Denne artikkelen presenterer metodikken for å oppnå og vurdere vaskulær forkalkning ved å isolere murine aorta etterfulgt av ekstraksjon av forkalkede ekstracellulære vesikler for å observere mineraliseringspotensialet.
Kardiovaskulær sykdom er den ledende dødsårsaken i verden, og vaskulær forkalkning er den viktigste prediktoren for kardiovaskulære hendelser; Imidlertid er det for tiden ingen behandling eller terapeutiske alternativer for vaskulær forkalkning. Forkalkning begynner i spesialiserte ekstracellulære vesikler (EV), som tjener som nukleerende foci ved å aggregere kalsium- og fosfationer. Denne protokollen beskriver metoder for å oppnå og vurdere forkalkning i murine aorta og analysere tilhørende ekstraherte EVer. Først utføres grov disseksjon av musen for å samle eventuelle relevante organer, for eksempel nyrer, lever og lunger. Deretter isoleres murine aorta og skjæres ut fra aortaroten til lårarterien. To til tre aortaer blir deretter samlet og inkubert i en fordøyelsesløsning før de gjennomgår ultrasentrifugering for å isolere elbilene av interesse. Deretter bestemmes mineraliseringspotensialet til elbilene gjennom inkubering i en høyfosfatløsning og måling av lysabsorbansen ved en bølgelengde på 340 nm. Til slutt brukes kollagenhydrogeler til å observere den forkalkede mineraldannelsen og modningen produsert av elbilene in vitro.
Forkalkning er den viktigste prediktoren for hjerte- og karsykdom, dødelighet og sykelighet1. Forkalkning endrer arterieveggmekanikken på grunn av opphopning av kalsium- og fosfatmineraler2. Ved aterosklerose kan forkalkning forverre lokalt stress og resultere i plakkbrudd, som er den viktigste årsaken til hjerteinfarkt. Medial forkalkning – ofte som følge av kronisk nyresykdom – er mer utbredt og fører til betydelig arteriell avstivning, dysfunksjon og hjerteoverbelastning 2,3. For tiden er det ingen terapeutiske alternativer for behandling eller forebygging av vaskulær forkalkning.
Vaskulære glatte muskelceller (VSMCs) vedtar en osteoblastlignende fenotype og frigjør forkalkende ekstracellulære vesikler (EV) som kjerner begynnende mineraler, og driver dermed forkalkning 4,5,6. Denne prosessen ligner den fysiologiske mineraliseringen av osteoblaster i bein7. Selv om endepunktet for mineralisering er lik i vaskulærveggen og beinmatrisen, er mekanismene som de forkalkende EVene kommer fra, forskjellig i de to vevene8. Det finnes mange typer modeller som brukes til å studere vaskulær forkalkning. In vitro etterligner cellekulturmodeller den osteogene overgangen til VSMC og påfølgende mineraldannelse med spesialiserte medier.
Når man studerer in vivo forkalkning, avhenger modellen som brukes av hvilken type forkalkning som studeres. Hyperlipidemiske musemodeller brukes ofte til å studere aterosklerotisk forkalkning, som virker mer fokusert i lipidrike plakk9. I motsetning til dette er medial forkalkning mer utbredt gjennom vaskulaturen og studeres ofte ved hjelp av kroniske nyresykdomsmodeller som benytter et adeninrikt diettregime for å indusere nyresvikt eller kirurgiske teknikker for å fjerne betydelige deler av nyrene10,11. Aggressive modeller av vaskulær forkalkning har brukt en kombinasjon av både hyperlipidemiske og kroniske nyresykdomsmodeller12. Denne protokollen gir en metode for å vurdere vaskulær forkalkning i murine aorta for både mediale og aterosklerotiske forkalkninger, ekstrahere EV fra aortaveggen og observere mineraliseringspotensialet i EVene hentet fra in vitro cellekulturmodeller. Fremtidige studier kan bruke disse prosedyrene i mekanistiske analyser av vaskulær forkalkning og for å vurdere potensielle terapeutiske inngrep.
Når du utfører protokollen, er det viktig å merke seg de kritiske trinnene for å oppnå vellykkede resultater. Under isolering av murine aorta er det viktig at perfusjonen utføres riktig. Ved injeksjon av PBS må det utvises forsiktighet for ikke å punktere høyre ventrikkel. Dette vil føre til at væsken lekker direkte ut av ventrikkelen og ikke klarer å sirkulere gjennom lungene, og etterlater blod i aorta. Når perfusjonen er utført riktig og mikrodisseksjon har begynt, må alt fett- og fettvev fjernes fra ao…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra National Heart, Lung and Blood Institute of National Institutes of Health (NIH) (1R01HL160740 og 5 T32GM132054-04) og Florida Heart Research Foundation. Vi vil gjerne takke Kassandra Gomez for hennes hjelp med å syntetisere og avbilde hydrogelene.
8-well chambered coverglass | Thermo Scientific | 155409PK | |
10 mL Syringe | BD | 302995 | |
20 G 1 inch Needle | BD | 305175 | |
Collagen, High Concentraion, Rat Tail | Corning | 354249 | |
Collagenase | Worthington Biochemical | LS004174 | |
Curved Forceps | Roboz Surgical Instrument | RS-8254 | |
Dissection Dish | Living Systems Instrumentation | DD-90-S | |
Dissection Pan and Wax | United Scientific Supplies | DSPA01-W | |
DMEM | Cytiva | SH30022.FS | |
Isoflurane | Sigma-Aldrich | 26675-46-7 | |
LI-COR Odyssey | LI-COR | DLx | |
Micro Dissecting Curved Scissors (24 mm Blade) | Roboz Surgical Instrument | RS-5913 | |
Micro Dissecting Spring Scissors (13 mm Blade) | Roboz Surgical Instrument | RS-5677 | |
Micro Dissecting Spring Scissors (5 mm Blade) | Roboz Surgical Instrument | RS-5600 | |
Micro Dissecting Tweezers (0.10 x 0.06 mm Tip) | Roboz Surgical Instrument | RS-4976 | |
Optima MAX-TL Ultracentrifuge | Beckman Coulter | B11229 | |
OsteoSense 680EX | Perkin Elmer | NEV10020EX | |
Pierce Protease Inhibitor | Thermo Scientific | A32963 | |
Potassium Chloride | Fischer Chemical | P217 | |
RIPA Lysis and Extraction Buffer | G Biosciences | 786-489 | |
Sodium Chloride | Fischer Chemical | BP358 | |
Sodium Hydroxide | Thermo Scientific | A4782602 | |
Sodium phosphate monobasic | Sigma-Aldrich | S0751 | |
Sucrose | Sigma | S7903 | |
Synergy HTX Multimode Reader | Agilent | ||
Tissue culture plate, 96-well | Thermo Fisher | 167008 | |
T-Pins | United Scientific Supplies | TPIN02-PK/100 | |
Tris Hydrochloride | Fischer Chemical | BP153 |