Summary

Estudo das interações proteína-proteína em pesquisa de autofagia

Published: September 09, 2017
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Summary

Apresentados aqui são duas técnicas de pesquisa de interação da proteína-proteína baseada em anticorpos: imunofluorescência e imunoprecipitação. Estas técnicas são apropriadas para estudar interações físicas entre proteínas para a descoberta de novos componentes das vias de sinalização celulares e dinâmica de compreensão da proteína.

Abstract

Interações da proteína-proteína são importantes para cascatas de sinalização celular de compreensão e identificação via novela componentes e dinâmica da proteína. A maioria dos celulares atividades exigem interações físicas entre proteínas. Para analisar e mapear essas interações, foram desenvolvidas várias técnicas experimentais como ferramentas de Bioinformática. Autofagia é um celular, mecanismo que permite que as células lidar com estressores diferentes, incluindo hipoxia, produtos químicos e nutriente privação de reciclagem. Para entender melhor a sinalização de eventos relacionados a autofagia e descobrir novos fatores que regulam a complexos de proteínas em autofagia, realizamos telas de interação da proteína-proteína. Validação destes resultados de rastreio requer o uso de técnicas de imunoprecipitação e imunofluorescência. Neste sistema, interações específicas relacionadas a autofagia da proteína-proteína que descobrimos foram testadas em Neuro2A (N2A) e HEK293T linhas de celulares. Detalhes dos procedimentos técnicos utilizados são explicadas neste documento visualizado experimento.

Introduction

Macroautophagy (autofagia, neste documento) é um mecanismo de estresse celular que se caracteriza por sequestro de citoplasma em massa, proteínas e organelas em vesículas de membrana dupla chamadas vesículas autophagic. Através da fusão da camada externa da membrana dupla, vesículas autophagic e sua carga são entregues aos lisossomos e degradado nele1. Autofagia ocorre em níveis basais baixos em todos os tipos de células e em todos os organismos, realizando funções homeostáticas como degradação proteica e volume de negócios das organelas (por exemplo, as mitocôndrias). Sob condições que levaram ao estresse celular, tais como a fome, a autofagia é rapidamente upregulated e permite que a célula manter os níveis de energia e metabolismo básico1,2,3.

Cerca de 30 genes de autofagia foram clonados de levedura e seus produtos de proteína foram mostrados a desempenhar um papel em várias etapas do processo de autophagic, incluindo a nucleação de vesículas, a expansão, a fusão de vesículas atrasado endosome/lisossomo, e degradação de carga 4 , 5. Orthologs da maioria destes genes têm sido identificados e estudos em vários organismos confirmaram a preservação de suas funções celulares6. Estudos na última década que mostraram vários autofagia relacionados com complexos de proteínas e interações da proteína-proteína existem e que eles governam vias de autofagia de forma intrincada e controlada. Interseções, backups, feedback e feedforward mecanismos existem, e eles permitem que a célula coordenar autofagia com outros eventos relacionados (tais como biogênese lisossoma secreção vesicular, CDDP triagem e transporte7, etc.) Em uma tela de imparcial fermento-dois híbrido usando a proteína de autofagia ATG5 como uma isca, (ATG5 é uma proteína de autofagia chave envolvidos no sistema de conjugação de E2, como que medeia LC3 lipidation de fome induzida autofagia), nós identificamos Receptor ativado C-quinase 1 (RACK1; GNB2L1) como um forte interactor e um componente de autofagia romance8. Importante, a tela mostrou que a interação ATG5-RACK1 era indispensável para indução de autofagia por indutores de autofagia clássica (ou seja, à fome e mTOR inibição).

Métodos baseados em imunofluorescência são comumente usados para monitorar as interações da proteína-proteína. Estas técnicas são principalmente à base de anticorpos e ajudam a visualizar as interações e confirmar suas localizações celulares. Nesta técnica, fluorescente tag anticorpos conjugados que são específicos para as proteínas de interesse são geralmente usadas para a coloração específica. Cada proteína pode ser rotulada com anticorpos acoplados a corantes fluorescentes diferentes. Usando anticorpos específicos de proteínas, uma sobreposição no sinal quando imagens são mescladas indica a localização co das proteínas sob microscopia confocal. A técnica é aplicável para as células ou tecidos mesmo. Técnicas de imunofluorescência fornecem pistas sobre a dinâmica de interação e ajudam a identificar o tamanho e a distribuição de complexos de proteínas, enquanto o rastreamento de alterações gerais na morfologia celular sob diferentes condições de9. Imunoprecipitação é outra técnica comumente usada de anticorpo-baseado que permite a análise de interações entre proteínas10de dado. Usando esta técnica, as proteínas de interesse são isoladas de células ou tecidos extrai usando anticorpos específicos, originando a precipitação de proteínas em um complexo ou em contacto com uma proteína de interesse. Co-imunoprecipitação, onde a proteína e sua co interactor são detectados, revela não só a interação entre as duas proteínas, mas pode medir a sua força de interação sob circunstâncias diferentes11.

