Summary

Mejora de la fiabilidad de los biobancos de tumores de próstata con una técnica de muestreo y caracterización histológica mejoradas

Published: November 17, 2023
doi:

Summary

Este protocolo describe un método para facilitar la recolección de muestras de prostatectomía radical. El objetivo es mapear, caracterizar y micro-macro diseccionar muestras de tejido de los especímenes en base a criterios anatomopatológicos antes de almacenarlas en un Biobanco.

Abstract

La adquisición de muestras de tejido tumoral frescas y bien caracterizadas es fundamental para realizar estudios “ómicos” de alta calidad. Sin embargo, puede ser particularmente desafiante en el contexto del cáncer de próstata (CP) debido a la naturaleza única de este órgano y la alta heterogeneidad asociada con este tumor. Por otro lado, caracterizar histopatológicamente las muestras antes de su almacenamiento sin causar alteraciones significativas en los tejidos también es un desafío intrigante. En este contexto, presentamos un nuevo método de adquisición, mapeo, caracterización y microdisección de tejido prostático resecado basado en criterios anatomopatológicos.

A diferencia de los protocolos publicados anteriormente, este método reduce el tiempo necesario para el análisis histopatológico de la muestra prostática sin comprometer su estructura, que es crucial para evaluar los márgenes quirúrgicos. Además, permite la delineación y micro-macro disección de muestras frescas de tejido prostático, con un enfoque en áreas tumorales histológicas definidas por criterios patológicos como la puntuación de Gleason, lesiones precursoras (neoplasia intraepitelial prostática de alto grado – PIN) y lesiones inflamatorias (prostatitis). Estas muestras se almacenan en un Biobanco para su posterior análisis de investigación.

Introduction

El cáncer de próstata (CP) es el cáncer más frecuente en hombres y la causa de muerte en todo el mundo1. El tratamiento y el pronóstico del paciente dependen de la estadificación y el grado (puntuación de Gleason) del tumor, como lo demuestran las tasas de supervivencia a 5 años más altas de los tumores localizados y de grado bajo (grado 6 de Gleason) (99%) en comparación con los grados de Gleason altos y los tumores metastásicos (31%)2.

La recidiva local del CP y el fracaso del tratamiento se han relacionado con la alta heterogeneidad genética intratumoral característica de este tumor tipo3. Además, se considera que el CP es una enfermedad multifocal con varios focos tumorales que exhiben diferentes características morfológicas, histológicas y moleculares4, que pueden originarse de forma independiente o derivar de un ancestro común de las células tumorales5. Estudios previos han demostrado que la evolución del tumor difiere entre los pacientes en función de factores genéticos específicos que pueden promover la metástasis o confinar el linaje celular a la próstata5. Por lo tanto, la caracterización molecular de los diferentes focos tumorales es crucial no solo para proporcionar un diagnóstico y pronóstico más precisos, sino también para adaptar un tratamiento eficaz y personalizado para el paciente.

En este contexto, la investigación biomédica y los enfoques multiómicos integradores ofrecen oportunidades sin precedentes para clasificar los cánceres en diferentes subtipos, identificar biomarcadores diagnósticos y pronósticos, y descubrir marcadores relacionados con la respuesta al tratamiento. Además, estos abordajes contribuyen a una mejor comprensión de la biología de esta enfermedad 6,7. Las muestras biológicas, ya sean tejidos o biofluidos, pueden analizarse utilizando diversas plataformas multiómicas (genómica, transcriptómica, proteómica, metabolómica, etcétera) para descubrir las características biológicas que subyacen a la fisiopatología del cáncer, abordando así las limitaciones actuales relacionadas con la heterogeneidad genética y fenotípica6. Sin embargo, es importante tener en cuenta que la calidad de los datos derivados de los estudios ómicos depende de la calidad de las muestras recogidas de los tumores, de su caracterización precisa y de su posterior procesamiento y almacenamiento8.

