Summary

Ortotopic rotte nyre transplantation: en roman og forenklet kirurgisk tilgang

Published: May 07, 2019
doi:

Summary

Formålet med dette manuskript og protokol er at forklare og demonstrere i detaljer den kirurgiske procedure af ortotopic nyretransplantation i rotter. Denne metode er forenklet for at opnå den korrekte perfusion af donor nyre og forkorte reperfusion tid ved hjælp af venøs og urinveje manchet anastomose teknik.

Abstract

Nyretransplantation giver øget overlevelsesrater og forbedret livskvalitet for patienter med nyresygdom i slutstadiet, sammenlignet med enhver form for renal substitutionsterapi. I løbet af de sidste par årtier, er rotte nyretransplantation model blevet brugt til at studere de immunologiske fænomener af afvisning og tolerance. Denne model er blevet et uundværligt redskab til at teste nye immunmodulerende lægemidler og regimer forud for at fortsætte med dyre prækliniske store dyreforsøg.

Denne protokol giver en detaljeret oversigt over, hvordan man pålideligt udføre ortotopic nyretransplantation i rotter. Denne protokol indeholder tre karakteristiske trin, der øger sandsynligheden for succes: perfusion af donor nyre ved skylning gennem portalen vene og brugen af et manchet system til anastomose de renale vener og ureters, derved faldende kolde og varme iskæmi gange. Ved hjælp af denne teknik har vi opnået overlevelsesrater ud over 6 måneder med normal serum-kreatinin hos dyr med murinsynogene eller tolerante nyretransplantationer. Afhængigt af undersøgelsens formål kan denne model modificeres ved præ-eller post transplantations behandlinger for at studere akut, kronisk, cellulær eller antistof-medieret afvisning. Det er en reproducerbar, pålidelig og omkostningseffektiv dyremodel til at studere forskellige aspekter af nyretransplantation.

Introduction

Historisk set blev de første transplantations afstødnings undersøgelser udført af Brent og Medawar ved hjælp af hudtransplantationer i gnavere1. Det blev hurtigt klart, at huden har forskellige immunologiske egenskaber, hvilket gør det til et meget immunogent organ, der er forskelligt i afvisning fra andre vaskulariserede solide organer2. Rotteundersøgelser af massiv organtransplantation afvisning er sædvanligvis begrænset til hjerte, lever, og nyretransplantationer. Selv om hver af disse organer er egnet til at studere afvisning, der er fordele og ulemper for hver af dem. Hjertetransplantationer er ofte transplanteret ind i maven og anastomosed til aorta og Vena cava, med modtagerens indfødte hjerte på plads3. Dette genopretter ikke humane kliniske, anatomiske og fysiologiske tilstande. Derudover er hjerter meget følsomme over for kold iskæmi og skal reperfanvendes fortrinsvis inden for 1 time for at være i stand til at inddrive deres funktion4. Levertransplantationer er generelt anses for at være kirurgisk mere udfordrende og tidsfølsomme til at udføre. Efter fjernelse af den indfødte lever, donor leveren skal implanteres og reperfanvendes inden for 30 min da modtagerne ikke kan vare længere uden en fungerende leveren5. Den hepatiske arterie, portal vene, og især galde kanalen rekonstruktion kræver raffinerede kirurgiske færdigheder. Ud over de kirurgiske udfordringer, leveren er kendt for at besidde tolerogene egenskaber og gnavere og mennesker kan blive operationelt tolerant6,7,8. Nyrerne, i modsætning til de førnævnte organer, kan transplanteret i en ortotopic mode, er kendt for at være et immunogent organ med konsekvente, reproducerbare afvisning episoder (hvis ikke immun supprimeret), og giver mulighed for langvarig kold iskæmi gange af flere Timer. Dette gør rotte nyretransplantation en ideel model for at studere allograft afvisning og tolerance.

