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Article de méthode

Identification des marqueurs de surface cellulaire des cellules neurales primaires de tige et de progéniture par l'étiquetage métabolique du sialoglycan

5K vues

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DOI :

10.3791/58945

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7 septembre 2019

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Présenté ici est un protocole qui combine un système de co-culture neural-endothelial in vitro et l'incorporation métabolique du sialoglycan avec des groupes fonctionnels bioorthogonals pour étendre les cellules neurales primaires de tige et d'ancêtre et étiqueter leur surface sialoglycoproteins pour l'imagerie ou l'analyse de la spectrométrie de masse des marqueurs de surface cellulaire.

Résumé

Les cellules de tige et d'ancêtre neural (NSPc) sont la base cellulaire pour les structures et les fonctions complexes du cerveau. Ils sont situés dans des niches spécialisées in vivo et peuvent être isolés et étendus in vitro,servant de ressource importante pour la transplantation cellulaire pour réparer les lésions cérébrales. Cependant, les NSPC sont hétérogènes et ne sont pas clairement définis au niveau moléculaire ou purifiés en raison d'un manque de marqueurs de surface cellulaire spécifiques. Le protocole présenté, qui a été précédemment rapporté, combine un système de co-culture neural-endothelial avec une méthode métabolique d'étiquetage de glycan pour identifier le sialoglycoproteome de surface des NSPc primaires. Le système de co-culture endothéliale du NSPC permet l'auto-renouvellement et l'expansion des CNS PNS primaires in vitro,générant un nombre suffisant de NSPC. Les Sialoglycanes dans les NSPC cultivés sont étiquetés à l'aide d'un journaliste métabolique de l'acide sialique contre nature avec groupes fonctionnels bioorthogonal. En comparant le sialoglycoproteome des NSPC auto-renouvellements élargis dans une co-culture endothéliale avec la culture neuronale différenciante, nous identifions une liste de protéines membranaires qui sont enrichies dans les NSPC. Dans le détail, le protocole comprend : 1) la mise en place d'une co-culture endothéliale du NSPC et d'une culture différenciante du CNPC; 2) étiquetage avec azidosugar per-O-acetylated N-azidoacetylmannosamine (Ac4ManNAz); et 3) conjugaison de biotine au sialoglycan modifié pour la formation image après fixation de la culture neurale ou de l'extraction de protéine de la culture neurale pour l'analyse de spectrométrie de masse. Ensuite, les candidats marqueurs de surface enrichis par le NSPC sont sélectionnés par analyse comparative des données de spectrométrie de masse provenant à la fois du NSPC élargi et des cultures neuronales différenciées. Ce protocole est très sensible pour identifier les protéines membranaires de faible abondance dans les matériaux de départ, et il peut être appliqué à la découverte de marqueurs dans d'autres systèmes avec des modifications appropriées

Introduction

Les cellules souches neurales sont définies comme une population de cellules multipotentes qui peut se renouveler pour maintenir une piscine de cellules souches et se différencier en neurones et en gliales. Ils sont les principaux types de cellules dans le système nerveux et peuvent offrir un grand potentiel thérapeutique en médecine régénérative par la transplantation cellulaire dans les cerveaux malades et blessés1,2. Au fur et à mesure que le développement se poursuit, la population de cellules souches neurales devient hétérogène3,4, et la proportio....

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Protocole

Tous les protocoles animaux utilisés dans cette étude ont été approuvés par l'IACUC (Comité institutionnel de soins et d'utilisation des animaux) de l'Université de Tsinghua et exécutés conformément aux lignes directrices de l'IACUC. L'établissement d'animaux de laboratoire de l'Université de Tsinghua a été accrédité par l'AAALAC (Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International). Pour la mise en scène des embryons, la mi-journée du bouchon vaginal identifié a été calculée comme jour embryonnaire 0.5 (E0.5).

REMARQUE: Toutes les cellules sont cultivées dans l'incubateur cellulaire dans de....

