Summary

Effektiv sporulation av<em> Saccharomyces cerevisiae</em> I en 96 multibrønn Format

Published: September 17, 2016
doi:

Summary

Here, sporulation of Saccharomyces cerevisiae is carried out in a 96 multiwell format.

Abstract

During times of nutritional stress, Saccharomyces cerevisiae undergoes gametogenesis, known as sporulation. Diploid yeast cells that are starved for nitrogen and carbon will initiate the sporulation process. The process of sporulation includes meiosis followed by spore formation, where the haploid nuclei are packaged into environmentally resistant spores. We have developed methods for the efficient sporulation of budding yeast in 96 multiwell plates, to increase the throughput of screening yeast cells for sporulation phenotypes. These methods are compatible with screening with yeast containing plasmids requiring nutritional selection, when appropriate minimal media is used, or with screening yeast with genomic alterations, when a rich presporulation regimen is used. We find that for this method, aeration during sporulation is critical for spore formation, and have devised techniques to ensure sufficient aeration that are compatible with the 96 multiwell plate format. Although these methods do not achieve the typical ~80% level of sporulation that can be achieved in large-volume flask based experiments, these methods will reliably achieve about 50-60% level of sporulation in small-volume multiwell plates.

Introduction

Sporulering i det spirende gjær har blitt studert for å gi innsikt i mange aspekter av biologi, herunder kontroll av kromosom segregering under meiose 1, mekanismer for rekombinasjon 2, kontroll av utviklingen av cellesignalisering 3, ernæringsmessige kontroll av utviklingen 4, den transkripsjonelle regulering av utvikling 5, og undersøkelse av sporedannelse 6. Sporedannelse omfatter en ny celledeling hendelse som medfører dannelse av nye membran oppbevaringsrom innenfor modercellen, fulgt av avsetning av et beskyttende sporevegg 6. Disse studiene som undersøker sporedannende celler ofte dra nytte av den raskt sporedannende gjærstamme SK1, som kan gjennomgå prosessen med sporulation i ca 24 timer på en relativt effektiv måte 7,8. Selv om optimalisering av sporulation vilkår for spirende gjær har blitt beskrevet 9-13, disse eksperiments kontrollert sporedannelsen på fast medium eller i større skala flytende kulturer der sporedannelsen utføres ved anvendelse av kultur rør eller kolber.

Her beskriver vi en fremgangsmåte for sporedannende gjær i en 96 flerbrønn plateformat. Vi finner at for denne metoden, er kritisk for synkron og effektiv sporulering lufting, og har utviklet teknikker for å sikre tilstrekkelig sporulering et lite volum for flere brønner format. Sporedannende i en 96 multiwell plate format gjør det mulig for cellene å bli vist ved hjelp av high-throughput teknikker og reagenser som er optimalisert for en multiwell plate format, slik screening for høye kopidempere ved hjelp av en flislagt bibliotek 14-16.

Protocol

1. Forberedelse til sporulation Merk:. Mediene er beskrevet i denne protokollen er laget ved hjelp av standard oppskrifter og metoder 13,17 Tabell 1 viser formuleringen for en L av de ulike mediene som brukes i denne protokollen. <td style="width: 55px…

Representative Results

For å vurdere denne protokollen, ble sporulering effektivitet oppnådd fra sporedannende celler i multibrønnplater (som beskrevet ovenfor) sammenlignet med celler sporulerte ved hjelp av større volumer i kolber (tabell 2). Bruk av multibrønnplater oppnådde ikke den høye effektiviteten sett når sporedannende i kolber, hvor ~ 80% virkningsgrad kan rutinemessig sett. Sporedannende i multibrønnplater med passende lufting (levert av glassperler eller rør bar) k…

Discussion

Her presenterer vi en protokoll for sporedannende SK1 gjær i en 96 multiwell format. Lufting er viktig for effektiv sporulation, som krever bruk av enten en rørepinne eller et glass perle i hver brønn. Når cellene er sporulerte i en 96 flerbrønn plate i en risteinkubator uten enten en vulst eller en rørestav, gjør cellene ikke sporulere effektivt. Bare en liten økning i sporulering effektivitet blir sett når cellene sporulerte uten enten en vulst eller en rørestav i en risteinkubator, forhold til å være ved …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av en Joseph P. Healey stipend fra University of Massachusetts Boston (LSH) og R15 GM86805 fra NIH (LSH). SMP støttes delvis av en Sanofi-Genzyme Fellowship ved University of Massachusetts Boston.

