Summary

יצירת מבוקרת, נופים כימיים דינמי ללמוד התנהגות מיקרוביאלית

Published: January 31, 2020
doi:

Summary

פרוטוקול לדור של נופים כימיים דינמיים על ידי פוטוליזה בתוך microfluidic והגדרות מיליפלואידיג מוצג. מתודולוגיה זו מתאימה לחקר תהליכים ביולוגיים מגוונים, כולל התנהגות נעים, ספיגת מזינים, או הסתגלות לכימיקלים של מיקרואורגניזמים, הן בתא יחיד ברמת האוכלוסייה.

Abstract

אנו מדגימים שיטה עבור הדור של מבוקרת, פולסים כימיים דינאמיים-שם כימוסטנט מקומי הופך לפתע זמין במיקרוסקאלה – כדי ליצור מיקרו סביבות עבור ניסויים כימוקיים חיידקים. כדי ליצור פולסים כימיים, פיתחנו מערכת להחדיר מקורות חומצות אמינו בסמוך-מיידי על ידי פוטוליזה של חומצות אמינו בכלוב בתוך polydiמתיל siloxane (pdms) תא מיקרופלואידיג המכיל השעיה בקטריאלי. החלתי שיטה זו לחיידק כימוטקטקטיקה, Vibrio ordalii, אשר יכול באופן פעיל לטפס על מעברי הצבע הכימיים הדינאמיים האלה בעת במעקב על ידי וידאו מיקרוסקופ. חומצות אמינו, מעובד ביולוגית (‘ כלוב ‘) על ידי שינוי כימי עם הקבוצה הגנה photoremovable, הם באופן אחיד בהשעיה אך לא זמין עבור הצריכה עד שחרורו הפתאומי שלהם, אשר מתרחשת בנקודות מוגדרות על-ידי המשתמש בזמן ובמרחב באמצעות קרן LED ממוקדת כמעט-UV. מספר המולקולות שפורסמו בדופק יכול להיקבע על ידי קשר כיול בין זמן חשיפה ושבריר הזדקנות, שם ספקטרום הקליטה לאחר פוטוליזה מאופיין באמצעות ספקטרוסקופיה UV-Vis. פוליקרבונט nanפורטו (PCTE) קרום יכול להיות משולב לתוך המכשיר microflu, כדי לאפשר את ההסרה רציפה על ידי זרימה של תרכובות בכלוב ללא כלוב ואת התקשורת המושקע. הקשר חזק, בלתי הפיך בין קרום PCTE לבין מבנה מיקרופלואידיג PDMS מושגת על ידי ציפוי הקרום עם פתרון של 3-aminopropyltriethoxysilane (APTES) ואחריו הפעלה פלזמה של משטחים להיות מאוחדים. מערכת הנשלטת על-ידי מחשב יכולה ליצור רצפים מוגדרים על-ידי המשתמש במיקומים שונים ובעוצמות שונות, כדי ליצור נופי משאבים עם השתנות מרחבית ושינויים בזמן הזמני. בכל נוף כימי, הדינמיקה של התנועה החיידקית בקנה המידה הפרטני וההצטברות שלהם ברמת האוכלוסייה ניתן להשיג, ובכך לאפשר את הקוונפיקציה של ביצועי השיטה ואת השפעותיו על הצטברות חיידקים בסביבות רלוונטיות אקולוגית.

Introduction

חיידקים להסתמך על כימוטווניות, התהליך של זיהוי הדרגתיים כימיים ושינוי תנועתיות בתגובה1, כדי לנווט נופים כימיים, גישה מקורות מזינים ומארחים, ולברוח חומרים רעילים. תהליכי מיקרוסקאלה אלה קובעים את הקינטיקה המקרו-שלמה של אינטראקציות בין חיידקים לסביבתם2,3. ההתפתחויות האחרונות במיקרופלואידיקה וטכנולוגיות מיקרוייצור, כולל ליתוגרפיה רכה4, יש מהפכה היכולת שלנו ליצור מיקרו סביבות מבוקרת שבו ללמוד את האינטראקציות של חיידקים. לדוגמה, ניסויים בעבר למדו כימוטקיית בקטריאלי על ידי יצירת בשליטה גבוהה, מעברי צבע יציבים של ביניים ריכוז מזינים גבוה5,6. עם זאת, בסביבות טבעיות, מעברי צבע כימיים מיקרוסולם יכול להיות קצר חיים-התפוגג על ידי דיפוזיה מולקולרית-ואת תנאי הרקע הם לעיתים קרובות מדלל מאוד7. כדי למדוד באופן ישיר את תגובת כימוטקטקטיקה של אוכלוסיות חיידקים נחשף תחילה לסביבות כימיות בלתי יציבות, המציאו וכאן לתאר שיטות כדי לשלב טכנולוגיה microflu, עם photolysis, ובכך לחקות מעברי צבע כי חיידקים פראי המפגש בטבע.

