Summary

In vitro organoid Kultur av primära tumörer musändtarm

Published: May 17, 2013
doi:

Summary

En enkel metod för att fastställa primär mus organoid kolontumör beskrivs. Denna metod utnyttjar den funktion som kolon tumörceller överleva och växa in organoids i media som innehåller begränsade tillväxtfaktorer, medan normal kolonepitelcell inte.

Abstract

Flera humana och murina tjocktarmscancer cellinjer har fastställts, är fysiologisk integritet kolontumors såsom flera cellager, basal-apikala polaritet, förmåga att differentiera, och anoikis inte upprätthålls i kolon härledda linjer cancercell. Den aktuella studien visar på en metod för odling av primärtumör musändtarm organoids anpassade från Sato T et al. 1, som behåller viktiga fysiologiska funktioner i kolontumors. Denna metod består av musändtarm tumörvävnad insamling, närliggande normal kolonepitel dissociation, kolon tumörceller matsmältningen i enskilda celler, bädda celler kolontumör in matrigel och selektiv kultur bygger på principen att tumörceller bibehålla tillväxt på begränsande näringsämne villkor jämfört med normala epitelceller.

Den primära tumören organoids om isolerade från genetiskt modifierade möss ger ett mycket användbart system för att bedöma tumör autonom funktjon av specifika gener. Dessutom tumören organoids är mottagliga för genetisk manipulation av virus mediterade genleverans, därför signalvägar involverade i tjocktarmen tumorigenesis kan också undersökts genom överuttryck eller knockdown. Primärtumör organoids kultur ger en fysiologisk relevanta och genomförbara metoder för att studera de mekanismer och terapeutiska metoder för kolon Tumörgenesens.

Introduction

De tarmepitelceller föröka sig och vända vid en extra takt, snabbare än alla andra vävnader i ryggradsdjur kroppen 2,3. De delande celler inkluderande intestinala stamceller (ISC) och transit-förstärkande celler differentierar till antingen sekretoriska (bägare, Paneth och enteroendocrine) celler eller enterocyterna 3. ISC är beläget vid basen av kryptan. Paneth celler flytta ner till botten av kryptor och är långlivade, medan andra härstamningar migrerar uppåt till villi 3,4. Här cellerna exponeras för tarminnehållet inklusive mikrobiota och fälls från villus tips genom en anoikis-inducerad apoptotisk mekanism. Även kolon saknar villi och Paneth celler, är mekanismen för att upprätthålla homeostas liknande 4.

Den Wnt signalväg har varit inblandad i att spela en avgörande roll i intestinal spridning och ISC underhåll 4. Borttagande av the transkriptionsfaktor TCF4, en nedströms effektor av Wnt-signalering leder till förlust av intestinala stamceller och efterföljande nedbrytning av vävnaden 5. Likaså minskar transgen uttryck av Wnt inhibitor DKK1 epiteliala spridning och utarmar sekretoriska cellhärstamningar 6. Omvänt inducerar överuttryck av den Wnt agonisten R-spondin-en potent och snabb förökning av intestinala kryptceller 7.

Med tanke på vikten av Wnt-signalering för intestinal homeostas, är Wnt banan mutationer observeras ofta vid koloncancer 8. Tjocktarmscancer är den tredje vanligaste dödsorsaken i cancer i USA 9. Överskott intaget med rött kött och alkohol, minskad fysisk aktivitet, och ärftliga och somatiska mutationer anses vara riskfaktorer för tjocktarmscancer 10,11. Den adenomatös polypos coli (APC)-genen, en nyckel Wnt signalering faktor, är muterad i en majoritet av patienter med familjär, sporadisk, och kolit-associerad tjocktarmscancer 12,13. Mutationer av andra faktorer inblandade i Wnt signalväg inklusive Axin2 och β-catenin observeras också i koloncancer 14,15. Emellertid är den exakta mekanismen och effektiv terapi för koloncancer saknas fortfarande. För att underlätta utredningen av de molekylära mekanismerna för koloncancer, har humana koloncancer cellinjer som representerar olika stadier av cancer progression från en godartad till en aggressiv celltyp etablerats 16-18. Mus kolonkarcinomceller cellinjer med olika metastaserande egenskaper finns också 19,20. Ändå är primära celler eller organoid kulturer föredra framför transformerade cellinjer eftersom de nära efterlikna in vivo-tillståndet och generera mer fysiologiskt relevanta uppgifter 21. De flesta kolon-cancer cellinjer växa som monoskikt fäst vid plattan eller som cellsuspensioner, lacking apikal-basolateral läggning och täta förbindelser mellan celler. Också, normala och tumör tarmepitelceller in vivo genomgå en spontan form av apoptos kallas anoikis som de differentierade cellerna når villus tips och fälls 22. Dessa funktioner är svåra att rekapitulera i cellinjer men som är viktiga i utvecklingsprocessen av koloncancer 23. Dessa funktioner upprätthålls i primära organoids. Dessutom tumören organoid kulturer ger ett effektivt system för att bedöma tumör autonoma funktionen av gener jämfört med in vivo-studier. Genetisk manipulation in vivo av tarmen är en tidskrävande process främst genom att skapa transgena och / eller möss knockout med tarm-specifika drivrutiner. Men tumören organoids är lätt mottagliga för virus medierad genetisk manipulation och därmed ett bra verktyg för att bedöma exakta molekylära mekanismer. Primära intestinal tumör organoid kulturer HAVe visats vara en möjlig och kraftfull teknik. Primär intestinal cellodling kan skapa funktionella tarm organoids med crypt-villi struktur in vitro från en enda vuxen Lgr5 + stamceller 24. Dessa organoids kan transplanteras och engrafted in skadad kolonvävnad för regenerering 25. Ytterligare anpassning av odlingsbetingelser hade gjort liknande epiteliala organoids från musändtarm och människans tunntarm och tjocktarm genomförbart 1. För primär normal kolonepitel kultur, basalt odlingsmedium samt tillväxtfaktorer inklusive EGF, Noggin, R-spondin och Wnt3a är avgörande, medan basala odlingsmedium och EGF är tillräcklig för att odla primära mus kolontumör organoids 1. Här beskriver vi ett detaljerat protokoll för att isolera, kultur, och generera organoids kolontumör.

