Summary
As análises de expressão do promotor são cruciais para melhorar a compreensão da regulação gênica e a spatiotemporal expressão de genes-alvo. Aqui apresentamos um protocolo para identificar, isolar e clonar um promotor da planta. Além disso, descrevemos a caracterização do promotor nódulo específicos nas raízes peludo feijão comum.
Abstract
As montante sequências do gene sequências de codificação são denominadas como sequências de promotor. Estudar os padrões de expressão dos promotores são muito importantes na compreensão da regulação gênica e padrões spatiotemporal expressão de genes-alvo. Por outro lado, também é fundamental para estabelecer instrumentos de avaliação do promotor e técnicas de transformação genética rápida, eficiente e reprodutível. Neste estudo, investigamos o padrão de expressão spatiotemporal promotor de início (NIN) da linha específica simbiose nódulo de Phaseolus vulgaris nas raízes transgénicas peludas. Usando bancos de dados do genoma de plantas e ferramentas de análise, identificamos, isolado e clonou o promotor NIN de p. vulgaris em uma fusão transcriptional para o repórter quimérico β-glucuronidase (GUS) GUS-enhanced::GFP. Além disso, este protocolo descreve um sistema de transformação genética no p. vulgaris , usando raízes peludas Agrobacterium rhizogenes induzido rápido e versátil. Este sistema gera raízes peludo de ≥2 cm em 10 a 12 dias após a transformação. Em seguida, avaliamos a expressão spatiotemporal de promotor do NIN em raízes peludas de Rhizobium inoculado em intervalos periódicos de pós inoculação. Nossos resultados retratados pela atividade de GUS mostram que o promotor NIN era ativo durante o processo de nodulação. Juntos, o presente protocolo demonstra como identificar, isolar, clonar e caracterizar um promotor de planta nas raízes peludo feijão comum. Além disso, este protocolo é fácil de usar em laboratórios não especializados.
Introduction
Os promotores são importantes ferramentas moleculares biológicas que desempenham um papel crucial na compreensão do Regulamento da expressão de genes de interesse. Os promotores são sequências de ADN, situadas a montante da tradução códon de iniciação do gene sequences e carregam a informação central reguladora de genes; Portanto, sua correta anotação e caracterização são vitais para entender a função dos genes. Dependendo dos padrões de expressão, promotores da planta são classificados como constitutivas, tecido-específica, ou desenvolvimento-estágio-específicos e inducible1. Avanços em tecnologias de transcriptomic, melhorias na modelagem de computador e a disponibilidade de um número crescente de sequências do genoma para diferentes espécies de plantas têm facilitado a previsão em grande escala do promotor sequências2.
Por outro lado, também é fundamental para estabelecer instrumentos de avaliação do promotor e técnicas de transformação genética rápida, eficiente e reprodutível. Ao contrário das outras plantas de modelo, a caracterização funcional de genes de vegetal (p. vulgaris) feijão comum é impedida principalmente devido à natureza recalcitrante de Phaseolus SP. para transformação genética estável. Sistemas de transformação transitória servem como uma alternativa para a genética de estudos de caracterização funcional3. Na pesquisa de simbiose vegetal, a interação entre a planta hospedeira de vegetal e linha bactéria é um dos sistemas mais tractable modelo para a análise funcional de genes específicos do nódulo e estudos de promotor. Até agora, vários promotores de vegetal relacionados com estes simbiose tem sido caracterizada, Viz, Medicago truncatula PT44, SWEET115, Lotus japonicus Cyclops, UBQ6, VAG17, Glycine máx PT5 8, Exo70J9, p. vulgaris RbohB10,11,12, TRE113, PI3K14, TOR15, etc. Cis elementos influenciam diretamente a regulação gênica. O fator de transcrição ENBP1A vincula-se a uma região reguladora Cis (−692 bp) de início nodulin VfENOD12, e isso facilita a expressão de um gene repórter no primordia nódulo de Vicia faba16. Substituição das regiões reguladoras Cis (−161 a −48 bp) promotor da específicas do nódulo leghemoglobin GLB3 com a heteróloga truncado promotores δ-p35S e δ-pNOS, resultou em uma perda de especificidade do nódulo e reduzida actividade promotora17 .