Materials

Nunc 1.3 ml DeepWell Plates ThermoScientific 260251 Used for sporulation
Nunc 2.0 ml DeepWell plates ThermoScientific 278743 Used for presporulation growth, step 1.2.3
3 mm glass bead Fisher 11-312A Used for sporulation
5 mm x 2 mm stir bar, pack of 12 Fisher 14-511-82 Used for sporulation
96 well frogger V&P Scientific VP407 needed for step 1.2
library copier V&P Scientific VP381 needed for step 1.2; to be used with the frogger
rectangular petri dish ThermoScientific 264728 needed for step 1.2
Bacto Peptone BD 211677 needed for media
Yeast Extract BD 212750 needed for media
Bacto Agar BD 212750 needed for media
Dextrose Fisher D16-3 needed for media
Potassium Acetate Fisher P171-500 needed for media
Glycerol Fisher G33-500 needed for media
Black 96 well glass bottom plate MatTek PBK96G-1.5.5-F needed for step 2.4

References

  1. Marston, A. L. Chromosome segregation in budding yeast: sister chromatid cohesion and related mechanisms. Génétique. 196 (1), 31-63 (2014).
  2. Keeney, S., Lange, J., Mohibullah, N. Self-organization of meiotic recombination initiation: general principles and molecular pathways. Annu. Rev. Genet. 48, 187-214 (2014).
  3. Granek, J. A., Kayikci, O., Magwene, P. M. Pleiotropic signaling pathways orchestrate yeast development. Curr. Opin. Microbiol. 14 (6), 676-681 (2011).
  4. Broach, J. R. Nutritional control of growth and development in yeast. Génétique. 192 (1), 73-105 (2012).
  5. Winter, E. The Sum1/Ndt80 transcriptional switch and commitment to meiosis in Saccharomyces cerevisiae. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 76 (1), 1-15 (2012).
  6. Neiman, A. M. Sporulation in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. Génétique. 189 (3), 737-765 (2011).
  7. Padmore, R., Cao, L., Kleckner, N. Temporal comparison of recombination and synaptonemal complex formation during meiosis in S. cerevisiae. Cell. 66 (6), 1239-1256 (1991).
  8. Liti, G., et al. Population genomics of domestic and wild yeasts. Nature. 458 (7236), 337-341 (2009).
  9. McCusker, J. H., Haber, J. E. Efficient sporulation of yeast in media buffered near pH6. J. Bacteriol. 132 (1), 180-185 (1977).
  10. Codon, A. C., Gasent-Ramirez, J. M., Benitez, T. Factors which affect the frequency of sporulation and tetrad formation in Saccharomyces cerevisiae baker’s yeasts. Appl. Environ. Microbiol. 61 (2), 630-638 (1995).
  11. Elrod, S. L., Chen, S. M., Schwartz, K., Shuster, E. O. Optimizing sporulation conditions for different Saccharomyces cerevisiae strain backgrounds. Methods Mol. Biol. 557, 21-26 (2009).
  12. Börner, G. V., Cha, R. S. Analysis of yeast sporulation efficiency, spore viability, and meiotic recombination on solid medium. Cold Spring Harb. Protoc. 2015 (11), 1003-1008 (2015).
  13. Börner, G. V., Cha, R. S. Induction and analysis of synchronous meiotic yeast cultures. Cold Spring Harb. Protocols. (10), 908-913 (2015).
  14. Jones, G. M., et al. A systematic library for comprehensive overexpression screens in Saccharomyces cerevisiae. Nat. Methods. 5 (3), 239-241 (2008).
  15. Fleming, M. S., Gitler, A. D. High-throughput yeast plasmid overexpession screen. J. Vis. Exp. (53), e2836 (2011).
  16. Paulissen, S. M., Slubowski, C. J., Roesner, J. M., Huang, L. S. Timely Closure of the Prospore Membrane Requires SPS1 and SPO77 in Saccharomyces cerevisiae. Génétique. , (2016).
  17. Amberg, D. C., Burke, D., Strathern, J. N. . Methods in Yeast Genetics: A Cold Spring Harbor Labooratory Manual. , (2005).
  18. Parodi, E. M., Baker, C. S., Tetzlaff, C., Villahermosa, S., Huang, L. S. SPO71 mediates prospore membrane size and maturation in Saccharomyces cerevisiae. Eukaryot. Cell. 11 (10), 1191-1200 (2012).
  19. Nakanishi, H., de Los Santos, P., Neiman, A. M. Positive and negative regulation of a SNARE protein by control of intracellular localization. Mol. Biol. Cell. 15 (4), 1802-1815 (2004).
  20. Huang, L. S., Doherty, H. K., Herskowitz, I. The Smk1p MAP kinase negatively regulates Gsc2p, a 1,3-beta-glucan synthase, during spore wall morphogenesis in Saccharomyces cerevisiae. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 102 (35), 13431-13436 (2005).
check_url/fr/54584?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Paulissen, S. M., Huang, L. S. Efficient Sporulation of Saccharomyces cerevisiae in a 96 Multiwell Format. J. Vis. Exp. (115), e54584, doi:10.3791/54584 (2016).

View Video