Protocol

Ett. Kolontumör Isolering och Cell Dissociation Intestinala tumörer kan isoleras från någon sporadisk eller behandlingsinducerad tjocktarmscancer modellen. Mössen bör avlivas med CO2. Kolon uppsamlas sedan, spolas med kall fosfatbuffrad saltlösning (PBS), och öppnades longitudinellt. Identifiera regioner som innehåller tumörer med hjälp av ett stereomikroskop, dissekera ut med en sax, och tvätta med kall PBS. Inkubera intestinala fragment innehållande tumörer i EDTA kelering…

Representative Results

Tidsförloppet för en kolontumör organoid formation från en tre månader gammal APC min / + mus visas i figur 1. På dag 0, kan enskilda celler observeras flera timmar efter plätering (Figur 1A). På dag 1, överlevde kolontumör epitelceller med eldfast kärnor kunde observeras. På dag 3, fördubblade celler. På dag 6, utökat storleken på organoid mer än tio gånger och visade tecken på apoptos i mitten. På dag 14, skulle orgnoids växa i oregelbundna fac…

Discussion

De experimentella procedurer som beskrivs i detta protokoll kommer att möjliggöra isolering och odling av primära murina kolontumors. Protokollet är anpassad från sädes-arbete av Dr Clevers grupp 1,24,27. Vi optimerat koktiden och kollagenas koncentration för att få ett bättre utbyte av tumör organoids. De kritiska stegen inkluderar tumörceller matsmältningen i enskilda celler, Matrigel resuspension och selektiv kultur. För tumörcell matsmältningen, i syfte att erhålla en effektiv dissociation…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie har finansierats med bidrag till YMS från National Institutes of Health (CA148828), The University of Michigan Gastrointestinal peptid Center, och Jeffrey A. Colby Colon Cancer Research och Tom Liu Memorial Fonder vid University of Michigan Comprehensive Cancer Center.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Matrigel Basement Membrane Matrix BD Biosciences 356234 5 mg/ml
Collagenase Type IV Worthington LS004188 375 U/mg
Dispase Gibco 17105-041 1.8 U/mg
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634010  
Epidermal Growth Factor (EGF), Murine, Natural Invitrogen 53003-018  
N2 Supplement Invitrogen 17502-048 100 x
B27 Supplement Invitrogen 17504-044 50 x
Glutamax-I Gibco 35050-079 100x
N-Acetylcysteine Sigma A9165-5G  
Dulbecco’s Modified Eagle Medium Invitrogen 11965-092  
PicoPureTM RNA Isolation Kit Invitrogen KIT0204  