En este contexto, la obtención de tejido fresco de CP para la investigación presenta un desafío metodológico debido a la dificultad de la toma de muestras tumorales exitosas9. Los métodos previos incluían la toma de muestras aleatorias después de una prostatectomía radical, con malos resultados10. Sin embargo, los enfoques más recientes incorporan protocolos dirigidos basados tanto en imágenes de resonancia magnética (RM) como en datos de biopsia, lo que resulta en una mayor eficacia en la recolección de muestras tumorales11.

Por otro lado, la caracterización histopatológica de las muestras antes de su almacenamiento sin alteraciones significativas de los tejidos también plantea un reto interesante. En consecuencia, en muchos casos, la determinación histopatológica de las muestras se realiza después de su análisis (p. ej., análisis metabolómico de RMN HR 1H)12. Esta práctica conlleva gastos innecesarios, consumo de tiempo y la pérdida de un número importante de muestras que finalmente se excluyen del análisis (por ejemplo, muestras que, tras el análisis histopatológico, resultan no ser muestras tumorales). En otros casos, la caracterización histopatológica de las muestras se realiza antes de su análisis. De hecho, algunos estudios previos han intentado estandarizar métodos para proporcionar muestras de investigación representativas de alta calidad a partir de especímenes de prostatectomía radical para genómica y metabolómica13,14. Sin embargo, la eficiencia del muestreo es significativamente mayor cuando se realiza a partir de secciones ya confirmadas histológicamente (88%) que rompen el tejido, en comparación con cuando se realiza a partir de secciones no confirmadas (45%)1.

Aquí, se presenta una nueva metodología para superar estas limitaciones, con el objetivo de obtener muestras de PC frescas y bien caracterizadas antes de su almacenamiento en el Biobanco. Este método se ha desarrollado a través de esfuerzos colaborativos entre diferentes servicios clínicos (Urología, Anatomía Patológica y el Biobanco del Hospital La Fe). Es importante destacar que los Biobancos desempeñan un papel esencial en la recolección, procesamiento, conservación y almacenamiento de muestras biológicas, garantizando la alta calidad de las muestras y los datos, así como el cumplimiento de los requisitos éticos y legales 8,15,16.

Protocol

Este método se desarrolló a través de esfuerzos colaborativos que involucraron a diferentes servicios clínicos (Urología, Anatomía Patológica y el Biobanco del Hospital La Fe). El estudio se llevó a cabo de acuerdo con las directrices institucionales, nacionales e internacionales para el bienestar humano, y recibió la aprobación del Comité de Ética para la Investigación Biomédica del Instituto de Investigación Sanitaria Hospital Universitario y Politécnico La Fe (Valencia, España). Todas las muestras se …

Representative Results

Los resultados revelan que esta técnica ha permitido obtener material tumoral en el 61% de los casos estudiados (25 de 41 casos) (Tabla 1). Tabla 1: Datos histopatológicos de las muestras estudiadas. Resumen de los datos histopatológicos de las muestras utilizadas en el estudio. El cilindro de diagnóstico se refiere a la muestra de biopsia de próstata obtenida con fines diagnósticos, mientras que el cilindro procesado corresponde al cilindro obtenido de …

Discussion

En cualquier estudio de investigación, la obtención de muestras de calidad es un requisito esencial para reducir los sesgos sistemáticos y obtener resultados fiables22. Por lo tanto, el control de variables preanalíticas como la temperatura a la que se procesan y almacenan las muestras, el tiempo transcurrido desde la recolección de la muestra hasta el almacenamiento, el uso de materiales esterilizados o los efectos que la adición de conservantes u otros aditivos puede tener en las muestras …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

A.L. reconoce un contrato postdoctoral “Margarita Salas” (número 21-076), y MAM-T un contrato de investigación “María Zambrano” (número MAZ/2021/03 UP2021-021). Ambos contratos han sido financiados por la Unión Europea-Next generation EU.