טכנולוגיית הזדקנות מעסיקה בדיקה רגישה באור אשר מכמס פונקציונלית biomolecules בצורה לא פעילה. הקרנה משחררת את המולקולה הכלובית ומאפשרת את המיקוד המכוון של תהליך ביולוגי8. בשל השליטה המהירה והמדויקת של הכימיה התאית שההזדקנות מעניקה לה9, פוטוליזה של תרכובות בכלוב הועסק באופן מסורתי על ידי ביולוגים, פיזיקולוגים ומדענים נוירולוגים לחקור את הפעלת גנים10, יון ערוצים11, ונוירונים12. לאחרונה, מדענים יש מינוף את היתרונות המשמעותיים של פוטוליזה ללמוד כימותוניות13, כדי לקבוע את הדינמיקה החלפת הדגלים של תאים חיידקיים בודדים נחשף לגירוי ממושך של כימוסטנט14,15, ולחקור דפוסי תנועתיות של תאים זרע אחד בתלת מימדי (3d) מעברי צבע16.

בגישה שלנו, אנו מיישמים פוטוליזה של חומצות אמינו בכלוב בתוך התקנים microflu, כדי ללמוד את התגובה ההתנהגותית של אוכלוסיה חיידקית לפולסים כימיים מבוקרים, אשר הופכים כמעט מיידי זמין באמצעות photorהפצה. השימוש של מטרה בהגדלה נמוכה (4x) (NA = 0.13, עומק של מיקוד כ 40 μm) מאפשר הן את ההתבוננות של התגובה ברמת האוכלוסייה של אלפי חיידקים מעל שדה גדול של נוף (3.2 mm x 3.2 מ”מ), ואת מדידת התנועה ברמה של תא בודד. אנו מציגים שני יישומים של שיטה זו: 1) שחרורו של פעימה כימית אחת כדי ללמוד הצטברות חיידקי לפיזור הדינמיקה החל בתנאים אחיד, ו 2אני) שחרורו של פולסים מרובים כדי לאפיין את הדינמיקה הצטברות חיידקים תחת זמן שונים, הטרוגנית הטרוגניות התנאים כימוסטנט. שיטה זו נבדקה על החיידקים הימיים Vibrio כימוא ביצוע מוניות לכיוון גלוטמט חומצות אמינו17, אבל השיטה היא ישימה באופן כללי על שילובים שונים של מינים וכימורים, כמו גם תהליכים ביולוגיים מעבר כימוקווניות (למשל, ספיגת מזינים, חשיפה לאנטיביוטיקה, מקווחישה). גישה זו מבטיחה לעזור להבהיר את האקולוגיה ואת ההתנהגות של מיקרואורגניזמים בסביבות ריאליסטי ולחשוף את הסחר הנסתר כי חיידקים בודדים הפנים בעת ניווט מעברי צבע דינמי ארעי.

Protocol

1. ייצור מכשיר מיקרופלואידיג לניסוי הפולס הכימי היחיד עצב את הערוץ באמצעות תוכנת עיצוב בעזרת מחשב (CAD) והדפס אותו על סרט שקיפות כדי ליצור את מסיכת הצילום (איור 1א). הרכיבו את המאסטר באמצעות ליתוגרפיה רכה (תחת תנאי החדר הנקי). נקו וופל סיליקון (4 אינץ ‘) בר…

Representative Results

השתמשנו המכשירים microflu, ו מיליפלואידיג (איור 1) כדי ללמוד פרופילים הצטברות חיידקים תחת תנאי מזינים דינמיים. מסלולים חיידקיים חולצו מקטעי וידאו מוקלטים שנרכשו על ידי מיקרוסקופ ניגודיות פאזה של הדינמיקה הצטברות-פליטת של אוכלוסייה חיידקית בעקבות פעימה כימית שפורסמה על ידי פו…

Discussion

שיטה זו מאפשרת לחוקרים לחקור כימוטוניות חיידקי תחת נשלט, מעברי צבע דינמיים במכשירים מיקרו ו-מיליפלואידיג, המאפשר רכישת נתונים שאינם מפוקחים. היצירה הכמעט-מיידית של פולסים כימיים במיקרוסקאלה על ידי פוטוליזה שואפת לשכפל את סוגי פולסים תזונתיים כי חיידקים מפגש פראי מתוך מגוון של מקורות, למ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים מודים למתקן המיקרוייצור הראשון ב-ETH ציריך. עבודה זו נתמכת על ידי מועצת המחקר האוסטרלי החוקר הקריירה הקדומה פרס DE180100911 (כדי D.R.B.), גורדון ובטי מור היוזמה הימית פרס החוקר GBMF3783 (כדי R.S.), ו שוויצרי קרן המדע הלאומי המענק 1-002745-000 (לR.S.).