Relatórios anteriores mostram que o fator de transcrição NIN é necessária para o início da linha infecção nas células da raiz do cabelo e também é essencial para a organogênese nódulo em L. japonicus18. No presente estudo, descrevemos um protocolo para a identificação, isolamento, clonagem e caracterização do promotor específico nódulo nas raízes peludo feijão comum. Para conseguir isso, selecionamos um linha promotor de NIN simbiose específico de p. vulgaris e clonado em uma fusão transcriptional para o repórter quimérico GUS-enhanced::GFP. Além disso, este protocolo descreve um sistema de transformação genética no p. vulgaris , usando a. rhizogenes induzido peludas raízes rápido e versátil. Este sistema gera raízes peludas em menos de 2 semanas após a transformação. Finalmente, avaliamos a expressão spatiotemporal de promotor do NIN em nódulos de raiz rizóbios colonizados por GUS coloração.
O procedimento descrito aqui pode ser útil não só para o estudo da nodulação e mycorrhization11 dos legumes, mas também para o estudo de padrões de expressão promotor em raízes19. Além disso, este protocolo é fácil de usar em laboratórios não especializados.
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Protocol
1. identificação, isolamento e clonagem de P. Vulgaris NIN promotor
- Identifica a sequência do promotor para o gene de interesse. Existem vários bancos de dados do genoma e a ferramentas de análise disponíveis para as plantas tais como Phytozome, plantas de Ensembl, NCBI, etc A vegetal promotor p. vulgaris NIN (PvNIN; Phvul.009G115800) foi utilizado no presente estudo20.
- Projeto oligos para Gateway ou enzima de restrição tradicional dependendo do sistema de vetor de clonagem usado (figura 1A).
Nota: Padrão (bp 25-35), as primeiras demão demolhado funcionam bem. Sequências de oligo reversa que flanquean entre o promotor e gene são aconselháveis. - Amplificar a região promotora de PvNIN (ou região promotora do gene de interesse) de recém isoladas p. vulgaris DNA genômico, usando o conjunto de oligo promotor específico. Use um polymerase de alta fidelidade com as seguintes condições PCR: 95 ° C por 5 min; 30 ciclos (95 ° C por 30 s, 55 ° C por 30 s, 72 ° C por 1 min); e 72 ° C por 5 min.
- Execute o fragmento amplificado em gel de agarose 1% em 60 V em uma bandeja de gel de 7 x 10 cm e eluir o amplicon correspondente (700 bp, figura 1B) e clone no vetor pENTR/D-TOPO de acordo com as instruções do fabricante.
- 2 µ l da reação em competentes de Escherichia coli de transformar células usando as instruções do fabricante e placa 150 µ l da mistura de transformação no irmão lisogenia (LB), suplementado com canamicina 50 mg/L (Kan50). Crescem as células chapeadas a 37 ° C durante a noite.
- Escolha 3-6 colônias e cultura-los durante a noite em meio LB contendo Kan50. Isolar o plasmídeo usando o método de escolha e analisar o plasmídeo por PCR usando o vetor específico M13 oligos. Para o PCR, uso 100 ng do plasmídeo, 12:03 de oligos, 10 X buffer de PCR, 0,5 U Taq DNA polimerase e 10mm dNTPs.
- Use as seguintes condições de amplificação do PCR; 95 ° C por 3 min; 30 ciclos (95 ° C por 30 s, 58 ° C por 30 s, 72 ° C para 75 s); e 72 ° C por 7 min. Visualizar os produtos PCR em um gel de agarose 1%. Certifique-se de que as inserções corretas tem uma banda em 1.024 bp e vetores sem inserções de vontade ter uma banda de bp 324 (Figura 1).
- Realizar a reação de LR entre um vetor de entrada (pENTR/D-TOPO-PvNIN) e destino vector pBGWFS7.021 , usando uma mistura de enzima comercial de acordo com as instruções do fabricante.
- 2 µ l de reação de LR em competentes de Escherichia coli de transformar células usando técnicas padrão, como descrito nas instruções do fabricante e placa 150 µ l de mistura de transformação na LB suplementado com 100 mg/L de espectinomicina (Spe100). Crescem as células chapeadas a 37 ° C durante a noite.
- Escolher a aproximadamente 5 colônias e cultura-los durante a noite em meio LB contendo Spe100. Isolar o plasmídeo de DNA usando um método de escolha e analisar o plasmídeo por PCR usando os oligos promotor específico.
- Use as condições PCR na etapa 1.3. Visualize os produtos PCR em um gel de agarose a 1% para confirmar a amplificação. Amplicons são 700 bp.
- Sequenciar o plasmídeo positivo pBGWFS7.0/PvNIN::GUS-GFP (Figura 1) com os oligos promotor específico para verificar a autenticidade da inserção.