Materials

Cadiere forceps Intuitive PN1052082-US 10/2021 Part number: 471049. 18 uses.
Conventional slides Knittel Glass 2021 Ground/ Frosted end
Cryostat microtome Thermo Fisher Scientific Criostato CryoStar NX50
Cryotubes Greiner Bio-One GmbH Ref.: 122280. CRYO S. PP, with screw cap, sterile. 
Da Vinci surgical system Intuitive PN1052082-US 10/2021 XI model
Dissection instruments Bayer Two tweezers and a surgical blade 
DPX Eukitt  Medizin- und Labortechnik GmbH 6.00.01.0001.06.01.01
Eosin Agilent 157252
Fenestrated bipolar forceps Intuitive PN1052082-US 10/2021 Part number: 471205. 14 lives.
Force bipolar Intuitive PN1052082-US 10/2021 Part number: 471405. 12 uses.
Freezers Thermo Scientific MODEL 907. -80 ºC
Hematoxylin Agilent 157251
Inmunohistochemistry Slides Agilent-Dako K802021-2
Large needle driver Intuitive PN1052082-US 10/2021 Part number: 471006. 15 uses.
Maryland bipolar forceps Intuitive PN1052082-US 10/2021 Part number: 471172. 14 uses.
Microscope Olympus Olympus cx40
Microtome blades PFM Medical a35
Monopolar curved scissors Intuitive PN1052082-US 10/2021 Part number: 470179. 10 uses.
OCT compound NEG-50 LOT.117340
PlusSpeed S Single-use Biopsy Device with beveled tip Peter Pflugbeil GmbH  PSS-1825-S
ProGasp forceps Intuitive PN1052082-US 10/2021 Part number: 471093. 18 uses.
Sample holder Disc Davidson Cryo Chuck. BradleyProducts 30 mm 
Tissue ink Pelikan 2021 Ink 4001 brilliant black (301168)
Xylol Quimipur Ref. 169

