Summary

Efficiënte Sporulatie van<em> Saccharomyces cerevisiae</em> In een 96 Multiwell Format

Published: September 17, 2016
doi:

Summary

Here, sporulation of Saccharomyces cerevisiae is carried out in a 96 multiwell format.

Abstract

During times of nutritional stress, Saccharomyces cerevisiae undergoes gametogenesis, known as sporulation. Diploid yeast cells that are starved for nitrogen and carbon will initiate the sporulation process. The process of sporulation includes meiosis followed by spore formation, where the haploid nuclei are packaged into environmentally resistant spores. We have developed methods for the efficient sporulation of budding yeast in 96 multiwell plates, to increase the throughput of screening yeast cells for sporulation phenotypes. These methods are compatible with screening with yeast containing plasmids requiring nutritional selection, when appropriate minimal media is used, or with screening yeast with genomic alterations, when a rich presporulation regimen is used. We find that for this method, aeration during sporulation is critical for spore formation, and have devised techniques to ensure sufficient aeration that are compatible with the 96 multiwell plate format. Although these methods do not achieve the typical ~80% level of sporulation that can be achieved in large-volume flask based experiments, these methods will reliably achieve about 50-60% level of sporulation in small-volume multiwell plates.

Introduction

Sporulatie in de gist is bestudeerd om inzicht in vele aspecten van de biologie, met inbegrip van de controle van chromosoomsegregatie bieden tijdens meiose 1, mechanismen voor genetische recombinatie 2, de controle van de ontwikkeling van cell signaling 3, nutritionele regeling van ontwikkeling 4, de transcriptionele regulering van de ontwikkeling 5, en het onderzoek van de spore vorming 6. Spoorvorming omvat een nieuwe celdeling gebeurtenis waarbij de vorming van nieuwe membraancompartimenten binnen de moedercel gevolgd door het afzetten van een beschermende spore wand 6. Deze studies die sporenvormende cellen onderzocht vaak gebruik maken van het snel sporulerende giststam SK1, die het proces van sporulatie in ongeveer 24 uur op een relatief efficiënte wijze 7,8 kan ondergaan. Hoewel optimalisering van sporulatie voorwaarden voor gist zijn beschreven 9-13, die experiments onderzocht sporulatie op vaste media of in grotere schaal vloeibare culturen waar sporulatie met behulp van cultuur buisjes of flesjes wordt uitgevoerd.

Hier beschrijven we een werkwijze voor sporenvormende gist in een 96 multi-putjesplaat formaat. We zien dat deze werkwijze beluchting is kritisch voor synchrone en efficiënt sporulatie en hebben technieken ontwikkeld om voldoende sporulatie garanderen een klein volume multiwell format. Sporenvormende in een 96 multi-putjesplaat formaat maakt cellen worden gescreend met behulp van high-throughput technieken en reagentia geoptimaliseerd voor een multiwell plaat formaat, zoals screening voor hoog kopie onderdrukkers met een betegelde library 14-16.

Protocol

1. Voorbereidingen voor Sporulatie Let op:. De in dit protocol beschreven media worden gemaakt met behulp van standaard recepten en methodes 13,17 Tabel 1 geeft de formulering voor 1 liter van de verschillende media gebruikt in dit protocol. <td style=…

Representative Results

Dit protocol te evalueren werden sporulatie rendementen verkregen van sporenvormende cellen in platen met meerdere putjes (zoals hierboven beschreven) vergeleken met cellen gesporuleerde gebruik van grotere volumes in flessen (tabel 2). Het gebruik van multi-putjesplaten heeft de hoge efficiëntie gezien wanneer sporulerend in flessen, waarbij ~ 80% rendement routinematig blijkt niet bereiken. Sporenvormende in multiwell platen met goede beluchting (door glasparels…

Discussion

Hier presenteren we een protocol voor sporulerend SK1 gist in een 96 multiwell format. Beluchting is belangrijk voor een efficiënte sporulatie, waarbij het gebruik van hetzij een roerstaaf of een glasparel in elk putje vereist. Wanneer cellen worden gesporuleerde in een 96 multiwell plaat in een incubator schudden zonder begeleiding van een kraal of een roerstaafje, hoeft cellen niet efficiënt sporuleren. Slechts een kleine toename van sporulatie efficiëntie wordt waargenomen wanneer de cellen gesporuleerde zonder da…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door een Joseph P. Healey subsidie ​​van de Universiteit van Massachusetts Boston (LSH) en R15 GM86805 van de NIH (LSH). SMP wordt gedeeltelijk ondersteund door een Sanofi-Genzyme Fellowship aan de Universiteit van Massachusetts Boston.