- Transforme os plasmideos cepa da . rhizogenes K599 (no entanto, quaisquer outras cepas da . rhizogenes podem ser usadas). Adicionar 2 µ l da preparação do plasmídeo de 50 µ l de células de electrocompetent e electroporate em uma cubeta de 1 mm, com as seguintes configurações: 1,8 kV, 25 µF e 200 Ω.
- Recuperar as células em ~ 500 µ l de meio SOC e agitar a 28 ° C, durante 2 h. placa na LB-Spe100 e crescer a 28 ° C durante 2 dias.
- Realizar triagem de colônia, como mencionado na etapa 1.7 e usar as condições PCR como no passo 1.3. Fazer estoques de glicerol a partir de clones positivos e armazená-los em-80 ° C.
- Use a. rhizogenes cultura, abrigando o vetor vazio pBGWFS7.0 como controlo negativo.
2. A. Rhizogenes transformado peludas raízes do feijão comum
- Esterilizar as sementes do feijão (p. vulgaris CV Jamapa Negro) (aproximadamente 20) em 50 mL de etanol a 96% para 1 min e descartar o etanol; em seguida, adicione 50 mL de 20% de alvejante (hipoclorito de sódio) por 10 min, com a mistura constante em uma capa de fluxo laminar. Remover a lixívia e lavar em água estéril excesso 3 vezes.
Nota: Outras cultivares de p. vulgaris podem ser usados para indução de raiz peludo. - Germinar as sementes esterilizadas em papéis de filtro estéril umedecidos com Broughton & Dilworth (B & D) solução22 (tabela 1) para 2 dias no escuro a 28 ° C.
- O dia antes da transformação, prepare o seguinte:
- Raia fora 150 µ l da . rhizogenes cultura, abrigando o vetor binário (preparado em etapas 1.13 e 1.14) no sólido Spe100 LB e crescer a 28 ° C durante a noite.
- Encher um tubo de 15ml com B & solução D e substituir a tampa de rosca com folha de alumínio em camadas duplas. Montar um tubo de vidro 22cm contendo 10 mL de B & solução D (Figura 2) e autoclave isso.
- No dia da transformação, reúna os seguintes materiais esterilizados em uma capa de fluxo laminar: germinadas as sementes da etapa 2.2, placa de cultura de passo 2.3.1, tubos da etapa 2.3.2, água bidestilada estéril (10 mL), pipetas e pontas de pipetas, Pinças esterilizadas, e seringas de 3 mL.
- Use uma ponta de 200 µ l dobrado para raspar a. rhizogenes células da placa em um tubo de microcentrifugadora e ressuspender em 1 mL de água estéril dupla. Da mesma forma, prepare células de controle de vetor separadamente.
- Misture as células suavemente para ressuspender. Fazer não o vórtice.
- Faça um buraco de 3 mm sobre a folha de alumínio dos tubos da etapa 2.3.2 usando uma ponta de pipeta estéril.
- Coletar as células (controle de um promotor ou vetor) da etapa 2.5 com a seringa e picar ligeiramente o hipocótilo das sementes germinadas com a ponta da agulha (Figura 2).
Nota: Certifique-se que a agulha penetra (4 - 6 vezes) o tecido vascular e injetar pequenas (~ 5 µ l) gotas das células na ferida em posições diferentes em torno do hypocotyl. - Insira cuidadosamente as raízes das mudas injetadas no orifício de 3 mm do tubo 15 mL contendo B & solução D. Retornar a instalação inteira para o mL 22 tubos de vidro e selá-los para manter a umidade.
- Incubar os tubos em uma câmara de crescimento a 28 ° C, com 16 h luz: 8 h fotoperíodo escuro.
Notas: 3-4 dias após a incubação, as plantas crescem até a borda de tubos de vidro de 22 mL.
Nota: É importante manter o B & solução D constantemente em tubos plásticos e de vidro.
3. promotor análise: NIN promotor expressão em linha nódulos do feijão comum
- Para a indução de nódulos de raiz, inocular Rhizobium tropici ou Rhizobium etli (que são compatíveis para o feijão comum) em 100 mL de meio PY (peptona 0,5 g, 0,3 g de extrato de levedura) suplementado com 700 mM CaCl2 e 20 mg mL− 1 ácido nalidíxico. Incube a 30 ° C por 24 h com agitação a 300 rpm.
