Summary

Visualisere samspillet mellom Qdot-merket Protein og Site-specifically endret λ DNA på ett molekyl nivå

Published: July 17, 2018
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for å studere DNA-protein interaksjoner av total intern refleksjon fluorescens mikroskopi (TIRFM) bruker en site-specifically endret λ DNA substrat og en kvante-prikk merket protein.

Abstract

Fluorescens mikroskopi har gjort store bidrag i dissekere mekanismer for komplekse biologiske prosesser på ett molekyl nivå. I ett molekyl analyser for å studere DNA-protein interaksjoner, finnes det to viktige faktorer for vurdering: DNA underlaget med nok lang for enkel observasjon og merking et protein med en egnet fluorescerende sonde. 48.5 kb λ DNA er en god kandidat for DNA underlaget. Kvante prikker (Qdots), tillate som en klasse med fluorescerende sonder, mangeårige observasjon (minutter timer) og høy kvalitet bilde. I dette papiret presenterer vi en protokoll for å studere DNA-protein interaksjoner på enkelt-molekylet nivå, som inkluderer forbereder en site-specifically endret λ DNA og merking et mål protein med streptavidin-belagt Qdots. En konseptbeviskode vi velger ORC (opprinnelse gjenkjennelse komplekse) i spirende gjær som et protein av interesse og visualisere dets interaksjon med en ARS (selvstendig etterligner sekvens) ved hjelp av TIRFM. Sammenlignet med andre fluorescerende sonder, Qdots har åpenbare fordeler i ett molekyl studier på grunn av dens høy stabilitet mot photobleaching, men det bør bemerkes at denne egenskapen begrenser anvendelsen i kvantitative analyser.

Introduction

Samspillet mellom protein og DNA er avgjørende for mange komplekse biologiske prosesser, som utryddelse, DNA-reparasjon og transkripsjon. Selv om konvensjonelle metoder har kaste lys over egenskapene til disse prosessene, er mange viktige mekanismer fortsatt uklart. Nylig, med rask utvikling enkelt molekyl teknikker, noen de har vært adressert1,2,3.

Anvendelsen av enkelt-molekylet fluorescens mikroskopi på å synliggjøre protein-DNA interaksjoner i sanntid hovedsakelig avhenger av utviklingen av fluorescens gjenkjenning og fluorescerende sonder. For en enkelt molekyl studie er det viktig å merke protein rundt med en egnet fluorescerende sonde siden fluorescens oppdagingssystemer er mest tilgjengelig kommersielt.

Fluorescerende proteiner brukes ofte i molekylærbiologi. Imidlertid begrenser lite lysstoffrør lysstyrken og stabilitet mot photobleaching anvendelsen i mange ett molekyl analyser. Kvante prikker (Qdots) er små lys-emitting nanopartikler4. Deres unike optiske egenskaper, Qdots er 10 – 20 ganger lysere og flere tusen ganger mer stabilt enn de brukte organisk fargestoffer5. Videre har Qdots en stor Stokes Skift (forskjellen mellom plasseringen av eksitasjon og utslipp topper)5. Qdots kan dermed brukes til mangeårige observasjon (minutter timer) og anskaffelse av bilder med høy signal-til-støy-forhold, mens de ikke kan brukes i kvantitative analyser.

Dato det er to tilnærminger til å merke et mål protein med Qdots site-specifically: merking ved hjelp av Qdot-konjugerte primær eller sekundær antistoffer6,7,8; eller merking målet protein med Qdots direkte, som er basert på den sterke vekselvirkningen mellom biotin og streptavidin9,10,11,12,13. Streptavidin-belagt Qdots er kommersielt tilgjengelig. I vår siste undersøkelse, site-specifically biotinylated proteiner i spirende gjær med høy effektivitet renset ved co-overuttrykte BirA og Avi-merket proteiner i vivo10. Følgende og optimalisere de single-molekyl analyser14,15,16,17, observerte vi samspillet mellom Qdot-merket proteiner og DNA på ett molekyl nivå ved TIRFM10.

Her, vi velger spirende gjær opprinnelse-anerkjennelse komplekse (ORC), som kan spesielt gjenkjenner og binder til selvstendig etterligner sekvensen (ARS), som vår protein av interesse. Følgende protokollen presenterer en fremgangsmåte å visualisere samspillet av Qdot-merket ORC Ars bruker TIRFM. Utarbeidelse av site-specifically endret DNA underlaget, DNA-biotinylation, dekkglassvæske rengjøring og functionalization, samlingen flyt-celle og enkelt-molekylet avbilding er beskrevet.