Nyretransplantation (KT) er det foretrukne Behandlingsvalg for patienter med nyresygdom i slutstadiet. I løbet af de sidste par årtier, kortsigtede overlevelse resultater efter KT har forbedret dramatisk, men langsigtede overlevelse resultater er stagnerende9. Konventionelle Immunsuppressive regimer forbliver standard anti-afvisning terapi. Kronisk brug af immunosuppressive terapier forårsager imidlertid signifikant sygelighed og dødelighed, såsom nefrotoksicitet, diabetes og sekundære maligniteter10,11,12. På lang sigt, kronisk antistof-og cellulær-medieret afvisning truer transplantat overlevelse, med begrænsede terapeutiske muligheder til rådighed.

Et vigtigt mål i transplantation er induktion af transplantations tolerance for at undgå behovet for kronisk immunsuppression. Rotte KT-modellen er et robust værktøj til at undersøge den immunologiske afstødnings proces og til at evaluere nye tilgange til immun moduleringen og transplantations tolerancen. Rotten fungerer også som en egnet model til at studere akut og kronisk celle-og antistof-medieret afvisning13,14,15,16,17. Denne kirurgiske model har vist sig at være et pålideligt, reproducerbart og omkostningseffektivt værktøj til at studere forskellige aspekter af allograft afvisning og tolerance. Det er ofte bruges til at teste nye tolerance-inducerende protokoller forud for gennemføre dyre og besværlige store dyreforsøg. Udførelse af KT i rotter kræver omfattende kirurgisk træning og ekspertise for at nå overlevelsesrater på > 90%. I dette manuskript og i den ledsagende instruktionsvideo giver vi en trinvis skitse for ortotopic KT i rotter, som det med succes er udført i mange år på vores institution.

Før påbegyndelse af enhver procedure, donor og modtager udvælgelse er kritisk og afhænger af karakteren af eksperimentet. Ideelt set bør donorer og recipienter veje mellem 220 – 260 g og være mellem 8 – 12 ugers alderen. Dyr under 220 g har arterier med lille diameter, vener og ureters, hvilket gør anastomose i recipienten særlig udfordrende. Mindre blodtab kan forårsage hypovolæmi og føre til døden hos mindre dyr. Dyr tungere end 260 g viser mere fedt omkring deres fartøjer, og fartøjs isolation vil kræve mere operative tid og øge den kolde iskæmi tid.

Protocol

Lewis (RT11) og Dark agouti (da) (RT1Aa) rotter blev købt fra kommercielle leverandører (Se tabellen over materialer). Disse fuldt MHC-mismatchede stammer bruges ofte til at studere akut renal allograft afvisning. Alle dyr blev opstaldet og vedligeholdt i henhold til National Institutes of Health (NIH) retningslinjer i en specifik patogen-fri facilitet på Johns Hopkins University. Alle procedurer blev godkendt af det institutionelle udvalg for dyrepasning og-brug. <p class="j…

Representative Results

Vi udførte murinsynogene (n = 5) og allogene nyretransplantationer (n = 5). Dyr med en syngen transplantation opnåede langvarig overlevelse uden immunsuppressiv behandling. Dyr, der fik en allogen transplantation uden immunsuppression, afviste deres transplantat og bukkede under for nyresvigt med en Median overlevelse på 8 dage (figur 4a). Det gennemsnitlige serum-kreatinin steg beskedent i den syngeneatiske gruppe, mens det steg med 14 gange i den allog…

Discussion

I dette manuskript beskriver vi den kirurgiske metode for ortotopic KT i rotter i detaljer, herunder alt det nødvendige udstyr, der er nødvendigt for at udføre denne procedure (figur 5). I 1965 udgav Fisher og Lee den første rapport om KT i rotter, som blev starten på et spændende efterforsknings felt18. Siden da er der blevet indført mange ændringer for at forbedre denne models reproducerbarhed. Det har fungeret som en effektiv dyremodel for at studere iskæm…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev finansieret af en generøs gave fra Bombeck Family Estate.

