Summary

Evaluación locomotora del modelo de enfermedad de Parkinson basado en pez cebra adulto inducido por 6-hidroxidopamina

Published: December 28, 2021
doi:

Summary

El presente protocolo describe la inyección intraerebroventricular (ICV) de pez cebra adulto con 6-hidroxidopamina neurotóxica (6-OHDA) en el diencéfalo ventral (Dn) y la evaluación del deterioro y posterior recuperación del comportamiento de natación postlesión mediante el uso de la prueba de tanque abierto, que se acompaña de análisis utilizando un software de seguimiento de video.

Abstract

Las limitaciones de los tratamientos actuales para retrasar la pérdida neuronal dopaminérgica en la enfermedad de Parkinson (EP) plantean la necesidad de terapias alternativas que puedan restaurar estas neuronas. Mucho esfuerzo se dirige actualmente hacia una mejor comprensión de la neurorregeneración utilizando modelos preclínicos in vivo . Esta capacidad regenerativa para la autorreparación es, sin embargo, ineficiente en los mamíferos. Los animales no mamíferos como el pez cebra han surgido como un excelente modelo neurorregenerativo debido a su capacidad para autorrenovarse continuamente y tener una homología cerebral cercana a los humanos. Como parte del esfuerzo para dilucidar los eventos celulares involucrados en la neuroregeneración in vivo, hemos establecido el modelo de EP basado en pez cebra adulto inducido por 6-hidroxidopamina (6-OHDA). Esto se logró a través de la microinyección intracerebroventricular (ICV) optimizada de 99.96 mM 6-OHDA para extirpar específicamente las neuronas dopaminérgicas (DpN) en el diencéfalo ventral (Dn) del cerebro del pez cebra. La inmunofluorescencia indicó más del 85% de la ablación de DpN en el tercer día después de la eclosión y la restauración completa de DpN en el sitio lesionado 30 días después de la agresión. El presente estudio determinó el deterioro y posterior recuperación del comportamiento de natación del pez cebra tras la lesión mediante el uso de la prueba de campo abierto a través de la cual se cuantificaron dos parámetros, la distancia recorrida (cm) y la velocidad media (cm/s). La locomoción se evaluó analizando las grabaciones de peces individuales de cada grupo (n = 6) utilizando un software de seguimiento de video. Los hallazgos mostraron una reducción significativa (p < 0,0001) en la velocidad (cm / s) y la distancia recorrida (cm) del pez cebra lesionado 3 días después de la muerte en comparación con la farsa. El pez cebra lesionado exhibió una recuperación completa del comportamiento de natación 30 días después de la recesión. Los presentes hallazgos sugieren que el pez cebra adulto lesionado 6-OHDA es un excelente modelo con calidad reproducible para facilitar el estudio de la neurorregeneración en la EP. Los estudios futuros sobre los mecanismos subyacentes a la neurorregeneración, así como los factores intrínsecos y extrínsecos que modulan el proceso pueden proporcionar información importante sobre las nuevas estrategias de tratamiento de reemplazo celular contra la EP.

Introduction

La enfermedad de Parkinson (EP), una enfermedad caracterizada distintivamente por rigidez muscular, temblor en reposo y bradicinesia, es la enfermedad neurológica de más rápido crecimiento en el mundo1,2. El riesgo y la prevalencia de EP aumentan rápidamente con la edad, especialmente en individuos de 50 años o más3. La etiología y la patogénesis de la EP hasta ahora siguen siendo poco conocidas. Esto a menudo ha dejado el inicio temprano de la EP sin diagnosticar. En la actualidad, la falta de dopamina y la pérdida de neuronas dopaminérgicas (DpN) en pacientes con EP están fuertemente ligadas a la manifestación de síntomas motores4. Aprovechando esta relación, se han diseñado varios tratamientos para actuar directamente como reemplazo de dopamina (es decir, levodopa) o para compensar la pérdida de DpN (es decir, estimulación cerebral profunda). Aunque estos tratamientos producen beneficios sintomáticos, no modifican el curso deteriorado de la enfermedad5. En vista de esta debilidad significativa, se ha propuesto la terapia de reemplazo celular. Sin embargo, la eficacia de este enfoque es inconsistente dados los desafíos de la preparación del injerto, el control del crecimiento celular y la inestabilidad del fenotipo. La terapia de reemplazo celular, que había planteado preocupaciones éticas, también plantea el riesgo de inducir tumores cerebrales y reacciones inmunes no deseadas6,7.