Materials

(3-Aminopropyl) triethoxysilane (APTES) Sigma-Aldrich A3648 >98% purity, highly toxic
CELLSTAR tube Greiner Bio-One 210261 50 ml
Centrifuge Eppendorf 5424R to eliminate spent media from the bacterial culture
Digital Incubators Incu-Line VWR-CH 390-0384 to bake 3D master
Duster VWR-CH 16650-22 to clean the wafer and microchannels
Hot plate VWR-CH 444-0601 to bond the microchannels
Isopropanol Sigma-Aldrich W292907
LightSafe micro centrifuge tubes Sigma-Aldrich Z688312 1.5 ml
MATLAB Mathworks for image analysis and bacterial tracking
Microcentrifuge tube Eppendorf 30120086 1.5 ml
Microscope glass slide VWR-CH 631-1552
Microscope Nikon Eclipse TiE Nikon Instruments MEA53100 with motorized stage
MNI-Glutamate Tocris Bioscience 1490 >98 % purity, photosensitive
Mold printing equipment Stratasys Objet30 3D printer
Mold printing service 3D Printing Studios Custom https://www.3dprintingstudios.com/
Nanodrop One UV-Vis Spectrophotometer Thermo Fisher Scientific ND-ONE-W to calibrate the uncaging
NIS Elements Nikon Instruments Microscope Imaging Software
Oven Venti-Line VWR-CH 466-3516 to bake PDMS (with forced convection)
Photoresist SU-8-3050 MicroChem Corp. SU8-3050
Plasma chamber Zepto Diener Electronic ZEPTO-1 to functionalize the surfaces before bonding
Polycarbonate membrane Sterlitech PCT0447100 0.4 µm pore size, 19 % open area, 24 µm thickness
Polyethylene microtubing Scientific Commodities BB31695-PE/2 I.D. x O.D.: 0.015" x 0.043" / 0.38mm x 1.09mm
Polystyrene Petri dish VWR-CH 25373-100 bottom surface (90 mm x 15 mm) to bond the millifluidic device
Scale VWR-CH 611-2605 to weight PDMS mixture
sCMOS camera Andor Zyla Oxford Instruments for phase contrast and fluorescence microscopy (max 100 fps)
Sea salt Instant Ocean Product No. SS1-160p
SolidWorks 2015 Dassault Systemes SolidWorks Used to design the mold
Spectra X light engine Lumencolor for LED 395 nm
Sylgard 184 Dow Corning 110-41-155 PDMS Si Elastomer Kit; curing agent
Syringe (Luer-Lok) B Braun Omnifix 4616308F
Syringe Needle Agani A228 from 10 to 30 ml
Syringe Pump 11 Pico Plus Elite Harvard Apparatus 70-4506 Terumo Agani 23 gauge 5/8 inch (16mm)
VeroGrey Stratasys Dual Syringe Pump
Vortex-Genie Scientific Industries SI-0236 Mold Material