References

  1. Rawla, P. Epidemiology of prostate cancer. World Journal of Oncology. 10 (2), 63-89 (2019).
  2. Epstein, J. I. The 2019 Genitourinary Pathology Society (GUPS) white paper on contemporary grading of prostate cancer. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 145 (4), 461-493 (2021).
  3. Zhang, W. Intratumor heterogeneity and clonal evolution revealed in castration-resistant prostate cancer by longitudinal genomic analysis. Translational Oncology. 16, 101311 (2022).
  4. Haffner, M. C., et al. Genomic and phenotypic heterogeneity in prostate cancer. Nature Reviews Urology. 18 (2), 79-92 (2021).
  5. Woodcock, D. J. Prostate cancer evolution from multilineage primary to single lineage metastases with implications for liquid biopsy. Nature Communications. 11 (1), 5070 (2020).
  6. Heo, Y. J., Hwa, C., Lee, G. H., Park, J. M., An, J. Y. Integrative multi-omics approaches in cancer research: from biological networks to clinical subtypes. Molecules and Cells. 44 (7), 433-443 (2021).
  7. Menyhárt, O., Győrffy, B. Multi-omics approaches in cancer research with applications in tumor subtyping, prognosis, and diagnosis. Computational and Structural Biotechnology Journal. 19, 949-960 (2021).
  8. Annaratone, L. Basic principles of biobanking: from biological samples to precision medicine for patients. Virchows Archiv. 479 (2), 233-246 (2021).
  9. King, C. R., Long, J. P. Prostate biopsy grading errors: A sampling problem. International Journal of Cancer. 90 (6), 326-330 (2000).
  10. Jayadevan, R., Zhou, S., Priester, A. M., Delfin, M., Marks, L. S. Use of MRI-ultrasound fusion to achieve targeted prostate biopsy. Journal of Visualized Experiments. 146, e59231 (2019).
  11. Heavey, S., et al. Use of magnetic resonance imaging and biopsy data to guide sampling procedures for prostate cancer biobanking. Journal of Visualized Experiments. 152, 60216 (2019).
  12. Panach Navarrete, J. . Estudio metabolómico en tejido prostático y orina para el diagnóstico y pronóstico del cáncer de próstata. , (2022).
  13. Bertilsson, H., et al. A new method to provide a fresh frozen prostate slice suitable for gene expression study and MR spectroscopy. The Prostate. 71 (5), 461-469 (2011).
  14. . Show SOP – Biospecimen Research Database Available from: https://brd.nci.nih.gov/brd/sop/show/522 (2022)
  15. Dagher, G. Quality matters: International standards for biobanking. Cell Proliferation. 55 (8), e13282 (2022).
  16. Yüzbaşıoğlu, A., Özgüç, M. Biobanking: sample acquisition and quality assurance for "omics" research. New Biotechnology. 30 (3), 339-342 (2013).
  17. Carpagnano, F. A. Multiparametric MRI: local staging of prostate cancer. Current Radiology Reports. 8 (12), 27 (2020).
  18. Christophe, C. Prostate cancer local staging using biparametric MRI: assessment and comparison with multiparametric MRI. European Journal of Radiology. 132, 109350 (2020).
  19. Huynh, L. M., Ahlering, T. E. Robot-assisted radical prostatectomy: a step-by-step guide. Journal of Endourology. 32 (S1), S28-S32 (2018).
  20. van Leenders, G. J. L. H., et al. The 2019 International Society of Urological Pathology (ISUP) consensus conference on grading of prostatic carcinoma. The American Journal of Surgical Pathology. 44 (8), e87-e99 (2020).
  21. Liu, A., Collins, C. C., Diemer, S. M. Biobanking metastases and biopsy specimens for personalized medicine. Journal of Biorepository Science for Applied Medicine. 3, 57-67 (2015).
  22. Ellervik, C., Vaught, J. Preanalytical variables affecting the integrity of human biospecimens in biobanking. Clinical Chemistry. 61 (7), 914-934 (2015).
  23. Arellano, H. L., Castillo, C. O., Metrebián, B. E. Diagnostic agreement of the Gleason score in needle biopsy and radical prostatectomy and its clinical consequences. Rev Méd Chile. 132 (8), 971-978 (2004).
  24. . Concordancia en los valores de gleason en biopsia prostática transrectal y en prostatectomia radical en pacientes con cáncer de próstata del Hospital Cirujano Mayor Santiago Távara entre enero 2010 – junio del 2018 Available from: https://repositorio.urp.edu.pe/handle/20.500.14138/1886 (2019)
  25. Chavolla-Canal, A. J., et al. Concordancia del puntaje de Gleason en biopsia transrectal de próstata vs prostatectomía radical. Revista Mexicana de Urología. 81 (2), 1-10 (2021).
  26. Fan, X. J., et al. Impact of cold ischemic time and freeze-thaw cycles on RNA, DNA and protein quality in colorectal cancer tissues biobanking. Journal of Cancer. 10 (20), 4978-4988 (2019).
  27. Vaswani, A., et al. Comparative liquid chromatography/tandem mass spectrometry lipidomics analysis of macaque heart tissue flash-frozen or embedded in optimal cutting temperature polymer (OCT): Practical considerations. Rapid communications in Mass Spectrometry: RCM. 35 (18), e9155 (2021).
  28. Zhang, W., Sakashita, S., Taylor, P., Tsao, M. S., Moran, M. F. Comprehensive proteome analysis of fresh frozen and optimal cutting temperature (OCT) embedded primary non-small cell lung carcinoma by LC-MS/MS. Methods (San Diego, Calif). 81, 50-55 (2015).
  29. Boyd, A. E., Allegood, J., Lima, S. Preparation of human tissues embedded in optimal cutting temperature compound for mass spectrometry analysis. Journal of Visualized Experiments. 170, e62552 (2021).

Play Video

Citer Cet Article
Giner Moreno, E., Quereda-Flores, F., Hernández Chinchilla, J. A., Amigo Moreno, R., Perez Ruiz, M. D., Carcelén López, A., Rocher Benlloch, J., Molió Sanchís, P., Casares Calzada, A., Marqués-Torrejón, M. Á., Martínez-Cadenas, C., Ruiz Cerdá, J. L., Loras Monfort, A., Ramos Soler, D. Enhancing Prostate Tumor Biobanking Reliability with Improved Sampling Technique and Histological Characterization. J. Vis. Exp. (201), e65635, doi:10.3791/65635 (2023).

View Video