cancer Microenvironment. 2 (1), 33-47 (2009).
  16. Ganapathy, V., et al. Luminal breast cancer metastasis is dependent on estrogen signaling. Clin & Exp Metastasis. 29 (5), 493-509 (2012).
  17. Barkan, D., et al. Inhibition of metastatic outgrowth from single dormant tumor cells by targeting the cytoskeleton. Cancer Res. 68 (15), 6241-6250 (2008).
  18. Ghajar, C. M., et al. The perivascular niche regulates breast tumour dormancy. Nat Cell Biology. 15 (7), 807-817 (2013).
  19. Marshall, J. C., et al. Effect of inhibition of the lysophosphatidic acid receptor 1 on metastasis and metastatic dormancy in breast cancer. J Nat Cancer Inst. 104 (17), 1306-1319 (2012).
  20. Almog, N. Genes and regulatory pathways involved in persistence of dormant micro-tumors. Adv in Exp Med & Biol. 734, 3-17 (2013).
  21. Wang, H., et al. Basic FGF causes growth arrest in MCF-7 human breast cancer cells while inducing both mitogenic and inhibitory G1 events. Cancer Res. 57 (9), 1750-1757 (1997).
  22. Fenig, E., et al. Role of transforming growth factor beta in the growth inhibition of human breast cancer cells by basic fibroblast growth factor. Breast Cancer Res Treat. 70 (1), 27-37 (2001).
  23. Fenig, E., et al. Basic fibroblast growth factor confers growth inhibition and Mitogen-activated Protein Kinase activation in human breast cancer cells. Clinical Cancer Research. 3 (1), 135-142 (1997).
  24. Coleman-Krnacik, S., Rosen, J. M. Differential temporal and spatial gene expression of fibroblast growth factor family members during mouse mammary gland development. Molecular Endocrinology. 8 (2), 218-229 (1994).
  25. Plath, A., et al. Expression and localization of members of the fibroblast growth factor family in the bovine mammary gland. J Dairy Science. 81 (10), 2604-2613 (1998).
  26. Lavandero, S., Chappuzeau, A., Sapag-Hagar, M., Oka, T. In vivo and in vitro evidence of basic fibroblast growth factor action in mouse mammary gland development. FEBS letters. 439 (3), 351-356 (1998).
  27. Sinowatz, F., Schams, D., Plath, A., Kolle, S. Expression and localization of growth factors during mammary gland development. Adv in Exp Med & Biol. 480, 19-27 (2000).
  28. Korah, R., Sysounthone, V., Scheff, E., Wieder, R. Intracellular FGF-2 promotes differentiation in T47-D breast cancer cells. Biochem Biophys Res Comm. 277 (1), 255-260 (2000).
  29. Korah, R., Das, K., Lindy, M. E., Hameed, M., Wieder, R. Co-ordinate loss of FGF-2 and laminin 5 expression during neoplastic progression of mammary duct epithelium. Human Pathology. 38 (1), 154-160 (2007).
  30. Wieder, R., et al. Overexpression of basic fibroblast growth factor in MCF-7 human breast cancer cells: lack of correlation between inhibition of cell growth and MAP kinase activation. J. Cellular Physiology. 177, 411-425 (1998).
  31. Brunner, G., Gabrilove, J., Rifkin, D. B., Wilson, E. L. Phospholipase C release of basic fibroblast growth factor from human bone marrow cultures as a biologically active complex with a phosphatidylinositol-anchored heparan sulfate proteoglycan. J Cell Biol. 114 (6), 1275-1283 (1991).
  32. Wilson, E. L., Rifkin, D. B., Kelly, F., Hannocks, M. J., Gabrilove, J. L. Basic fibroblast growth factor stimulates myelopoiesis in long-term human bone marrow cultures. Blood. 77 (5), 954-960 (1991).
  33. Gupta, P., McCarthy, J. B., Verfaillie, C. M. Stromal fibroblast heparan sulfate is required for cytokine-mediated ex vivo maintenance of human long-term culture-initiating cells. Blood. 87 (8), 3229-3236 (1996).
  34. Chatterjee, M., van Golen, K. L. Farnesyl transferase inhibitor treatment of breast cancer cells leads to altered RhoA and RhoC GTPase activity and induces a dormant phenotype. Int J Cancer. 129 (1), 61-69 (2011).
  35. Korah, R., Sysounthone, V., Golowa, Y., Wieder, R. Basic fibroblast growth factor confers a more differentiated phenotype in MDA-MB-231 human breast cancer cells. Cancer Res. 60 (3), 733-740 (2000).
  36. Dontu, G., et al. In vitro propagation and transcriptional profiling of human mammary stem/progenitor cells. Genes & Dev. 17 (10), 1253-1270 (2003).
  37. Tivari, S., Lu, H., Dasgupta, T., Wieder, R. Reactivation of dormant estrogen-dependent breast cancer micrometastases by bone marrow stromal injury in an in vitro model of dormancy. Proceedings of the 105th Annual Meeting of the American Association for Cancer Research. , (2014).

Play Video

Citer Cet Article
Tivari, S., Korah, R., Lindy, M., Wieder, R. An In Vitro Dormancy Model of Estrogen-sensitive Breast Cancer in the Bone Marrow: A Tool for Molecular Mechanism Studies and Hypothesis Generation. J. Vis. Exp. (100), e52672, doi:10.3791/52672 (2015).

View Video