Materials

Nunc 1.3 ml DeepWell Plates ThermoScientific 260251 Used for sporulation
Nunc 2.0 ml DeepWell plates ThermoScientific 278743 Used for presporulation growth, step 1.2.3
3 mm glass bead Fisher 11-312A Used for sporulation
5 mm x 2 mm stir bar, pack of 12 Fisher 14-511-82 Used for sporulation
96 well frogger V&P Scientific VP407 needed for step 1.2
library copier V&P Scientific VP381 needed for step 1.2; to be used with the frogger
rectangular petri dish ThermoScientific 264728 needed for step 1.2
Bacto Peptone BD 211677 needed for media
Yeast Extract BD 212750 needed for media
Bacto Agar BD 212750 needed for media
Dextrose Fisher D16-3 needed for media
Potassium Acetate Fisher P171-500 needed for media
Glycerol Fisher G33-500 needed for media
Black 96 well glass bottom plate MatTek PBK96G-1.5.5-F needed for step 2.4

References

  1. Marston, A. L. Chromosome segregation in budding yeast: sister chromatid cohesion and related mechanisms. Génétique. 196 (1), 31-63 (2014).
  2. Keeney, S., Lange, J., Mohibullah, N. Self-organization of meiotic recombination initiation: general principles and molecular pathways. Annu. Rev. Genet. 48, 187-214 (2014).
  3. Granek, J. A., Kayikci, O., Magwene, P. M. Pleiotropic signaling pathways orchestrate yeast development. Curr. Opin. Microbiol. 14 (6), 676-681 (2011).
  4. Broach, J. R. Nutritional control of growth and development in yeast. Génétique. 192 (1), 73-105 (2012).
  5. Winter, E. The Sum1/Ndt80 transcriptional switch and commitment to meiosis in Saccharomyces cerevisiae. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 76 (1), 1-15 (2012).
  6. Neiman, A. M. Sporulation in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. Génétique. 189 (3), 737-765 (2011).
  7. Padmore, R., Cao, L., Kleckner, N. Temporal comparison of recombination and synaptonemal complex formation during meiosis in S. cerevisiae. Cell. 66 (6), 1239-1256 (1991).
  8. Liti, G., et al. Population genomics of domestic and wild yeasts. Nature. 458 (7236), 337-341 (2009).
  9. McCusker, J. H., Haber, J. E. Efficient sporulation of yeast in media buffered near pH6. J. Bacteriol. 132 (1), 180-185 (1977).
  10. Codon, A. C., Gasent-Ramirez, J. M., Benitez, T. Factors which affect the frequency of sporulation and tetrad formation in Saccharomyces cerevisiae baker’s yeasts. Appl. Environ. Microbiol. 61 (2), 630-638 (1995).
  11. Elrod, S. L., Chen, S. M., Schwartz, K., Shuster, E. O. Optimizing sporulation conditions for different Saccharomyces cerevisiae strain backgrounds. Methods Mol. Biol. 557, 21-26 (2009).
  12. Börner, G. V., Cha, R. S. Analysis of yeast sporulation efficiency, spore viability, and meiotic recombination on solid medium. Cold Spring Harb. Protoc. 2015 (11), 1003-1008 (2015).
  13. Börner, G. V., Cha, R. S. Induction and analysis of synchronous meiotic yeast cultures. Cold Spring Harb. Protocols. (10), 908-913 (2015).
  14. Jones, G. M., et al. A systematic library for comprehensive overexpression screens in Saccharomyces cerevisiae. Nat. Methods. 5 (3), 239-241 (2008).
  15. Fleming, M. S., Gitler, A. D. High-throughput yeast plasmid overexpession screen. J. Vis. Exp. (53), e2836 (2011).
  16. Paulissen, S. M., Slubowski, C. J., Roesner, J. M., Huang, L. S. Timely Closure of the Prospore Membrane Requires SPS1 and SPO77 in Saccharomyces cerevisiae. Génétique. , (2016).
  17. Amberg, D. C., Burke, D., Strathern, J. N. . Methods in Yeast Genetics: A Cold Spring Harbor Labooratory Manual. , (2005).
  18. Parodi, E. M., Baker, C. S., Tetzlaff, C., Villahermosa, S., Huang, L. S. SPO71 mediates prospore membrane size and maturation in Saccharomyces cerevisiae. Eukaryot. Cell. 11 (10), 1191-1200 (2012).
  19. Nakanishi, H., de Los Santos, P., Neiman, A. M. Positive and negative regulation of a SNARE protein by control of intracellular localization. Mol. Biol. Cell. 15 (4), 1802-1815 (2004).
  20. Huang, L. S., Doherty, H. K., Herskowitz, I. The Smk1p MAP kinase negatively regulates Gsc2p, a 1,3-beta-glucan synthase, during spore wall morphogenesis in Saccharomyces cerevisiae. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 102 (35), 13431-13436 (2005).
check_url/fr/54584?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Paulissen, S. M., Huang, L. S. Efficient Sporulation of Saccharomyces cerevisiae in a 96 Multiwell Format. J. Vis. Exp. (115), e54584, doi:10.3791/54584 (2016).

View Video