Nota: Qualquer antibiótico específico pode ser usado no caso de transgénicos Rhizobium. - As células em uma centrífuga para 3 min a 2.800 x g, à temperatura de pelotas e ressuspender em 10 mL de MgSO4a 10 mm. Ajuste o OD de células de 0,6 em OD600 por diluição com 10 mM de MgSO4.
- Inocule 1-2 mL de cultura (preparada a partir de passo 3.2) por planta (tanto o promotor e o vetor de controle) para induzir o crescimento de nódulos nas raízes peludos. Irrigar as plantas com B & solução D com nitrogênio limitado (2mm KNO3) para promover a nodulação.
- Dependendo da necessidade experimental, recolha as raízes peludas em pontos diferentes do tempo. Coletamos amostras para o estudo de tópicos de infecção entre 3 a 5 dias pós inoculação (dpi).
Nota: Nódulo Primordial e jovens nódulos podem ser estudados em dpi 6-9 e 10-12 dias dpi, respectivamente. Finalmente, nódulos maduros e funcionais podem ser estudados em dpi de 14-21 e nódulos de senesced em > 28 dpi. - Processe os raiz/nódulos para a atividade de genes repórter (GUS ou GFP). Analise a atividade do GUS de acordo com o protocolo descrito por Jefferson23. Observe as boas práticas agrícolas sob um microscópio de fluorescência. Excitar a fluorescência de GFP com um laser de íon argônio azul (488 nm) e recolher a fluorescência emitida de 510 a 540 nm.
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Representative Results
O objetivo deste estudo foi avaliar o padrão de expressão spatiotemporal de nódulo específicas p. vulgaris NIN. Para fazer isso, uma região de bp 700 montante de códon de iniciação da tradução do gene do NIN foi selecionado e um conjunto de oligos foi projetado como ilustrado na figura 1A. Usando um polymerase de alta fidelidade, o fragmento de promotor NIN foi amplificado, isolado (figura 1B) e clonado na pBGWFS7.0 do vetor binário de destino (Figura 1), através de uma abordagem de Gateway para gerar uma fusão transcriptional para o quimérico repórter GUS aprimorado GFP (pBGWFS7.0/PvNIN::GUS-GFP). A construção do vetor de pBGWFS7.0/PvNIN::GUS-GFP normalmente gera centenas de clones independentes. Rastreio de colônia por PCR com gene-específico oligos facilmente identifica os clones corretos (Figura 2D). O plasmídeo PCR positivo foi que Sanger sequenciados com os oligos promotor específico para verificar a autenticidade da inserção.
Manter alta umidade durante todo o experimento é necessária para a indução de calos e raízes peludas. No local do ferimento, calli são geralmente observados em 5 a 7 dias (Figura 2J) e ≥ 2cm peludo raízes são observadas em 10 a 12 dias após a transformação. A maioria da . rhizogenes transformou plantas com sucesso para produzir raízes peludas por 2 semanas (Figura 2 K). No entanto, o número e comprimento das raízes peludos podem ser variável. Portanto, selecione as raízes mais vigorosamente crescentes para análise e novas experiências. Impostos especiais de consumo a raiz primária pelo corte da haste 2 cm abaixo das raizes peludas e transplantá-las para vasos contendo vermiculita estéril (Figura 2 L) ou em um sistema de hidroponia.
Para estudar a expressão spatiotemporal do promotor NIN nódulo específicos, peludas raízes foram inoculadas com r. tropici, e GUS atividade foi observada no pós-inoculação de intervalos periódicos dependendo da necessidade experimental. Inoculação com r. tropici induzida uma forte expressão de GUS nas raízes transgénicas, indicando que os rizóbios induz a expressão de NIN no feijão comum (Figura 3A). Além disso, a amostragem em dpi 6-9 mostrou a expressão de GUS em células de raiz do cabelo de Rhizobium infectadas (Figura 3B). Primórdio do nódulo de Phaseolus , jovem e maduro nódulos e também demonstrou expressão NIN (Figura 3). Em todas as fases da nodulação, nenhuma tal expressão de GUS foi visto nas raízes controle vetorial (Figura 3D, 3E, 3F).