Protocol

1. forberedelse av λ-ARS317 DNA substrat DNA substrat bygg og emballasje Fordøye innfødt λ DNA ved å bruke Xhojeg enzym; forsterke 543 bp DNA fragment betydning ARS317 fra genomisk DNA av spirende gjær bruker primer som inneholder 20 bp homologe sekvenser av oppstrøms og nedstrøms Xhojeg enzym område på lambda DNA. Legg 100 ng av Xhojeg fordøyd λ DNA og 10 ng DNA fragment til 10 µL av homologe rekombinasjon reaksjonssystemet og ruge reaksjonen på 37 ° C i 30 min…

Representative Results

For å visualisere samspillet mellom Qdot-merket ORC og ARS, bygget vi første λ-ARS317 DNA underlaget. En DNA fragment som inneholder ARS317 ble integrert i Xhojeg området (33,5 kb) native λ DNA av homologe rekombinasjon (figur 1A). Rekombinasjon produktet ble pakket bruker ekstrakter og pakket phage partikler ble kultivert på LB plater (figur 1B). En positiv phage plakett ble vist av PCR og bekreftet av sekvenserin…

Discussion

Her presenterer vi en protokoll for å observere samspillet mellom Qdot-merket protein og site-specifically endret λ DNA ved hjelp av TIRFM i en flyt-celle. Fremgangsmåten er områdespesifikke endring av DNA substrat, DNA biotinylation, dekkglassvæske rengjøring og functionalization, flyt-celle forberedelse og enkelt-molekylet bildebehandling. Det er to viktige punkter som bør bemerkes. Først alle trinnene involvert med λ DNA skal manipuleres forsiktig for å redusere mulig skade, f.eksunngå blanding av …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Hasan Yardimci og Dr.Sevim Yardimci av Francis Crick Institute for type i enkelt-molekylet eksperimentene, Dr. Daniel Duzdevich fra Dr. Eric C. Greenes lab ved Columbia University, Dr. Yujie Sun Peking University og Dr. Chunlai Chen hos Tsinghuauniversitetet for nyttig diskusjon. Denne studien ble støttet av National Natural Science Foundation of China 31371264, 31401059, CAS tverrfaglig innovasjon Team og Newton avansert brorskapet (NA140085) fra Royal Society.

Materials

Lambda DNA New England Biolabs N3011 Store 25 μL aliquots at -20 ºC.
XhoI enzyme Thermo Fisher Scientific FD0694
Quick-fusion cloning kit Biotool B22611
MaxPlax Lambda
Packaging Extracts
Epicentre MP5110 Bacterial strain LE392MP
is included in this package.
MgSO4 Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 10013092 Any brand is acceptable.
Tris Amresco 0497-5KG
NaCl Beijing Chemical works N/A Any brand is acceptable.
MgCl2 Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 10012818
Chloroform Beijing Chemical works N/A Any brand is acceptable.
NZ-amine Amresco J853-250G
Casamino acids Sigma-Aldrich 22090-500G
PEG8000 Beyotime ST483
Magnetic stirring apparatus IKA KMO2 basic
15 mL Eppendorf tube Eppendorf 30122151 15 mL, sterile, bulk, 500pcs
Rnase SIGMA R4875-100MG
Dnase SIGMA D5319-500UG
Proteinase K Amresco 0706-100MG
Biotinylated primers Thermo Fisher Scientific N/A
T4 DNA ligase, T4 DNA Ligase, Reaction Buffer (10x) New England Biolabs M0202
Coverslip Thermo Fisher Scientific 22266882
Ethanol Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 10009259
Potassium hydroxide (KOH) Sigma-Aldrich 306568-100G
Acetone Thermo Fisher Scientific A949-4
H2SO4 Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 80120891 sulfuric acid
H2O2 Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 10011218 30% Hydrogen peroxide
Methanol Sigma-Aldrich 322415-2L
Acetic acid Sigma-Aldrich V900798
APTES Sigma-Aldrich A3648
mPEG
(methoxy-polyethylene glycol)
Lysan mPEG-SVA-5000
biotin-PEG
(biotin-polyethylene glycol)
Lysan Biotin-PEG-SVA-5000
NaHCO3 Sigma-Aldrich 31437-500G
Vacuum desiccator Tianjin Branch Billion Lung Experimental Equipment Co., Ltd. IPC250-1
Vacuum sealer MAGIC SEAL WP300
Diamond-tipped glass scribe ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 70036
Glass slide Sail Brand 7101
Inlet tubing SCI (Scientific Commodties INC.) BB31695-PE/2 inner diameter 0.38 mm; outer diameter 1.09 mm.
Outlet tubing SCI (Scientific Commodties INC.) BB31695-PE/4 inner diameter 0.76 mm; outer diameter 1.22 mm.
Double-sided tape Sigma-Aldrich GBL620001-1EA
Epoxy LEAFTOP 9005 five minutes epoxy
Streptavidin Sigma-Aldrich S4762
Fluorescence Microscope Olympus IX71
Infusion/withdrawal
programmable pump
Harvard apparatus 70-4504
532 nm laser Coherent Sapphire-532-50
640 nm laser Coherent OBIS-640-100
EMCCD Camera Andor DU-897E-CS0-BV
W-View Gemini Imaging
splitting optics
Hamamatsu photonics K.K. A12801-01
TIRF illumination system Olympus IX2-RFAEVA2
60×TIRF objective Olympus APON60XOTIRF
Quad-edge laser dichroic
beamsplitter
Semrock Di01-R405/488/
532/635-25×36
Quad-band bandpass filter Semrock FF01-446/510/
581/703-25
Dichroic beamsplitter Semrock FF649-Di01-25×36
Emission filter Chroma Technology Corp ET585/65m
Emission filter Chroma Technology Corp ET665lp
FocalCheck fluorescence, microscope test slide #1 Thermo Fisher Scientific F36909
SYTOX Orange Thermo Fisher Scientific S11368
Qdot705 Streptavidin Conjugate Thermo Fisher Scientific Q10163MP Store at 4 ºC, do not freeze.
ATP Amresco 0220-25G Prepare 200 mM ATP solution, using ddH2O, adjust pH to 7.0, and store 10 μL aliquots at -20 ºC.
DTT Amresco M109-5G Prepare 1 M solution using ddH2O, and store 10 μl aliquots at -20 ºC.