Materials

Buprenorphine HCL Reckitt Benckiser Healthcare UK NDC12496-0757-5
Dissecting forceps, curved Zhenbang, China 11cm Flat handle 
Heparin sodium injection USP Sagent Pharmaceuticals  NDC25021-400-10
Micro-forceps, straight, smooth Jingzhong, China WA3010
Micro needle holder Jingzhong, China WA2010
Micro vessel clamps Jingzhong, China WA40120
Micro spring sciccor 1 ROBOZ RS-5620
Micro spring sciccor 2 F.S.T. 91501-09
Micro spring sciccor 3 Zhenbang, China 8.5cm Vannas,curved
Prograf (Tacrolimus/FK506) Astellas
Rats Charles River & Taconic Biosciences  LEW/Crl & DA-M 
Shaver Wahl 79600-2101
Suture 4-0 Ethicon J304H
Suture, 4-0  Ethicon 683G
Suture, 10-0  Ethicon 2820G
Syringes & Needles BD
Thread, 8-0 Ashaway 75290
Ureteral cuff Microlumen 160-1 Polymide Tubing, Diameter 0.41 mm 
Venous cuff Intramedic BD 7441 PE-200 Non-radiopaque polyethylene tubing ID: 1.4 mm, OD: 1.9 mm

References

  1. Billingham, R. E., Brent, L., Medawar, P. B. Actively acquired tolerance of foreign cells. Nature. 172 (4379), 603-606 (1953).
  2. Murray, J. E. Organ transplantation (skin, kidney, heart) and the plastic surgeon. Plastic and Reconstructive Surgery. 47 (5), 425-431 (1971).
  3. Liu, F., Kang, S. M. Heterotopic heart transplantation in mice. Journal of Visualized Experiments. (6), e238 (2007).
  4. Ruzza, A., et al. Heterotopic heart transplantation in rats: improved anesthetic and surgical technique. Transplant Proceedings. 42 (9), 3828-3832 (2010).
  5. Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. Orthotopic liver transplantation in rats. Journal of Visualized Experiments. (65), e4143 (2012).
  6. Lang, K. S., et al. Immunoprivileged status of the liver is controlled by Toll-like receptor 3 signaling. Journal of Clinical Investigation. 116 (9), 2456-2463 (2006).
  7. Sun, Z., et al. Recruitment of host progenitor cells in rat liver transplants. Hepatology. 49 (2), 587-597 (2009).
  8. Orlando, G., Soker, S., Wood, K. Operational tolerance after liver transplantation. Journal of Hepatolgy. 50 (6), 1247-1257 (2009).
  9. Lodhi, S. A., Lamb, K. E., Meier-Kriesche, H. U. Solid organ allograft survival improvement in the United States: the long-term does not mirror the dramatic short-term success. American Journal of Transplantation. 11 (6), 1226-1235 (2011).
  10. Engels, E. A., et al. Spectrum of cancer risk among US solid organ transplant recipients. Journal of the American Medical Association. 306 (17), 1891-1901 (2011).
  11. Kasiske, B. L., Snyder, J. J., Gilbertson, D., Matas, A. J. Diabetes mellitus after kidney transplantation in the United States. American Journal of Transplantation. 3 (2), 178-185 (2003).
  12. de Mattos, A. M., Olyaei, A. J., Bennett, W. M. Nephrotoxicity of immunosuppressive drugs: long-term consequences and challenges for the future. American Journal of Kidney Diseases. 35 (2), 333-346 (2000).
  13. Hu, X., et al. Chimeric Allografts Induced by Short-Term Treatment With Stem Cell-Mobilizing Agents Result in Long-Term Kidney Transplant Survival Without Immunosuppression: A Study in Rats. American Journal of Transplantation. 16 (7), 2055-2065 (2016).
  14. Shrestha, B., Haylor, J. Experimental rat models of chronic allograft nephropathy: a review. International Journal of Nephrology and Renovascular Disease. 7, 315-322 (2014).
  15. Fu, Y., et al. Successful transplantation of kidney allografts in sensitized rats after syngeneic hematopoietic stem cell transplantation and fludarabine. American Journal of Transplantation. 14 (10), 2375-2383 (2014).