Las limitaciones de las estrategias terapéuticas actuales han llevado a un mayor énfasis en la regeneración de DpN como un enfoque potencial en el tratamiento de la EP. La regeneración de DpN o neuroregeneración se ha convertido en uno de los avances prometedores en el manejo de la EP, no solo debido a su potencial como nuevo método terapéutico sino también como medio para comprender el mecanismo de la enfermedad8, 9. Este enfoque se centra en la restauración de la función neuronal a través de la diferenciación, la migración y la integración de las células progenitoras existentes en los circuitos lesionados10. Con el fin de explorar más a fondo la neurorregeneración, se han llevado a cabo varios estudios in vivo. Se encontró que vertebrados como mamíferos, anfibios y reptiles generan nuevas células cerebrales después de una lesión11,12. Entre los vertebrados, los animales mamíferos son más buscados dado su parecido genético con los seres humanos. Los mamíferos, sin embargo, exhiben una capacidad reparadora limitada y pobre en el sistema nervioso central (SNC) que puede durar hasta la edad adulta después de una lesión cerebral13. En general, los mamíferos no son adecuados como modelos animales para comprender la neurorregeneración, dado que el bajo número de neuronas producidas no será suficiente para restaurar los circuitos neuronales dañados observados en la EP. Como tal, el modelo basado en teleósteos, específicamente en el pez cebra, es muy favorecido por su alta tasa proliferativa, capacidad de autorrenovación continua y estrecha homología cerebral con humanos14,15.

El pez cebra se usa más comúnmente para estudiar el movimiento desordenado en PD16. El modelo de EP basado en pez cebra generalmente es inducido por neurotoxinas, que incluyen 1-metil-4-fenil-1,2,3,6-tetrahidropiridina (MPTP) y 6-hidroxidopamina (6-OHDA)17. Aunque son efectivos para inducir la pérdida específica de DpN y la disminución de los niveles de dopamina, los modelos basados en MPTP no imitan de cerca las condiciones de la EP, ya que la pérdida de DpN no se limita únicamente al SNC18. La incapacidad del 6-OHDA para atravesar la barrera hematoencefálica restringió sus efectos sobre los cambios celulares y funcionales dentro del cerebro cuando se administra intracranealmente en lugar de intramuscular19. La administración periférica de 6-OHDA provocó una reducción global de los niveles de dopamina en todo el sistema nervioso20. Mientras que la administración de 6-OHDA en el líquido cefalorraquídeo causó la ablación de DpN en todo el SNC21, que no imita la condición como se ve en la EP por la cual la pérdida de DpN ocurre específicamente en la sustancia negra del cerebro humano. La administración de ICV de 6-OHDA, por el contrario, indujo específicamente una ablación significativa de DpN en el área de Dn ventral en el cerebro del pez cebra, que se parecía mucho a la sustancia negra22. Curiosamente, la recuperación de DpN se reportó 30 días después de la lesión inducida por 6-OHDA y estas neuronas sobrevivieron a lo largo de la vida23,24. La recuperación funcional de DpN se demostró a través de una evaluación locomotora de la distancia recorrida (cm) y la velocidad media (cm/s) utilizando el modelo PD adulto basado en pez cebra inducido por 6-OHDA22.

Protocol

El presente estudio ha sido aprobado por el Comité de Investigación y Ética Animal (CARE), Universiti Technologi MARA (UiTM) [Referencia No: UiTM CARE 346/2021, de fecha 7 de mayo de 2021]. NOTA: Se utilizaron los protocolos publicados22,25,26 para la cría y el mantenimiento estándar del modelo de DP de pez cebra adulto con lesiones 6-OHDA. Se realizaron experimentos con peces cebra machos adulto…

Representative Results

El presente experimento evaluó los cambios en el comportamiento de natación del pez cebra adulto después de la microinyección de ICV con 6-OHDA. La razón para utilizar 6-OHDA como neurotoxina de elección se debió a su incapacidad para cruzar la barrera hematoencefálica, lo que produjo una ablación específica y dirigida de DpN en el área de interés-diencéfalo ventral (Dn)16. La subpoblación dpn aquí tiene semejanza anatómica con la subpoblación DpN en la sustancia negra pars compac…

Discussion

El presente trabajo demostró con éxito la evaluación locomotora del modelo de EP adulto basado en pez cebra adulto inducido por 6-OHDA. Todo el experimento involucró tres pasos principales: preparaciones de microinyección pre-ICV, microinyección ICV de pez cebra y evaluación locomotora. Para garantizar la recuperación saludable del pez cebra adulto después del procedimiento de microinyección de ICV y un buen resultado experimental, se han recomendado algunas buenas prácticas para cada paso en el presente estud…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por el Ministerio de Educación Superior de Malasia bajo el Programa de Becas de Investigación Fundamental [600-IRMI / FRGS 5/3 (033/2019)].