Figura 1 : Esboço de P. vulgaris NIN estrutura genética e clonagem. (A), A representação esquemática da estrutura do gene de NIN mostrando 5' UTR (verde), 4 exões, 3 intrões e 3' UTR (vermelho) no número de cromossomas 9 de p. vulgaris. Montante para o codão de iniciação do NIN tradução ATG, mostra uma região promotora na quais oligos foram projetados. FO, oligo para a frente; RO, oligo inverso; ATG, códon de início; TAA, códon de parada. (B) PvNIN região promotora foi amplificado de recém isolado DNA genômico p. vulgaris , usando o conjunto de oligo promotor específico. M, escada de 1 Kb; 1, reação de PCR com gDNA mostrando amplicon tamanho de 700 bp; 2, reação de PCR sem gDNA (-ve controle). (C) seleção dos Plasmideos pENTR/D-TOPO-PvNIN por PCR usando o vetor específico M13 oligos. Corretas inserções tem uma banda no 1.024 bp (pista 3-6) e vetores sem inserções terá uma banda bp 324 (pista 1 - 2). (D) promotor mapa binário vetor de expressão utilizado no presente estudo, apresentando de vetor pBGWFS7.0 PvNIN promotor em fusão com GUS e GFP. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2: A. rhizogenes transformado peludas raízes do feijão comum. (A) a esterilização de sementes de p. vulgaris CV. Negro Jamapa germinando no papel de filtro estéril. (B) sementes, casaco removido. (C) tubo setup para indução de raiz peludo. (D) raspando a. rhizogenes cultura (pNIN & controle). (E) a. rhizogenes cultura resuspended no estéril de água destilada. (F, G) Injeção de células bacterianas em hypocotyles. (H) tubo de instalação com mudas de Phaseolus injetadas com células bacterianas. (Eu, J) Calli formada no local ferido dpi 5-7. (K) peludo raízes 15 dpi (L) extirpando as raízes da torneira 2 cm abaixo do local da indução de raiz peludo. (M) composto plantas transplantadas em vermiculita estéril inoculadas com r. tropici. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3 : Análise do promotor de P. vulgaris NIN em transgênicos p. vulgaris raízes. Padrão espacial e temporal de NIN expressão revelada por uma construção promoterNIN::GUS-GFP em raízes peludas transgénicas incubadas com GUS como substrato. Imagens de microscópio óptico de PvNIN: GUS: (A) raízes inoculadas com r. tropici, expressão de GUS (B) em cabelos de raiz enrolados e (C) jovens nódulos. Imagens de controle (vetor vazio) não mostrando nenhuma tal expressão de GUS em (D) raízes inoculadas com r. tropici, (E) ondulados cabelos de raiz e nódulos jovens (F). Ur, raiz do cabelo. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
Durante a análise funcional de genes, o estudo de padrões de expressão genética desempenha um papel crucial na compreensão do Regulamento espacial e temporal de genes na vivo. Um método conhecido para estudar os padrões de expressão do gene é para clonar a região de promotor do gene de interesse, montante de genes repórter como genes marcador fluorescente (GFP, RFP, etc.) ou β-glucuronidase. Aqui, selecionamos uma região promotora do gene específico da raiz nódulo simbiose (RNS), NIN, para estudar os padrões de expressão espaço-temporal em p. vulgaris durante RNS. A sequência do promotor selecionado foi clonada montante para repórteres GFP::GUS usando o método de Gateway em um vetor de expressão do promotor.
Descrevemos a expressão do promotor específico de simbiose no sistema radicular peludo de p. vulgaris. O sistema radicular peludo tem sido amplamente utilizado para a caracterização funcional de genes, incluindo RNAi mediada gene derrubar, gravidez ectópica expressão constitutiva de genes, expressão do promotor e a localização da proteína em culturas recalcitrantes. As principais vantagens do sistema são que é fácil, reprodutível e confiável e ao mesmo tempo não mão de obra intensiva. O sistema radicular peludo tem sido adotado com sucesso em outras leguminosas de colheita como G. máximo24 M. truncatula25, L. japonicus26,27, tomate28, etc, com as modificações necessárias. Além disso, a ferramenta pode ser adotada em outras espécies vegetal e não vegetal quando otimizado para o apropriado a. rhizogenes Coe, método de inoculação e condições de crescimento.