  16. Grau, V., et al. Immune Complex-Type Deposits in the Fischer-344 to Lewis Rat Model of Renal Transplantation and a Subset of Human Transplant Glomerulopathy. Transplantation. 100 (5), 1004-1014 (2016).
  17. Vogelbacher, R., et al. Bortezomib and sirolimus inhibit the chronic active antibody-mediated rejection in experimental renal transplantation in the rat. Nephrology Dialysis Transplantation. 25 (11), 3764-3773 (2010).
  18. Fisher, B., Lee, S. Microvascular surgical techniques in research, with special reference to renal transplantation in the rat. Surgery. 58 (5), 904-914 (1965).
  19. Mahabir, R. N., Guttmann, R. D., Lindquist, R. R. Renal transplantation in the inbred rat. X. A model of “weak histoincompatibility” by major locus matching. Transplantation. 8 (4), 369-378 (1969).
  20. Wang, J. J., Hockenheimer, S., Bickerstaff, A. A., Hadley, G. A. Murine renal transplantation procedure. Journal of Visualized Experiments. (29), e1150 (2009).
  21. Bickerstaff, A. A., Wang, J. J., Pelletier, R. P., Orosz, C. G. Murine renal allografts: spontaneous acceptance is associated with regulated T cell-mediated immunity. Journal of Immunology. 167 (9), 4821-4827 (2001).
  22. Silber, S. J., Crudop, J. Kidney transplantation in inbred rats. American Journal of Surgery. 125 (5), 551-553 (1973).
  23. D’Silva, M., et al. Rat kidney transplantation update with special reference to vesical calculi. Microsurgery. 11 (2), 169-176 (1990).
  24. Yin, M., Booster, M. H., Bogaard, A. E. J. M., Kootstra, G. A simple technique to harvest two kidneys from one donor rat for transplantation. Lab Animal. 28 (4), 387-390 (1994).
  25. Lopez-Neblina, F., Toledo-Pereyra, L. H., Suzuki, S. Ultrarapid orthotopic technique for renal transplantation in the rat. Microsurgery. 15 (4), 274-278 (1994).
  26. Blom, D., Orloff, M. S. A more versatile and reliable method for renal transplantation in the rat. Microsurgery. 18 (4), 267-269 (1998).
  27. Engelbrecht, G., Kahn, D., Duminy, F., Hickman, R. New rapid technique for renal transplantation in the rat. Microsurgery. 13 (6), 340-344 (1992).
  28. Kline, R., Churchill, M., Churchill, P., Bidani, A., Schwartz, M. High osmolality-low pH flush solutions improve renal transplant function in rats. Urology Research. 19 (2), 81-86 (1991).
  29. Fray, J. C. Mechanism by which renin secretion from perfused rat kidneys is stimulated by isoprenaline and inhibited by high perfusion pressure. The Journal of Physiology. 308, 1-13 (1980).
  30. Fry, D. L. Acute vascular endothelial changes associated with increased blood velocity gradients. Circulation Research. 22 (2), 165-197 (1968).
  31. Pahlavan, P. S., Smallegange, C., Adams, M. A., Schumacher, M. Kidney transplantation procedures in rats: assessments, complications, and management. Microsurgery. 26 (5), 404-411 (2006).
  32. Savas, C. P., et al. Renal transplantation in the rat–a new simple, non-suture technique. Urology Research. 13 (2), 91-93 (1985).
  33. Fabre, J., Lim, S. H., Morris, P. J. Renal transplantation in the rat: details of a technique. The Austalian and New Zealand Journal of Surgery. 41 (1), 69-75 (1971).
  34. Cameron, A. M., et al. Chimeric Allografts Induced by Short-Term Treatment With Stem Cell Mobilizing Agents Result in Long-Term Kidney Transplant Survival Without Immunosuppression: II, Study in Miniature Swine. American Journal of Transplantation. 16 (7), 2066-2076 (2016).
check_url/fr/59403?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ahmadi, A. R., Qi, L., Iwasaki, K., Wang, W., Wesson, R. N., Cameron, A. M., Sun, Z. Orthotopic Rat Kidney Transplantation: A Novel and Simplified Surgical Approach. J. Vis. Exp. (147), e59403, doi:10.3791/59403 (2019).

View Video