References

  1. Sato, T., et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett’s epithelium. Gastroenterology. 141, 1762-1772 (2011).
  2. Creamer, B., Shorter, R. G., Bamforth, J. The turnover and shedding of epithelial cells. I. The turnover in the gastro-intestinal tract. Gut. 2, 110-118 (1961).
  3. Crosnier, C., Stamataki, D., Lewis, J. Organizing cell renewal in the intestine: stem cells, signals and combinatorial control. Nat. Rev. Genet. 7, 349-359 (2006).
  4. Medema, J. P., Vermeulen, L. Microenvironmental regulation of stem cells in intestinal homeostasis and cancer. Nature. 474, 318-326 (2011).
  5. Korinek, V., et al. Depletion of epithelial stem-cell compartments in the small intestine of mice lacking Tcf-4. Nat. Genet. 19, 379-383 (1998).
  6. Pinto, D., Gregorieff, A., Begthel, H., Clevers, H. Canonical Wnt signals are essential for homeostasis of the intestinal epithelium. Genes Dev. 17, 1709-1713 (2003).
  7. Kim, K. A., et al. Mitogenic influence of human R-spondin1 on the intestinal epithelium. Science. 309, 1256-1259 (2005).
  8. Reya, T., Clevers, H. Wnt signalling in stem cells and cancer. Nature. 434, 843-850 (2005).
  9. Siegel, R., Naishadham, D., Jemal, A. Cancer statistics, 2012. CA Cancer J. Clin. 62, 10-29 (2012).
  10. Sesink, A. L., Termont, D. S., Kleibeuker, J. H., Vander Meer, R. Red meat and colon cancer: the cytotoxic and hyperproliferative effects of dietary heme. Cancer Res. 59, 5704-5709 (1999).
  11. Fearon, E. R. Molecular genetics of colorectal cancer. Annu. Rev. Pathol. 6, 479-507 (2011).
  12. Nishisho, I., et al. Mutations of chromosome 5q21 genes in FAP and colorectal cancer patients. Science. 253, 665-669 (1991).
  13. Xue, X., et al. Hypoxia-inducible factor-2alpha activation promotes colorectal cancer progression by dysregulating iron homeostasis. Cancer Res. 72, 2285-2293 (2012).
  14. Liu, W., et al. Mutations in AXIN2 cause colorectal cancer with defective mismatch repair by activating beta-catenin/TCF signalling. Nat. Genet. 26, 146-147 (2000).
  15. Morin, P. J., et al. Activation of beta-catenin-Tcf signaling in colon cancer by mutations in beta-catenin or APC. Science. 275, 1787-1790 (1997).
  16. Brattain, M. G., Fine, W. D., Khaled, F. M., Thompson, J., Brattain, D. E. Heterogeneity of malignant cells from a human colonic carcinoma. Cancer Res. 41, 1751-1756 (1981).
  17. Leibovitz, A., et al. Classification of human colorectal adenocarcinoma cell lines. Cancer Res. 36, 4562-4569 (1976).
  18. Willson, J. K., Bittner, G. N., Oberley, T. D., Meisner, L. F., Weese, J. L. Cell culture of human colon adenomas and carcinomas. Cancer Res. 47, 2704-2713 (1987).
  19. Brattain, M. G., Strobel-Stevens, J., Fine, D., Webb, M., Sarrif, A. M. Establishment of mouse colonic carcinoma cell lines with different metastatic properties. Cancer Res. 40, 2142-2146 (1980).
  20. Ikubo, A., Aoki, Y., Nagai, E., Suzuki, T. Highly metastatic variant of a mouse colon carcinoma cell line, LM17 and its response to GM-CSF gene therapy. Clin. Exp. Metastasis. 17, 849-855 (1999).
  21. Basant, S. K., Rinesh, K. Principles Of Animal Cell Culture. Student Compendium. Textbook Student Edition. 6, 61-96 (2008).
  22. Vachon, P. H., et al. Differentiation state-selective roles of p38 isoforms in human intestinal epithelial cell anoikis. Gastroenterology. 123, 1980-1991 (2002).
  23. Darido, C., et al. Defective claudin-7 regulation by Tcf-4 and Sox-9 disrupts the polarity and increases the tumorigenicity of colorectal cancer cells. Cancer Res. 68, 4258-4268 (2008).
  24. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459, 262-265 (2009).
  25. Yui, S., et al. Functional engraftment of colon epithelium expanded in vitro from a single adult Lgr5(+) stem cell. Nat. Med. 18, 618-623 (2012).
  26. Anderson, E. R., Xue, X., Shah, Y. M. Intestinal hypoxia-inducible factor-2alpha (HIF-2alpha) is critical for efficient erythropoiesis. J. Biol. Chem. 286, 19533-19540 (2011).
  27. Sato, T., et al. Paneth cells constitute the niche for Lgr5 stem cells in intestinal crypts. Nature. 469, 415-418 (2011).
  28. Kondo, J., et al. Retaining cell-cell contact enables preparation and culture of spheroids composed of pure primary cancer cells from colorectal cancer. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 6235-6240 (2011).
  29. Clevers, H., Nusse, R. Wnt/beta-catenin signaling and disease. Cell. 149, 1192-1205 (2012).
check_url/50210?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Xue, X., Shah, Y. M. In vitro Organoid Culture of Primary Mouse Colon Tumors. J. Vis. Exp. (75), e50210, doi:10.3791/50210 (2013).

View Video