Summary

מדידה בו זמנית של סידן מיטוכונדריאלי מיטוכונדריאלי ממברנה פוטנציאלית בתאים חיים באמצעות פלורסנט מיקרוסקופית

Published: January 24, 2017
doi:

Summary

המיטוכונדריה יכול לנצל את הפוטנציאל אלקטרוכימי על פני הקרום הפנימי שלהם (Δ Ψm) כדי לעקל סידן (Ca 2 +), המאפשר להם לעצב Ca cytosolic 2+ איתות בתוך התא. אנו מתארים שיטה המיטוכונדריה מדידה בו זמנית ספיגת Ca 2 + ו ΔΨ מ בתאים חיים באמצעות צבעי ניאון ו מיקרוסקופיה confocal.

Abstract

מלבד התפקיד החיוני שלהם ביצירת ATP, המיטוכונדריה גם לשמש סידן מקומי (Ca 2 +) מאגרים להסדיר בחוזקה ריכוז תאיים Ca 2 +. לשם כך, המיטוכונדריה לנצל את הפוטנציאל אלקטרוכימי על פני הקרום הפנימי שלהם (ΔΨ מ ') כדי לעקל Ca 2+. זרם של Ca 2 + לתוך המיטוכונדריה מגרה שלושה דהידרוגנאז שער הגבלת של מעגל החומצה הציטרית, הגדלת העברת אלקטרונים דרך זרחון חמצוני (OXPHOS) תסביכים. גירוי זה מפעיל כיום ΔΨ מ ', אשר מתפזר באופן זמני כמו יוני סידן החיובי לחצות את הקרום הפנימי של המיטוכונדריה לתוך המטריצה המיטוכונדריה.

אנו מתארים כאן שיטה המיטוכונדריה מדידה בו זמנית ספיגת Ca 2 + ו ΔΨ מ בתאים חיים באמצעות מיקרוסקופ confocal. על ידי permeabilizing התאים, Ca המיטוכונדריה 2+ יכוללהימדד באמצעות Ca 2 + אינדיקטור Fluo-4, בבוקר, עם מדידת ΔΨ מ באמצעות אסתר tetramethylrhodamine, מתיל צבע פלואורסצנטי ניאון, פרכלורט (TMRM). היתרון של מערכת זו הוא כי יש חפיפה ספקטרלית מעט מאוד בין צבעי ניאון, המאפשר מדידה מדויקת של המיטוכונדריה Ca 2 + ו ΔΨ מ זמנית. באמצעות תוספת הרציפים של aliquots Ca 2 +, Ca 2 + המיטוכונדריה ספיגה ניתן לנטר, ואת הריכוז שבו Ca 2 + גורם מעבר חדירות קרום המיטוכונדריה ואובדן ΔΨ אני נחוש.

Introduction

המיטוכונדריה לשחק תפקיד חשוב בוויסות ריכוז תאיים Ca 2 + על ידי מתנהג כמו מאגרים מקומיים Ca 2 + 1. Ca 2 + מזין את המיטוכונדריה דרך uniporter Ca 2+, תהליך מונע על ידי שיפוע אלקטרוכימיים שקיים על פני הקרום הפנימי של המיטוכונדריה ΔΨ) 2. פעם בתוך מטריקס המיטוכונדריה, Ca 2 + יכול להפעיל זרחון חמצוני ידי גירוי שלושה דהידרוגנאז ומגביל הקצב של מחזור חומצת לימון 3. גירוי זה מפעיל כיום ΔΨ מ ', אשר מתפזר באופן זמני כמו יוני סידן החיובי לחצות את הקרום הפנימי של המיטוכונדריה לתוך המטריצה המיטוכונדריה. אם ריכוז Ca 2 + בתוך המיטוכונדריה הופך להיות מאוד גבוה, מעבר חדירות המיטוכונדריה יכול להיות יזם, וכתוצאה מכך את הפיזור מ ΔΨ, את cessation של זרחון חמצוני האינדוקציה של מוות של תאי מסלולי איתות 4.

התפקיד החשוב כי המיטוכונדריה לשחק חציצה המרחבי של סידן הסלולר הופך את הניטור המדויק של סידן המיטוכונדריה קריטי. שיטות שונות הוקמו לפקח סידן המיטוכונדריה, כולל את השימוש של צבעים המבוססים rhodamine. צבע אחד כזה, רוד-2, AM, הוא די יעיל מחיצות למיטוכונדריה כדי למדוד את רמות Ca 2+ המיטוכונדריה 5, 6. עם זאת, הטיפול חייב לשמש קצת צבע יצטברו אברונים אחרים, כגון ליפוזומים, או להישאר cytosol התא. אף על פי כן, ניתוחים במורד הזרם יכול להיות מועסק על מנת להבחין אותות אלה מאלה מהמיטוכונדריה 7.