References

  1. Armitage, J. P., Lackie, J. M. . The biology of the chemotactic response. , (1991).
  2. Azam, F., Malfatti, F. Microbial structuring of marine ecosystems. Nature Reviews Microbiology. 5 (10), 782-791 (2007).
  3. Buchan, A., LeCleir, G. R., Gulvik, C. A., González, J. M. Master recyclers: features and functions of bacteria associated with phytoplankton blooms. Nature Reviews Microbiology. 12 (10), 686-698 (2014).
  4. Whitesides, G. M., Ostuni, E., Takayama, S., Jiang, X., Ingber, D. E. Soft lithography in biology and biochemistry. Annual Review of Biomedical Engineering. 3, 335-373 (2001).
  5. Segall, J. E., Block, S. M., Berg, H. C. Temporal comparisons in bacterial chemotaxis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 83 (23), 8987-8991 (1986).
  6. Waite, A. J. Non-genetic diversity modulates population performance. Molecular Systems Biology. 12 (12), 895 (2016).
  7. Stocker, R. Marine Microbes See a sea of gradients. Science. 338 (6107), 628-633 (2012).
  8. Ellis-Davies, G. C. R. Caged compounds: photorelease technology for control of cellular chemistry and physiology. Nature Methods. 4 (8), 619-628 (2007).
  9. Kaplan, J. H., Somlyo, A. P. Flash photolysis of caged compounds: New tools for cellular physiology. Trends in Neurosciences. 12 (2), 54-59 (1989).
  10. Ando, H., Furuta, T., Tsien, R. Y., Okamoto, H. Photo-mediated gene activation using caged RNA/DNA in zebrafish embryos. Nature Genetics. 28 (4), 317-325 (2001).
  11. England, P. M., Lester, H. A., Davidson, N., Dougherty, D. A. Site-specific, photochemical proteolysis applied to ion channels in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 94 (20), 11025-11030 (1997).
  12. Fino, E. RuBi-Glutamate: Two-photon and visible-light photoactivation of neurons and dendritic spines. Frontiers in Neural Circuits. 3, (2009).
  13. Khan, S., Spudich, J. L., McCray, J. A., Trentham, D. R. Chemotactic signal integration in bacteria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (21), 9757-9761 (1995).
  14. Sagawa, T. Single-Cell E. coli Response to an Instantaneously Applied Chemotactic Signal. Biophysical Journal. 107 (3), 730-739 (2014).
  15. Xie, L., Lu, C., Wu, X. L. Marine Bacterial Chemoresponse to a Stepwise Chemoattractant Stimulus. Biophysical Journal. 108 (3), 766-774 (2015).
  16. Jikeli, J. F., et al. Sperm navigation along helical paths in 3D chemoattractant landscapes. Nature Communications. 6, 7985 (2015).
  17. Brumley, D. R., et al. Bacteria push the limits of chemotactic precision to navigate dynamic chemical gradients. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116 (22), 10792-10797 (2019).
  18. Aran, K., Sasso, L. A., Kamdar, N., Zahn, J. D. Irreversible, direct bonding of nanoporous polymer membranes to PDMS or glass microdevices. Lab on a Chip. 10 (5), 548 (2010).
  19. ZoBell, C. E. The cultural requirements of heterotrophic aerobes. Journal of Marine Research. 4, 42-75 (1941).
  20. Canepari, M., Nelson, L., Papageorgiou, G., Corrie, J. E. T., Ogden, D. Photochemical and pharmacological evaluation of 7-nitroindolinyl-and 4-methoxy-7-nitroindolinyl-amino acids as novel, fast caged neurotransmitters. Journal of Neuroscience Methods. 112 (1), 29-42 (2001).
  21. Trigo, F. F., Corrie, J. E. T., Ogden, D. Laser photolysis of caged compounds at 405nm: Photochemical advantages, localisation, phototoxicity and methods for calibration. Journal of Neuroscience Methods. 180 (1), 9-21 (2009).
  22. Ribeiro, A. C. F. Mutual diffusion coefficients of L-glutamic acid and monosodium L-glutamate in aqueous solutions at T=298.15K. The Journal of Chemical Thermodynamics. 74, 133-137 (2014).
  23. Sharqawy, M. H., Lienhard, J. H., Zubair, S. M. Thermophysical properties of seawater: a review of existing correlations and data. Desalination and Water Treatment. 16 (1-3), 354-380 (2010).
  24. . Nikon depth of field calculator Available from: https://www.microscopyu.com/tutorials/depthoffield (2019)
  25. Kiørboe, T., Thygesen, U. H. Fluid motion and solute distribution around sinking aggregates: II. Implications for remote detection by colonizing zooplankters. Marine Ecology Progress Series. 211, 15-25 (2001).
  26. Blackburn, N., Fenchel, T., Mitchell, J. Microscale nutrient patches in planktonic habitats shown by chemotactic bacteria. Science. 282 (5397), 2254-2256 (1998).
  27. Stocker, R., Seymour, J. R., Samadani, A., Hunt, D. E., Polz, M. F. Rapid chemotactic response enables marine bacteria to exploit ephemeral microscale nutrient patches. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (11), 4209-4214 (2008).
  28. Altindal, T., Chattopadhyay, S., Wu, X. L. Bacterial chemotaxis in an optical trap. PLoS ONE. 6 (4), 18231 (2011).
  29. Zhu, X., et al. Frequency-Dependent Escherichia coli Chemotaxis behavior. Physical Review Letters. 108 (12), (2012).
  30. Baraban, L., Harazim, S. M., Sanchez, S., Schmidt, O. G. Chemotactic behavior of catalytic motors in microfluidic channels. Angewandte Chemie International Edition. 52 (21), 5552-5556 (2013).
check_url/fr/60589?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Carrara, F., Brumley, D. R., Hein, A. M., Yawata, Y., Salek, M. M., Lee, K. S., Sliwerska, E., Levin, S. A., Stocker, R. Generating Controlled, Dynamic Chemical Landscapes to Study Microbial Behavior. J. Vis. Exp. (155), e60589, doi:10.3791/60589 (2020).

View Video