Materials

Materials
6-Hydroxydopamine (6-OHDA) Sigma-Aldrich, Missouri, USA 162957
Ascorbic acid Thermo Fisher Scientific, California, USA FKC#A/8882/53
Disposable pasteur pipette, 3 mL Thermo Fisher Scientific, California, USA FB55348
Microcentrifuge tube, 0.2 mL Eppendorf, Hamburg, Germany 30124332
Nice conical flask, 100 mL Evergreen Engineering & Resources, Semenyih, Malaysia SumYau0200
Phosphate buffered saline (PBS) Sigma-Aldrich, Missouri, USA P4417
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich, Missouri, USA S5761
Sodium chloride Merck, Darmstadt, Germany 106404
Stereomicroscope Nikon, Tokyo, Japan SMZ745
Tricaine methanesulfonate (MS-222) Sigma-Aldrich, Missouri, USA E10521
Equipment
ANY-maze software Stoelting Co., Illinois, USA version 7.0; video tracking software
Cubis II Micro Lab Balance Sartorius, Göttingen, Germany SE 2
FemtoJet IV microinjector Eppendorf, Hamburg, Germany 5192000035
Femtotip II, sterile injection capillary Eppendorf, Hamburg, Germany 5242957000
InjectMan 4 micromanipulator Eppendorf, Hamburg, Germany 5192000027
LED Portable Lamp MR. DIY, Selangor, Malaysia 9023251 20 mAh
PELCO Pro Superalloy, offset, fine tips Ted Pella, California, USA 5367-12NM
Shanda aquarium heater Yek Fong Aquarium, Selangor, Malaysia SDH-228
Thermometer Sera Precision, Heinsberg, Germany 52525
Video camera Nikon, Tokyo, Japan D3100