טכניקה נוספת לפקח סידן המיטוכונדריה מנצלת כתב ניאון בונה 8 </s עד>. היתרון של בדיקות המקודדות גנטי אלה הוא שהם יכולים להיות ממוקדים במיוחד אל המיטוכונדריה באמצעות פפטידים אנדוגני N-terminal, למשל אות מיקוד N-terminal של VIII למקטע אדם COX. מערכת זו כבר מועסקת על מנת ליצור בדיקת aequorin במיקוד המיטוכונדריה אשר הוכיחה מאוד שימושי לחקירת סידן המיטוכונדריה איתות 9. החסרון העיקרי של בדיקות מקודדות גנטי אלה הוא שהם צריכים להיות מוחדרים לתאים על ידי ביטוי חולף (וזה לא ריאלי עבור סוגי תאים מסוימים יכולים לייצר תוצאות משתנות) או באמצעות יצירת מנגנוני ביטוי יציבים (אשר זמן רב).

כדי לעקוף את הבעיות שתוארו לעיל, פיתחנו פרוטוקול חדש למדידת המיטוכונדריה Ca 2 + ו ΔΨ מ זמנית. פרוטוקול זה מבוסס על שיטה שתוארה לעיל המוסיפה סידן אקסוגניים לתאי permeabilizeds = "Xref"> 10. יש הפרוטוקול שלנו יש שלושה יתרונות עיקריים על פני שיטות אחרות: ראשית, אנו משתמשים Fluo-4, בבוקר TMRM לפקח Ca המיטוכונדריה 2 + ו מ ΔΨ, שני צבעים שיש תכונות ספקטרליות ברורות מאוד; ושנית, התאים permeabilized כך שהאות Fluo-4 רק מזהה המיטוכונדריה Ca 2+ ולא Ca 2+ מקומי אברונים אחרים או cytosol התא; ושלישי, השימוש Fluo-4 לזהות Ca המיטוכונדריה 2+ מאפשר מכתים תא מהיר ופשוט, שלילת בעיות transfection או טרנספורמציה תא קיימות אם באמצעות בדיקות מקודדות גנטי.

Protocol

1. הכנת תאים לגדל תאים על תרבות מנות תא 10 ס"מ או 75 ס"מ 2 צלוחיות בתקשורת תרבות [10 מ"ל בינוני הנשרים Modified של Dulbecco (DMEM) בתוספת 5% (v / v) בסרום שור עוברית (FBS) ו 1x פניצילין / סטרפטומיצין (P / S )], בעמ '37 ° C / 5% CO 2. …

Representative Results

השתמשנו בפרוטוקול זה כדי לבחון את ההשפעות של מוטציה MT-ND5 על היכולת של המיטוכונדריה בתא 143B למאגר עליות סידן 12. בדוגמה המוצגת כאן, תאים 143B שליטה הועמסו עם TMRM ו Fluo-4, AM לפני permeabilization עם digitonin. אחרי 5 דקות של הדמיה, שמונה תוספות רציפות של די?…

Discussion

סידן משחק תפקיד קריטי בתהליכים סלולריים רבים, כוללים התכווצות שרירים, איתות עצבה תא התפשטות 13. עליות שריכוז יוני הסידן התא הקשורים לעתים קרובות עם הביקוש לאנרגיה, עם סידן מסוגל לעורר זרחון חמצוני המיטוכונדריה ישירות לגדל דור ה- ATP 3. לכן זה חי…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים ד"ר Kirstin Elgass וד"ר שרה קריד מ מונש Micro Imaging לקבלת סיוע טכני, ואת האמון Wellcome ואת המועצה למחקר רפואי בבריטניה לתמיכה כספית. MMcK נתמכת בתכנית אחוות העתיד המועצה למחקר האוסטרלי (FT120100459), קרן ויליאם באקלנד, קרן מחלות מיטוכונדריאלי אוסטרלי (AMDF), מכון הדסון למחקר רפואי אוניברסיטת מונאש. עבודה זו נתמכה על ידי תכנית תמיכת תשתית מבצעית הממשלה ויקטוריאני.