References

  1. Fu, Y. V., et al. Selective Bypass of a Lagging Strand Roadblock by the Eukaryotic Replicative DNA Helicase. Cell. 146 (6), 930-940 (2011).
  2. Qi, Z., et al. DNA sequence alignment by microhomology sampling during homologous recombination. Cell. 160 (5), 856-869 (2015).
  3. Chong, S., Chen, C., Ge, H., Xie, X. S. Mechanism of transcriptional bursting in bacteria. Cell. 158 (2), 314-326 (2014).
  4. Wegner, K. D., Hildebrandt, N. Quantum dots: bright and versatile in vitro and in vivo fluorescence imaging biosensors. Chemical Society Reviews. 44 (14), 4792-4834 (2015).
  5. Gao, X., et al. In vivo molecular and cellular imaging with quantum dots. Current opinion in biotechnology. 16 (1), 63-72 (2005).
  6. Sternberg, S. H., Redding, S., Jinek, M., Greene, E. C., Doudna, J. A. DNA interrogation by the CRISPR RNA-guided endonuclease Cas9. Nature. 507 (7490), 62 (2014).
  7. Lee, J. Y., Finkelstein, I. J., Arciszewska, L. K., Sherratt, D. J., Greene, E. C. Single-molecule imaging of FtsK translocation reveals mechanistic features of protein-protein collisions on DNA. Molecular cell. 54 (5), 832-843 (2014).
  8. Wang, H., Tessmer, I., Croteau, D. L., Erie, D. A., Van Houten, B. Functional characterization and atomic force microscopy of a DNA repair protein conjugated to a quantum dot. Nano letters. 8 (6), 1631-1637 (2008).
  9. Redding, S., et al. Surveillance and processing of foreign DNA by the Escherichia coli CRISPR-Cas system. Cell. 163 (4), 854-865 (2015).
  10. Xue, H., et al. Utilizing Biotinylated Proteins Expressed in Yeast to Visualize DNA-Protein Interactions at the Single-Molecule Level. Frontiers in microbiology. 8, 2062 (2017).
  11. Duzdevich, D., et al. The dynamics of eukaryotic replication initiation: origin specificity, licensing, and firing at the single-molecule level. Molecular cell. 58 (3), 483-494 (2015).
  12. Hughes, C. D., et al. Real-time single-molecule imaging reveals a direct interaction between UvrC and UvrB on DNA tightropes. Nucleic acids research. 41 (9), 4901-4912 (2013).
  13. Kad, N. M., Wang, H., Kennedy, G. G., Warshaw, D. M., Van Houten, B. Collaborative dynamic DNA scanning by nucleotide excision repair proteins investigated by single-molecule imaging of quantum-dot-labeled proteins. Molecular cell. 37 (5), 702-713 (2010).
  14. Chandradoss, S. D., et al. Surface Passivation for Single-molecule Protein Studies. Jove-Journal of Visualized Experiments. (86), (2014).
  15. Chen, X. Q., Zhao, E. S., Fu, Y. V. Using single-molecule approach to visualize the nucleosome assembly in yeast nucleoplasmic extracts. Science Bulletin. 62 (6), 399-404 (2017).
  16. Yardimci, H., Loveland, A. B., van Oijen, A. M., Walter, J. C. Single-molecule analysis of DNA replication in Xenopus egg extracts. Methods. 57 (2), 179-186 (2012).
  17. Tanner, N. A., Loparo, J. J., van Oijen, A. M. Visualizing single-molecule DNA replication with fluorescence microscopy. Journal of visualized experiments: JoVE. (32), (2009).
  18. Lockett, T. J. A bacteriophage λ DNA purification procedure suitable for the analysis of DNA from either large or multiple small lysates. Analytical biochemistry. 185 (2), 230-234 (1990).
  19. Smith, E. A., Chen, W. How to prevent the loss of surface functionality derived from aminosilanes. Langmuir. 24 (21), 12405-12409 (2008).
  20. Kim, Y., Torre, A., Leal, A. A., Finkelstein, I. J. Efficient modification of λ-DNA substrates for single-molecule studies. Scientific reports. 7 (1), 2071 (2017).
check_url/fr/57967?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Xue, H., Zhan, Z., Zhang, K., Fu, Y. V. Visualizing the Interaction Between the Qdot-labeled Protein and Site-specifically Modified λ DNA at the Single Molecule Level. J. Vis. Exp. (137), e57967, doi:10.3791/57967 (2018).

View Video