Há muitos parâmetros críticos. Ao selecionar região promotora, deve ter cuidado para projetar os oligos que poderia amplificar os elementos necessários de promotor, começando da região de rio acima do local de início da tradução da proteína codificação de genes; análise do promotor deve ser efectuada usando o software disponível para coletar informações sobre os fatores de transcrição, vinculando a região reguladora. Tomar cuidado ao induzir raízes peludas: injetar mudas na fase apropriada; durante a injeção, certifique-se de que a agulha não passa através do hypocotyle; e manter condições de umidade altas. Além disso, enquanto estudava os perfis de expressão de promotor em raízes peludas, peludas raízes produzidas pela . rhizogenes não são sempre transformadas, e, portanto, é importante confirmar a natureza transformada de raízes usando GFP ou GUS repórteres antes de realização de estudos de expressão do promotor. Adequado devem ser escolhidas de estirpes de Rhizobium e as concentrações de Rhizobium devem ser ajustadas conforme indicado no protocolo. Amostragem nas fases apropriadas post inoculação é crucial para documentar a expressão espaço-temporal do promotor em diferentes estágios de RNS.
Produção de raiz peludo a. rhizogenes transformado é um dos métodos alternativos mais rápidos e eficientes para gerar plantas compostas em p. vulgaris. Estas plantas compostas não podem produzir sementes transgênicas, mas podem produzir raízes transgénicas dentro de alguns dias. Neste protocolo, ao contrário de outros métodos29, os tubos fechados mantenham constante umidade elevada para promover mais rápido em 10 dias dpi peludas raízes.
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Disclosures
Os autores não têm nada para divulgar.
Acknowledgments
Este trabalho foi parcialmente financiado pela Dirección General de Asuntos del pessoal Académico, DGAPA/PAPIIT-UNAM (conceder n. IN219916 Wildes e IA205117 a M-K. A) e o Consejo Nacional de Ciencia y Tecnològia (CONACYT grant n º 240614 M.L.).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Primers for qRT-PCR assay | |||
| pNIN Forward | CACC ATA GCT CCC CAA AAT GGT AT | ||
| pNIN Reverse | CAT CTT CCT TCC ACT AAC TAA C | ||
| M13 Forward | GTA AAA CGA CGG CCA G | ||
| M13 Reverse | CAG GAA ACA GCT ATG AC | ||
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| REAGENTS | |||
| pENTR/D-TOPO Cloning Kit | Invitrogen | K243520 | |
| Gateway LR Clonase II Enzyme Mix | Invitrogen | 11791100 | |
| pBGWFS7.0 | Plant systems biology | https://gateway.psb.ugent.be/vector/show/pBGWFS7/search/index/ | |
| Platinum Taq DNA Polymerase | ThermoFisher Scientific | 10966018 | |
| DNeasy Plant Mini Kit | Qiagen | 69104 | |
| PureLink Quick Gel Extraction Kit | ThermoFisher Scientific | K210012 | |
| Platinum Pfx DNA Polymerase | Invitrogen | 11708013 | |
| Certified Molecular Biology Agarose | Bio-Rad | 1613102 | |
| One Shot TOP10 Chemically Competent E. coli | Invitrogen | C404006 | |
| Nacl | Sigma-Aldrich | S7653 | |
| Tryptone | Sigma-Aldrich | T7293-250G | |
| Yeast extract | Sigma-Aldrich | Y1625-250G | |
| Bacteriological agar | Sigma-Aldrich | A5306-1KG | |
| Kanamycin sulfate | Sigma-Aldrich | 60615-25G | |
| Spectinomycin sulfate | Sigma-Aldrich | PHR1441 | |
| Ethyl alcohol | Sigma-Aldrich | E7023 | |
| Bacteriological peptone | Sigma-Aldrich | P0556 | |
| Calcium chloride | Sigma-Aldrich | C1016 | |
| Nalidixic acid | Sigma-Aldrich | N8878 | |
| Magnesium sulfate | Sigma-Aldrich | M7506 | |
| Gel loading solution | Sigma-Aldrich | G7654 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| EQUIPMENT | |||
| Thermocycler | Veriti Thermal Cycler | 4375786 | |
| Centrifuge | Sigma | Sigma 1-14K | |
| Gel documentation unit | Carestream | Gel Logic 212 PRO | |
| MaxQ SHKE6000 6000 Shaking Incubator - 115VAC | Thermo scientific | EW-51708-70 | |
| Plant growth chamber | MRC | PGI-550RH | |
| Horizantal laminarair flow cabinate | Lumistell | LH-120 | |
| Fluorescent microscope | Leica | DM4500 B | |
| Petridish | sym laboratorios | 90X15 | |
| Scalpel Blade | Fisher scientific | 53223 | |
| Falcon 15mL Conical Centrifuge Tubes | Fisher scientific | 14-959-53A | |
| 22 mL glass tubes | Thomas scientific | 45048-16150 |
References
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