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Résultats

L'ensemble de la procédure d'expansion in vitro et d'étiquetage métabolique des NSPC embryonnaires primaires prend 6 jours (figure 1A). La qualité de la lignée cellulaire BEND3 et des NSPC primaires fraîchement isolés est la clé d'une expérience réussie. Les cellules BEND3 sont la source de facteurs solubles qui stimulent l'auto-renouvellement et la prolifération des NSPC. Il faut s'assurer que les cellules BEND3 sont exemptes de toute contamination et se div.......

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Discussion

Les marqueurs de surface sont couramment utilisés pour étiqueter et purifier des types de cellules spécifiques in vitro et in vivo17,18. La découverte de marqueurs de surface contribue grandement aux recherches sur la médecine régénérative et les cellules souches en fournissant des outils moléculaires pour enrichir sélectivement une population de cellules souches à partir de tissus normaux ou pathologiques et de plats de culture, offrant une cellule purifiée. pou.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n'ont rien à divulguer.

Remerciements

Figure 1B, 1C, 1E et 1F sont reproduits à partir de Bai et coll. . 10 Ans et plus avec la permission de la Royal Society of Chemistry. Nous remercions Yi Hao dans le laboratoire de X. C. pour l'édition de chiffres. Ce travail est soutenu par la National Natural Science Foundation of China (no 91753206 à Q. S. et X. C., no 31371093 à Q. S., et nos 21425204 et 21672013 à X. C.).

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
BEND3ATCCCRL-229
DMEMGibco11960044
L-glutamineGibco250300811
Pyruvate de sodiumSigmaP52801 %
N2 supplémentGibco175020481 à 100
N-acétyl-L-cystéineSigmaA72501 mM
PapainWorthingtonLS00372610 U/mL
Supplément de B27Gibco175040441 à 50
Poly-L-lysineSigmaP4707
Facteur de croissance des fibroblastes de baseGibcoPHG026110 ng/mL
Pénicilline-StreptomycineGibco151401221 %
Sérum fœtal de veauGibco1009914110 %
HBSSGibco14175095
Tripsin-EDTA, 0,25 %Gibco25200056
DPBSGibco14190094
TranswellCorning3450
ParaformaldéhydeSigma1581274 %
SaccharoseSangonA100335
DAPIGibco62248
Tampon RIPAThermo Scientific89900
Tampon de chargement SDS-PAGE 2xSolarbioP1018
Plaque 6 puitsCorning3335
Tris-Glycine protein gelinvitrogenxp00100box
Souris monoclonal anti-NestinÉtude de développement Hybridoma BankRat-4011 à 20
Souris monoclonale anti-bêta-tubuline IIISigmaT88601 à 1 000
Alexa Fluor 488 chèvre anti-souris IgG1invitrogenA-211211 à 1 000
Alexa Fluor 546 chèvre anti-souris IgG2binvitrogenA-211431 à 1 000
Albumine bovine VAmresco0332
Triton X-100Amresco0694
BCA kit de dosageThermo Scientific23225
Dimethyl sulfoxydeSigmaD2650
Brij97AladdinB129088
CuSO4Sigma209198
Alcyne-biotineClick Chemistry ToolsTA105
BTTAAClick Chemistry Tools1236
Ac4ManNAzClick Outils de Chimie1084100 & micro ; M
9AzSiasynthétisé en laboratoire
Ascorbate de sodiumSigmaA4034
MéthanolSigma34860
EDTASangonA100322
NaClSangonA100241
SDSSangonA100227
Alexa Flour 647-conjugué streptavidineinvitrogenS213741 à 1 000
TriéthanolamineSigmaV900257
Dynabeads M-280 Streptavidin  ;invitrogen60210
Bicarbonate d’ammoniumSigma9830
Coomassie Brilliant Blue R-250Thermo Scientific20278
IsofluraneRWD Life Science Co.970-00026-00
DNase ISigmaDN2512 & micro ; g/mL
UreaSigmaU5378
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Références

  1. Weissman, I. L. Stem Cells: Units of Development, Units of Regeneration, and Units in Evolution. Cell. 100, 157-168 (2000).
  2. Gage, F. H., Temple, S. Neural Stem Cells: Generating and Regenerating the Brain. Neuron. 80, 588-601 (2013).
  3. Gal, J. S.

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Réimpressions et autorisations

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