References

  1. Dorsey, E. R., et al. regional, and national burden of Parkinson’s disease, 1990-2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. Lancet Neurology. 17 (11), 939-953 (2018).
  2. Maserejian, N., Vinikoor-Imler, L., Dilley, L. Estimation of the 2020 global population of Parkinson’s Disease (PD). Movement Disorder Council. 35 (1), 198 (2020).
  3. Hirsch, L., Jette, N., Frolkis, A., Steeves, T., Pringsheim, T. The Incidence of Parkinson’s Disease: A Systematic Review and Meta-Analysis. Neuroepidemiology. 46 (4), 292-300 (2016).
  4. Przedborski, S. The two-century journey of Parkinson disease research. Nature Review Neuroscience. 18 (4), 251-259 (2017).
  5. Cookson, M. R. . Disease-Modifying Targets in Neurodegenerative Disorders. , 157-174 (2017).
  6. Jamebozorgi, K., et al. Cellular and molecular aspects of Parkinson treatment: Future therapeutic perspectives. Molecular Neurobiology. 56 (7), 1-13 (2018).
  7. Parmar, M., Grealish, S., Henchcliffe, C. The future of stem cell therapies for Parkinson disease. Nature Review Neuroscience. 21 (1), 1-13 (2020).
  8. Foltynie, T. Can Parkinson’s disease be cured by stimulating neurogenesis. Journal of Clinical Investigation. 125 (3), 978-980 (2015).
  9. Winner, B., Winkler, J. Adult neurogenesis in neurodegenerative diseases. Cold Spring Harbour Perspect Biology. 7 (4), 021287 (2015).
  10. Huang, C., et al. Nerve guidance conduits from aligned nanofibers: improvement of nerve regeneration through longitudinal nanogrooves on a fiber surface. ACS Applied Materials & Interfaces. 7 (13), 7189-7196 (2015).
  11. Alunni, A., Bally-Cuif, L. A comparative view of regenerative neurogenesis in vertebrates. Development. 143 (5), 741-753 (2016).
  12. Dietz, V., Schwab, M. E. From the rodent spinal cord injury model to human application: promises and challenges. Journal of Neurotrauma. 34 (9), 1826-1830 (2017).
  13. La Rosa, C., Bonfanti, L. Brain plasticity in mammals: An example for the role of comparative medicine in the neurosciences. Frontiers in Veterinary Science. 5 (274), 1-8 (2018).
  14. Ferretti, P., Prasongchean, W. . Neural Stem Cells in Development, Adulthood and Disease. , 1-21 (2015).
  15. Vijayanathan, Y., et al. Adult endogenous dopaminergic neuroregeneration against Parkinson’s Disease: Ideal animal models. Neurotoxicity Research. 39 (2), 504-532 (2021).
  16. Vaz, R. L., Outeiro, T. F., Ferreira, J. J. Zebrafish as an animal model for drug discovery in Parkinson’s disease and other movement disorders: a systematic review. Frontier Neuroscience. 9, 347 (2018).
  17. Nie, S., et al. Small molecule TrkB agonist deoxygedunin protects nigrostriatal dopaminergic neurons from 6-OHDA and MPTP induced neurotoxicity in rodents. Neuropharmacology. 99, 448-458 (2015).
  18. Schober, A. Classic toxin-induced animal models of Parkinson’s disease: 6-OHDA and MPTP. Cell Tissue Research. 318 (1), 215-224 (2004).
  19. Betarbet, R., Sherer, T. B., Greenamyre, J. T. Animal models of Parkinson’s disease. Bioessays. 24 (4), 308-318 (2002).
  20. Anichtchik, O. V., Kaslin, J., Peitsaro, N., Scheinin, M., Panula, P. Neurochemical and behavioural changes in zebrafish Danio rerio after systemic administration of 6-hydroxydopamine and 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine. Journal of Neurochemistry. 88 (2), 443-453 (2004).
  21. Fiametti, L. O., Correa, C. N., Castro, L. M. d. Peptide profile of zebrafish brain in a 6-OHDA-induced Parkinson model. Zebrafish. 18 (1), 55-65 (2021).
  22. Vijayanathan, Y., et al. 6-OHDA-lesioned adult zebrafish as a useful Parkinson’s disease model for dopaminergic neuroregeneration. Neurotoxicity Research. 32 (3), 496-508 (2017).
  23. Caldwell, L. J., et al. Regeneration of dopaminergic neurons in adult zebrafish depends on immune system activation and differs for distinct populations. Journal of Neuroscience. 39 (24), 4694-4713 (2019).
  24. Zupanc, G. K., Hinsch, K., Gage, F. H. Proliferation, migration, neuronal differentiation, and long-term survival of new cells in the adult zebrafish brain. Journal of Comparative Neurology. 488 (3), 290-319 (2005).
  25. Lawrence, C. The husbandry of zebrafish (Danio rerio): a review. Aquaculture Research. 269 (1-4), 1-20 (2007).
  26. Reed, B., Jennings, M. Guidance on the Housing and Care of Zebrafish Danio rerio. Royal Society for the Prevention of Cruelty to Animals (RSPCA). , 7-53 (2011).
  27. Avdesh, A., et al. Regular care and maintenance of a zebrafish (Danio rerio) laboratory: an introduction. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (69), e4196 (2012).
  28. Altenhofen, S., et al. Tebuconazole alters morphological, behavioral and neurochemical parameters in larvae and adult zebrafish (Danio rerio). Chemosphere. 180, 483-490 (2017).