Materials

Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) ThermoFisher 10566016
fetal bovine serum (FBS) ThermoFisher 16000044
1x phosphate buffered saline (PBS) ThermoFisher 10010023
100x penicillin/streptomycin (p/s) ThermoFisher 15140122
0.25% Trypsin / 0.25% EDTA ThermoFisher 25200056
8-well chambered coverslip ibidi 80826
NaCl Sigma-Aldrich 793566
KCl Sigma-Aldrich P9541 
MgSO4 Sigma-Aldrich 746452
KH2PO4 Sigma-Aldrich 795488
D-glucose Sigma-Aldrich G8270 
CaCl2 Sigma-Aldrich 746495
HEPES Sigma-Aldrich H3375 
MgCl2 Sigma-Aldrich M2670 
EGTA Sigma-Aldrich E4378 
HEDTA Sigma-Aldrich H8126 
malate Sigma-Aldrich M1000
glutamate Sigma-Aldrich G1626
ADP Sigma-Aldrich A5285
Ca2+ free Hank’s buffered salt solution (HBSS)  ThermoFisher 14175-095
tetramethylrhodamine, methyl ester, perchlorate (TMRM) ThermoFisher T668
Verapamil Sigma-Aldrich V4629
Fluo-4 acetoxymethyl ester (Fluo-4, AM) ThermoFisher F14201
dimethyl sulfoxide (DMSO) ThermoFisher D12345
carbonyl cyanide p-trifluoromethoxyphenylhydrazone (FCCP) Sigma-Aldrich C2920
digitonin Sigma-Aldrich D141
thapsigargin Sigma-Aldrich T9033
Pluronic F-127  ThermoFisher P3000MP 
hemacytometer VWR 631-0925
10 cm cell culture dishes Corning COR430167
75 cm2 cell culture flasks Corning COR430641

References

  1. Szabadkai, G., Duchen, M. R. Mitochondria: the hub of cellular Ca2+ signaling. Physiology. 23, 84-94 (2008).
  2. Jacobson, J., Duchen, M. R. Interplay between mitochondria and cellular calcium signalling. Mol. Cell. Biochem. 256-257, 209-218 (2004).
  3. Bhosale, G., Sharpe, J. A., Sundier, S. Y., Duchen, M. R. Calcium signaling as a mediator of cell energy demand and a trigger to cell. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1350, 107-116 (2015).
  4. Duchen, M. R. Mitochondria calcium-dependent neuronal death and neurodegenerative disease. Pflugers Arch. 464, 111-121 (2012).
  5. Drummond, R. M., Mix, T. C., Tuft, R. A., Walsh, J. V., Fay, F. S. Mitochondrial Ca2+ homeostasis during Ca2+ influx and Ca2+ release in gastric myocytes from Bufo marinus. J. Physiol. 522, 375-390 (2000).
  6. Hajnoczky, G., Robb-Gaspers, L. D., Seitz, M. B., Thomas, A. P. Decoding of cytosolic calcium oscillations in the mitochondria. Cell. 82, 415-424 (1995).
  7. Davidson, S. M., Duchen, M. R. Imaging mitochondrial calcium signalling with fluorescent probes and single or two photon confocal microscopy. Methods Mol. Biol. 810, 219-234 (2012).
  8. Pozzan, T., Rudolf, R. Measurements of mitochondrial calcium in vivo. Biochim. Biophys. Acta. 1787, 1317-1323 (2009).
  9. Rizzuto, R., Simpson, A. W., Brini, M., Pozzan, T. Rapid changes of mitochondrial Ca2+ revealed by specifically targeted recombinant aequorin. Nature. 358, 325-327 (1992).
  10. Pitter, J. G., Maechler, P., Wollheim, C. B., Spat, A. Mitochondria respond to Ca2+ already in the submicromolar range: correlation with redox state. Cell Calcium. 31, 97-104 (2002).
  11. Schoenmakers, T. J., Visser, G. J., Flik, G., Theuvenet, A. P. CHELATOR: an improved method for computing metal ion concentrations in physiological solutions. BioTechniques. 12, 870-879 (1992).
  12. McKenzie, M., Duchen, M. R. Impaired Cellular Bioenergetics Causes Mitochondrial Calcium Handling Defects in MT-ND5 Mutant Cybrids. PLoS One. 11, e0154371 (2016).
  13. Berridge, M. J., Lipp, P., Bootman, M. D. The versatility and universality of calcium signalling. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 1, 11-21 (2000).
  14. Homolya, L., Hollo, Z., Germann, U. A., Pastan, I., Gottesman, M. M., Sarkadi, B. Fluorescent cellular indicators are extruded by the multidrug resistance protein. J. Biol. Chem. 268, 21493-21496 (1993).
  15. Fujimoto, K., Chen, Y., Polonsky, K. S., Dorn, G. W. . 2. n. d. Targeting cyclophilin D and the mitochondrial permeability transition enhances beta-cell survival and prevents diabetes in Pdx1 deficiency. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 10214-10219 (2010).
  16. Rao, V. K., Carlson, E. A., Yan, S. S. Mitochondrial permeability transition pore is a potential drug target for neurodegeneration. Biochim. Biophys. Acta. 1842, 1267-1272 (2014).
check_url/55166?article_type=t

Play Video

Cite This Article
McKenzie, M., Lim, S. C., Duchen, M. R. Simultaneous Measurement of Mitochondrial Calcium and Mitochondrial Membrane Potential in Live Cells by Fluorescent Microscopy. J. Vis. Exp. (119), e55166, doi:10.3791/55166 (2017).

View Video