Este protocolo descreve em técnicas de chave de detalhe que foram usadas para confirmar e caracterizar a interação ATG5-RACK1 e RACK1-LC3. O foco é sobre as técnicas de imunofluorescência e imunoprecipitação, com ênfase de passos críticos e armadilhas para pesquisa de autofagia, bem como sugestões de resolução de problemas.

Protocol

1. imunofluorescência HEK293T manter rim embrionário humano células em meio de glicose alta DMEM, e pilhas de neuroblasto N2A do rato em DMEM baixa média de glicose, em um 5% CO 2-umidificada incubadora a 37 ° C. Complementar os meios de cultura com soro bovino fetal 10% inactivadas pelo calor (FBS), antibióticos (50 U/mL penicilina, estreptomicina 50 de µ g/mL) e L-glutamina (2mm). Separar as células usando a tripsina 0,25%. Primeiro remova a mídia de cultura celular e depois lav…

Representative Results

Na Figura 1 um exemplo de localização de co é mostrado o resultado obtido usando este protocolo. Uma figura do nosso papel recente é apresentada8. Aqui, proteína endógena RACK1 estava manchada de verde, enquanto LC3 endógena estava manchado de vermelho. Os pontos amarelos que são observados nas fotos mescladas indicam sites de sobreposição entre os sinais verdes e vermelhos. Assim, os pontos amarelos representam a localização co parcial destas duas proteí…

Discussion

As técnicas de imunoprecipitação e imunofluorescência são cruciais para o estudo das interações da proteína-proteína. Embora estas duas técnicas são comumente usadas e bem estabelecida, diversos critérios devem ser considerados para definir a qualidade das experiências ao usar estas técnicas.

Anticorpos primários, primeiros que são usados em testes devem ser específicos para as proteínas de interesse. Para garantir isso, use knockdowns shRNA ou células de nocaute para testar…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pelo científico e tecnológico pesquisa Conselho da Turquia (TUBITAK) 1001 Grant 107T153, da Universidade Sabanci. SEB e NMK são suportados por uma bolsa TUBITAK BIDEB 2211 para estudos de doutorado.

Materials

Trypsin EDTA Solution A Biological Industries  BI03-050-1A
PBS GE Healthcare SH-30256.01
DMEM (high glucose) Sigma  5671
DMEM (low glucose) Sigma 5546
Trypan Blue Sigma T8154
Hemocytometer Sigma Z359629-1EA
coverslides Jena Bioscience CSL-103
slides Isolab I.075.02.005
Poly-L-Lysine Sigma  P8920
Torin Tocris 4247
DMSO Sigma VWRSAD2650
EBSS Biological Industries  BI02-010-1A
Paraformaldehyde (PFA) Sigma 15812-7
BSA Sigma  A4503
Saponin Sigma 84510
LC3 Antibody Sigma L7543
Anti-Rabbit IgG Alexa Fluor 568  Invitrogen A11011
RACK1 Antibody Santa Cruz Biotechnology  sc-17754
Anti-Mouse IgG Alexa Fluor 488  Invitrogen A11001
NP-40 Applichem A16694.0250
Sodium Chloride Applichem A9242.5000
Sodium deoxycholate Sigma 30970
Sodium dodecyl sulphate (SDS) Biochemika A2572
Trizma Base Sigma T1503
Triton-X  Applichem 4975
Sodium orthovanadate Sigma 450243
ATG5 Antibody Sigma A0856
Glycerol Applichem A4453
β-Mercaptoethanol  Applichem A1108.0250
Bromophenol blue  Applichem A3640.0005
Non-Fat milk Applichem A0830
Tween 20 Sigma P5927
Sodium Azide Riedel de Haen 13412
Phenol red  Sigma 114537-5G
anti-rabbit IgG , HRP conjugated Jackson Immuno.  1110305144
Luminol Fluka 9253
Coumeric Acid Sigma C9008
Hydrogen Peroxide Merck K35522500604
anti mouse IgG, HRP conjugated Jackson Immuno. 115035003
β-Actin Antibody Sigma  A5441
Normal rabbit serum Santa Cruz Biotechnology sc-2027
Rapamycin Sigma  R0395
Protein A-Agarose Beads Santa Cruz Biotechnology sc-2001
fetal bovine serum  Biowest S1810-500
penicillin/streptomycin solution Biological Industries  03-031-1B
L-glutamine  Biological Industries  BI03-020-1B
Bradford Solution Sigma 6916
Nitocellulose membrane GE Healthcare A10083108
X-ray Films Fujifilm 47410 19289
Protease inhibitor Sigma P8340

References

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check_url/fr/55881?article_type=t

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Citer Cet Article
Erbil-Bilir, S., Kocaturk, N. M., Yayli, M., Gozuacik, D. Study of Protein-protein Interactions in Autophagy Research. J. Vis. Exp. (127), e55881, doi:10.3791/55881 (2017).

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