  29. Bridi, D., Altenhofen, S., Gonzalez, J. B., Reolon, G. K., Bonan, C. D. Glyphosate and Roundup alter morphology and behavior in zebrafish. Toxicology. 392, 32-39 (2017).
  30. Wright, D., Krause, J. Repeated measures of shoaling tendency in zebrafish (Danio rerio) and other small teleost fishes. Nature Protocols. 1 (4), 1828-1831 (2006).
  31. Pienaar, I. S., Götz, J., Feany, M. B. Parkinson’s disease: insights from non-traditional model organisms. Progress in Neurobiology. 92 (4), 558-571 (2010).
  32. Becker, T., Becker, C. G. Axonal regeneration in zebrafish. Current Opinion in Neurobiology. 27, 186-191 (2014).
  33. Collymore, C., Tolwani, A., Lieggi, C., Rasmussen, S. Efficacy and safety of 5 anesthetics in adult zebrafish (Danio rerio). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 53 (2), 198-203 (2014).
  34. Katz, E. M., et al. The stability and efficacy of tricaine methanesulfonate (MS222) solution after long-term storage. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 59 (4), 393-400 (2020).
  35. Thiele, S. L., Warre, R., Nash, J. E. Development of a unilaterally-lesioned 6-OHDA mouse model of Parkinson’s disease. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (60), e3234 (2012).
  36. Neiffer, D. L., Stamper, M. A. Fish sedation, analgesia, anesthesia, and euthanasia: considerations, methods, and types of drugs. Institute for Laboratory Animal Research. 50 (4), 343-360 (2009).
  37. Barbosa Júnior, A., et al. . Zebrafish Protocols for Neurobehavioral Research. 66, 323-330 (2012).
  38. Cocchiaro, J. L., Rawls, J. F. Microgavage of zebrafish larvae. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (72), e4434 (2013).
  39. Stewart, A., et al. Modeling anxiety using adult zebrafish: a conceptual review. Neuropharmacology. 62 (1), 135-143 (2012).
  40. Sykes, D. J., Suriyampola, P. S., Martins, E. P. Recent experience impacts social behavior in a novel context by adult zebrafish (Danio rerio). PLOS ONE. 13 (10), 0204994 (2018).
  41. Collymore, C., Tolwani, R. J., Rasmussen, S. The behavioral effects of single housing and environmental enrichment on adult zebrafish (Danio rerio). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (3), 280-285 (2015).
  42. Grossman, L., et al. Characterization of behavioral and endocrine effects of LSD on zebrafish. Behavioural Brain Research. 214 (2), 277-284 (2010).
  43. Stewart, A., et al. Homebase behavior of zebrafish in novelty-based paradigms. Behavioural Processes. 85 (2), 198-203 (2010).
  44. Abozaid, A., Tsang, B., Gerlai, R. The effects of small but abrupt change in temperature on the behavior of larval zebrafish. Physiology and Behavior. 227, 113169 (2020).
  45. Sekhar, M., Singh, R., Bhat, A., Jain, M. Feeding in murky waters: acclimatization and landmarks improve foraging efficiency of zebrafish (Danio rerio) in turbid waters. Biology Letters. 15 (7), 1-5 (2019).
  46. Valcarce, D. G., Martínez-Vázquez, J. M., Riesco, M. F., Robles, V. Probiotics reduce anxiety-related behavior in zebrafish. Heliyon. 6 (5), 03973 (2020).
  47. Tunbak, H., Vazquez-Prada, M., Ryan, T. M., Kampff, A. R., Dreosti, E. Whole-brain mapping of socially isolated zebrafish reveals that lonely fish are not loners. eLife. 9, 55863 (2020).
  48. Shams, S., Seguin, D., Facciol, A., Chatterjee, D., Gerlai, R. Effect of social isolation on anxiety-related behaviors, cortisol, and monoamines in adult zebrafish. Behavioral Neuroscience. 131 (6), 492-504 (2017).
  49. Burghardt, G. M., et al. Perspectives – Minimizing observer bias in behavioral studies: A review and recommendations. Ethology. 118 (6), 511-517 (2012).
  50. Kalueff, A. V., et al. Towards a comprehensive catalog of zebrafish behavior 1.0 and beyond. Zebrafish. 10 (1), 70-86 (2013).
  51. Franco-Restrepo, J. E., Forero, D. A., Vargas, R. A. A review of freely available, open-source software for the automated analysis of the behavior of adult zebrafish. Zebrafish. 16 (3), 223-232 (2019).
  52. Beal, M. F. Parkinson’s disease: a model dilemma. Nature. 466 (7310), 8-10 (2010).
  53. Jha, U., Thirumalai, V. Neuromodulatory selection of motor neuron recruitment patterns in a visuomotor behavior increases speed. Current Biology. 30 (5), 788-801 (2020).
  54. Reimer, M. M., et al. Dopamine from the brain promotes spinal motor neuron generation during development and adult regeneration. Developmental Cell. 25 (5), 478-491 (2013).
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Citer Cet Article
Md Hamzah, N., Lim, S. M., Vijayanathan, Y., Lim, F. T., Abdul Majeed, A. B., Tan, M. P., Ramasamy, K. Locomotor Assessment of 6-Hydroxydopamine-induced Adult Zebrafish-based Parkinson’s Disease Model. J. Vis. Exp. (178), e63355, doi:10.3791/63355 (2021).

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